Candida cylindracea lipase was immobilized by adsorption on acid washed glass beads. It was observed that protein loading of the support depends on the size of the particle, with smaller particle containing higher amount of protein per unit weight. Initial reaction rate linearly varied up to enzyme concentration of 17.25 U/mL. Amount of free fatty acids produced was linearly proportional up to the enzyme loading of 1650 $\mu$g/g of bead. Achievement of chemical equilibrium took longer time in the case of less protein loading. Degree of hydrolysis was found to decrease in second and third consecutive batch operations on repeated use of immobilized lipase.
${\alpha}$-Neoagarooligosaccharide (${\alpha}$-NAOS) hydrolase was purified from Cellvibrio sp. OA-2007 by using chromatographic techniques after hydroxyapatite adsorption. The molecular masses of ${\alpha}$-NAOS hydrolase estimated using SDS-PAGE and gel filtration chromatography were 40 and 93 kDa, respectively, and the optimal temperature and pH for the enzyme activity were $32^{\circ}C$ and 7.0-7.2. ${\alpha}$-NAOS hydrolase lost 43% of its original activity when incubated at $35^{\circ}C$ for 30 min. The enzyme hydrolyzed neoagarobiose, neoagarotetraose, and neoagarohexaose to galactose, agarotriose, and agaropentaose, respectively, and produced 3,6-anhydro-L-galactose concomitantly; however, it did not degrade agarose.
Xanthine oxidase from bovine thyroid glands was purified to apparent homogeneity when judged by analytical disc gel electrophoresis. The purification procedures include pancreatin digestion, butanol extraction, ammonium sulfate precipitation, calcium phosphate gel adsorption, ultrafiltration, calcium phosphate gel-cellulose column chromatography, gel filtration, preparative Sephadex G-25 column electrophoresis, and preparative polyacrylamide gel electrophoresis. The enzyme was enriched 1,000-fold. However, its specific activity was markedly low as compared with highly purified milk enzyme. Thyroidal xanthine oxidase exhibited a low specificity for substrates and electron acceptors. The kinetic properties of thyroid xanthine oxidase were found to be similar to those of the milk enzyme on the basis of Michaelis constants for common substrates.
Gene encoding cyclodextrin glycosyltransferase (CGTase), from thermotolerant Paenibacillus sp. T16 isolated from hot spring area in northern Thailand, was cloned and expressed in E. coli (JM109). The nucleotide sequences of both wild type and transformed CGTases consisted of 2139 bp open reading frame, 713 deduced amino acids residues with difference of 4 amino acid residues. The recombinant cells required 24 h culture time and a neutral pH for culture medium to produce compatible amount of CGTase compared to 72 h culture time and pH 10 for wild type. The recombinant and wild-type CGTases were purified by starch adsorption and phenyl sepharose column chromatography and characterized in parallel. Both enzymes showed molecular weight of 77 kDa and similar optimum pHs and temperatures with recombinant enzyme showing broader range. There were some significant difference in pH, temperature stability and kinetic parameters. The presence of high starch concentration resulted in higher thermostability in recombinant enzyme than the wild type. The recombinant enzyme was more stable at higher temperature and lower pH, with lower $K_m$ for coupling reaction using cellobiose and cyclodextrins as substrates.
The use of 2,2-azinobis(3-ethylbenzthiazoline-6-sulfonic acid)(ABTS) as a radical mediator enhanced the bleaching efficiency of kraft pulp by horseradish peroxidase(HRP) and $H_2O_2$. High concentrations of up to 20 mM $H_2O_2$. were used. The bleaching of the kraft pulp increased as the amount of HRP and ABTS concentration were inceased up to 0.3 mg/90 mL and 2 mM, respectively. The bleaching of the kraft pulp was closely related with the HRPs activity and its adsorption onto the pulp. The activity of HRP and bleaching of kraft pulp were maximum at pH 7 and were reduced either in a acidic or alkaline solutions. The adsorption of HRP onto pulp was low in solutions of pH 6-8 and high in an acidic(pH5) and an alkaline solutions(pH 9). The adsorption of the enzyme was greater for alkali-lignin than for crystalline cellulose, the two major components of pulp.
Low molecular weight endo-glucanase was partially purified from cellulase complex using Sephadex G-100 gel chromatography. Biochemical properties of the purified component was investigated. Optimum pH and temperature determined were 6.0 and 5$0^{\circ}C$, respectively. Enzymatic hydrolysis of four cellulosic substrates having varying crystallinity was evaluated. It was found that hydrolysis of amorphous region was followed by the hydrolysis of crystalline region. In order to examine the effect of adsorption of the enzyme onto the cellulosic substrates on the hydrolysis kinetics, adsorption studies were carried out. Time course of adsorption of low molecular weight endo-glucanase onto various cellulostances was observed for 25 min. The rate and amount of adsorption to amorphous cellulose was greater than those to the crystalline cellulose. This result suggested that the role of endo-glucanasc was more important to the hydrolysis of amorphous cellulose than to the crystalline region of the cellulose.
Enzymatic cellulose hydrolysis depends on the several factors such as the structural features (CrI, particle size and surface area, etc.), the nature of cellulase enzyme system, the inhibitory effects of products, and enzyme deactivation. At the presence of products on the initial hydro- lysis rate of cellulose, cellobiose has more severe inhibitory effect than glucose. Othewise, the inhibition effect of products for adsorbed enzyme is related to the glucose and cellobiose conentration hyperbolically. Enzyme deactivation of FPA and ${\beta}-glucosidase$ were expressed by exponential decay profile.
Urokinase (UK), a thrombolytic enzyme used to clear catheters obstructed by blood clots, can be also used industrially in the recombinant protein purification system to cleave a fusion protein linked with a certain fragment of GST. We have immobilized UK by covalent attachment to activated Sepharose 6B-Cl gels and evaluated its performance to cleave a fusion protein of hGH and GST. The Sepharose gels were activated by etherification with glycidol (2,3-epoxypropanol) and further oxidized with periodate resulting in glyceryl-Sepharose gels. After the activation treatment, surface density of the aldehyde groups was 7-30 $\mu$mol-aldehde/mL-gel. Immobilization yield was higher than 99% at high pH (10.5), and the immobilized UK maintained ca. 80% specific activity of the soluble UK. In a column reaction the cleavage yield heavily depended on the feed rate, and it was nearly 86% of that from soluble UK. And the immobilized UK was successfully regenerated by unfolding and refolding with 6M GuHCl. After cleavaging reaction, the monomeric hGH was purified by using expanded bed adsorption chromatography.
In the production of recombinant protein using E. coli, phage lysogen system can be usefully applied for simultaneously achieving protein production at high cell concentration and recovery by cell disruption in the same bioreactor. A major drawback of this system is that the intracellular product and complex broth components are mixed together in culture broth and hence purification efficiency is reduced. With the E. coli double-lysogen system, the expanded bed adsorption is very useