Kim, Dong-Gyun;Kim, Eun-Young;Kim, Yu-Ri;Kong, In-Soo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.1
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pp.119-126
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2015
Among the various human growth factors, epidermal growth factor (hEGF, consisting of 53 amino acids) has various effects on cell regeneration, stimulation of proliferation, migration of keratinocytes, formation of granulation tissues, and stimulation of fibroblast motility, which are important for wound healing. Owing to their multiple activities, EGFs are used as pharmaceutical and cosmetic agents. However, their low productivity, limited target specificity, and short half-life inhibit their application as therapeutic agents. To overcome these obstacles, we fused the collagen-binding domain (CBD) of Vibrio mimicus metalloprotease to EGF protein. About 18 or 12 amino acids (aa) (of the 33 total amino acids), which were essential for collagen-binding activity, were combined with the N- and C-termini of EGF. We constructed, expressed, and purified EGF (53 aa)-CBD (18 aa), EGF (53 aa)-CBD (12 aa), CBD (18 aa)-EGF (53 aa), and CBD (12 aa)-EGF (53 aa). These purified recombinant proteins increased the numbers of cells in treated specimens compared with non-treated specimens and control hEGF samples. The collagen-binding activities were also evaluated. Furthermore, CBD-hybridized hEGF induced phosphorylation of the EGF receptor. These results suggested that these fusion proteins could be applicable as small therapeutic agents in wound tissue healing.
In the previous studies, we have demonstrated that prorenin converting enzyme (PRECE) was identical to the epidermal grouch factor-binding protein (EGF-BP) type B, which was a member of the mouse glandular kallikrein family, To examine whether or not EGF-BP type A and C are involved in the processing of prorenin, we have cloned the CDNAS of the EGF-BP type h and C from a library of male ICR mouse submandibular gland (SMGI. And then CHO cells were transfected with the EGF-BP expression plasmids. and stable cell lines expressing a high level of the EGF-BPS precursor were obtained. The conditioned medium was then treated with trypsin, which has been knotvn to effectively convert the EGF-BP type A and C precursor to the active forms. 수ubsequentlv, the prorenin converting activity of the trypsin-treated or untreated medium was examined. PRECE converted exactly prorenin to renin, but the prorenin converting activities of EGF-BP type A and C were not detected. From these results, it seems that only type B of these EGF-BPs is involved in processing Ren 2 prorenin in mouse SMG.
Background : Mucin synthesis in airways has been reported to be regulated by the epidermal growth factor receptor (EGFR) system. Epidermal growth factor receptor transactivation was identified as a critical element in G-protein-coupled receptors (GPCRs)-induced mitogenic signaling. EGF receptor transactivation by G-protein-coupled receptors requires metalloproteinase cleavage of proHB-EGF. This study was hypothesized that lipopolysaccharide (LPS)-induced mucin production associates with epidermal growth factor receptor transactivation, and MUC5AC production associates with epidermal growth factor receptor transactivation by G-protein-coupled receptors that regulates by metalloproteinase. Method : MUC5AC mucin production was examined in NCI-H292 cells and MUC5AC protein synthesis was assessed using ELISA. For the evaluation of mechanism of LPS-induced MUC5AC production, $TNF{\alpha}$ was measured using ELISA with or without pretreatment of heterotrimeric G-protein inhibitor, mastoparan. MUC5AC protein was measure with pretreatment of polyclonal $TNF{\alpha}$ antibody or mastoparan on LPS-induced MUC5AC production. For the evaluation of relation of G-protein and MUC5AC production, G-protein stimulant, mastopara-7, or matrix metalloproteinase, ADAM10, was added to NCI-H292 cells. MUC5AC protein was measure with pretreatment of polyclonal EGF antibody on mastoparan-7-induced MUC5AC production. Results : LPS alone did not increase significantly MUC5AC production. LPS with $TNF{\alpha}$ induced dose-dependently MUC5AC production in NCI-H292 cells. LPS increased dose-dependently $TNF{\alpha}$ secretion, which was inhibited by mastoparan. LPS with $TNF{\alpha}$-induced MUC5AC production was inhibited by neutralizing polyclonal $TNF{\alpha}$ antibody, mastoparan or AG 1472. Mastoparan-7 or ADAM10 increased dose-dependently MUC5AC production, which was inhibited by polyclonal neutralizing EGF antibody. Conclusion : In LPS-induced MUC5AC synthesis, LPS causes $TNF{\alpha}$ secretion, which induces EGFR expression. EGFR tyrosine kinase phosphorylation result in MUC5AC production. EGF-R transactivation by G-protein-coupled receptors requires matrix metalloproteinase cleavage of proHB-EGF.
In the present study, an in vitro ELISA system to assess the interaction between Src homology (SH)2 domains and phosphotyrosine that contain peptides was established using purified GST-conjugated SH2 proteins and synthetic biotinylated phosphotyrosine that contain oligopeptides. The SH2 domains bound the relevant phosphopeptides that were immobilized in the streptavidin-coated microtiter plate in a highly specific and dose-dependent manner. The epidermal growth factor receptor (EGFR)-, T antigen (T Ag)-, and platelet-derived growth factor receptor (PDGFR)-derived phosphopeptides interacted with the growth factor receptor binding protein (Grb)2/SH2, Lck/SH2, and phosphatidyl inositol 3-kinase (PI3K) p85/SH2, respectively. No cross-reactions were observed. Competitive inhibition experiments showed that a short phosphopeptide of only four amino acids was long enough to determine the binding specificity. Optimal concentrations of the GST-SH2 fusion protein and phosphopeptide in this new ELISA system for screening the binding blockers were chosen at 2nM and 500nM, respectively. When two candidate compounds were tested in our ELISA system, they specifically inhibited the Lck/SH2 and/or p85/SH2 binding to the relevant phosphopeptides. Our results indicate that this ELISA system could be used as an easy screening method for the discovery of specific binding blockers of protein-protein interactions via SH2 domains.
Yang, Xiaoping;Zhu, Mei J.;Sreejayan, N.;Ren, J.;Du, Min
Molecules and Cells
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v.20
no.2
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pp.263-270
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2005
Transactivation of EGF-receptor (EGFR) by G-protein coupled receptors (GPCRs) is emerging as an important pathway in cell proliferation, which plays a crucial role in the development of atherosclerotic lesion. Angiotensin II (Ang II) has been identified to have a major role in the formation of atherosclerotic lesions, although the underlying mechanisms remain largely unclear. We hypothesize that Ang II promotes the proliferation and migration of smooth muscle cells through the release of heparin-binding epidermal growth factor like growth factor (HB-EGF), transactivation of EGFR and activation of Akt and Erk 1/2, with matrix metalloproteases (MMPs) playing a dispensable role. Primary rat aortic smooth muscle cells were used in this study. Smooth muscle cells rendered quiescent by serum deprivation for 12 h were treated with Ang II (100 nM) in the presence of either GM6001 ($20{\mu}M$), a specific inhibitor of MMPs or AG1478 ($10{\mu}M$), an inhibitor of EGFR. The levels of phosphorylation of EGFR, Akt and Erk 1/2 were assessed in the cell lysates. Inhibition of MMPs by GM6001 significantly attenuated Ang II-stimulated phosphorylation of EGFR, suggesting that MMPs may be involved in the transactivation of EGFR by Ang II receptor. Furthermore Ang II-stimulated proliferation and migration of smooth muscle cells were significantly blunted by inhibiting MMPs and EGFR and applying HB-EGF neutralization antibody, indicating that MMPs, HB-EGF and EGFR activation is necessary for Ang-II stimulated migration and proliferation of smooth muscle cells. Our results suggest that inhibition of MMPs may represent one of the strategies to counter the mitogenic and motogenic effects of Ang II on smooth muscle cells and thereby prevent the formation and development of atherosclerotic lesions.
Single-chain antibodies against epidermal growth factor receptor variant III (EGFRvIII) are potentially promising agents for developing antibody-based cancer treatment strategies. We described in our previous study the successful expression of an anti-EGFRvIII scFv antibody in Escherichia coli. However, we could also observe the formation of insoluble aggregates in the periplasmic space, limiting the production yield of the active product. In the present study, we investigated the mechanisms by which growth conditions could affect the expression of the soluble anti-EGFRvIII scFv antibody in small-scale E. coli NiCo21(DE3) cultures, attempting to maximize production. The secreted scFv molecules were purified using Ni-NTA magnetic beads and protein characterization was performed using SDS-PAGE and western blot analyses. We used the ImageJ software for protein quantification and determined the antigen-binding activity of the scFv antibody against the EGFRvIII protein. Our results showed that the highest percentage of soluble scFv expression could be achieved under culture conditions that combined low IPTG concentration (0.1 mM), low growth temperature (18℃), and large culture dish surface area. We found moderate-yield soluble scFv production in the culture medium after lactose-mediated induction, which was also beneficial for downstream protein processing. These findings were confirmed by conducting western blot analysis, indicating that the soluble, approximately 30-kDa scFv molecule was localized in the periplasm and the extracellular space. Moreover, the antigen-binding assay confirmed the scFv affinity against the EGFRvIII antigen. In conclusion, our study reveals that low-speed protein expression is preferable to obtain more soluble anti-EGFRvIII scFv protein in an E. coli expression system.
It is well known that bacterial lipopolysaccharide (LPS) stimulates the prostaglandin (PG) synthesis in various experimental system, but the mechanism and the detailed nature of its action are yet to be understood. Thus, this study was designed to characterize LPS induced PG synthesis in rat alveolar macrophage. Although results were not so much prominent, LPS stimulated PGE2 synthesis in macrophage with short term exposure, and this was thought to be mainly due to the activation of phopholipase A2+ But there was a burst in the PG synthesis 6 hours after the LPS treatment and this was accompanied with the increase of cyclooxygenase activity. This effect was not mediated by tumor necrosis factor (TNF) or platelet activating factor (PAF), and the existence of serum was prerequisite for its action. Growth factors such as epidermal growth factor (EGF) and platelet derived growth factor (PDGF) themselves did not stimulate PG synthesis and the showed stimulatory activities to some extent. Normal rat serum was more effective for the elicitation of the LPS action than growth factors. Thus, considering the amounts of growth fafctors contained in normal serum, it was suggested that another factors like LPS binding protein (LBP) might be involved in the serum effect on LPS action. Conclusively. it was thought that LPS could stimulate PG synthesis through interaction with serum factors such as EGF, PDGF and/or LBP.
We have recently demonstrated, by protein and cDNA sequence analysis, that prorenin converting enzyme (PRECE) in the mouse submandibular gland is identical to the epidermal growth factor-binding protein (EGF-BP)type B. However, type A and C did not show prorenin converting activity. To demonstrate whether r-NGF is involved in prorenin processing, we have cloned cDNA of r-NGF and examined prorenin converting activity using the CHO cell expression system, Trypsin converted the 33 kDa r-NGF precursor produced in CHO cells to a two-chain form, 9.4 and 16.4 kDa polypeptide chains, which has been known as an active form of r-NGF in mouse SMG (Server and Shooter, 1976). However, the two chain forms of r-NGF did not reveal prorenin-processing activity. Thus, only PRECE is involved in prorenin processing in mouse SMG. This result shows that their substrate specificities appear to be very strict, although some kallikreins share a high degree of amino acid sequence identity.
Background: Gintonin is a ginseng-derived exogenous G-protein-coupled lysophosphatidic acid (LPA) receptor ligand. Gintonin exerts its neuronal and non-neuronal in vitro and in vivo effects through LPA receptor subtypes. However, it is unknown whether gintonin can bind to the plasma membrane of cells and can transactivate the epidermal growth factor (EGF) receptor. In the present study, we examined whether gintonin-biotin conjugates directly bound to LPA receptors and transactivated the EGF receptor. Methods: We designed gintonin-biotin conjugates through gintonin biotinylation and examined whether gintonin-biotin conjugate binding sites co-localized with the LPA receptor subtype binding sites. We further examined whether gintonin-biotin transactivated the EGF receptor via LPA receptor regulation via phosphor-EGF and cell migration assays. Results: Gintonin-biotin conjugates elicit [Ca2+]i transient similar to that observed with unbiotinylated gintonin in cultured PC3 cells, suggesting that biotinylation does not affect physiological activity of gintonin. We proved that gintonin-biotin conjugate binding sites co-localized with the LPA1/6 receptor binding sites. Gintonin-biotin binding to the LPA1 receptor transactivates the epidermal growth factor (EGF) receptor through phosphorylation, while the LPA1/3 receptor antagonist, Ki16425, blocked phosphorylation of the EGF receptor. Additionally, an EGF receptor inhibitor AG1478 blocked gintonin-biotin conjugate-mediated cell migration. Conclusions: We observed the binding between ginseng-derived gintonin and the plasma membrane target proteins corresponding to the LPA1/6 receptor subtypes. Moreover, gintonin transactivated EGF receptors via LPA receptor regulation. Our results suggest that gintonin directly binds to the LPA receptor subtypes and transactivates the EGF receptor. It may explain the molecular basis of ginseng physiology/pharmacology in biological systems.
Park, Sang-Joong;Ryu, Kang;Chai, Young-Gyu;Kweon, Oh-Byung;Park, Seung-Kook;Lee, Eun-Kyu
한국생물공학회:학술대회논문집
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2001.11a
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pp.197-203
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2001
A fusion protein, consisting of human epidermal growth factor as a recognition domain and human angiogenin as a toxin domain, can be used as a targeted therapeutic against breast cancer cells among others. The fusion protein was expressed as inclusion body in recombinant E. coli, and when the conventional, solution-phase refolding process was used the refolding yield was very low due to severe aggregation, probably due to the opposite surface charge due to vastly different pI values of each domain. Solid-phase refolding process exploiting ionic interactions between the solid matrix and the protein was tried, but the ionic binding yield was very low regardless of the resins and pH conditions used. To provide higher affinity toward the solid matrix, six lysine residues were tagged to the N -terminus of the hEGF domain When the cation exchange resins such as heparin- or CM-Sepharose were used as the matrix, the adsorption capacity increased 2.5-3 times and the subsequent refolding yield increased nearly IS times compared to the conventional process.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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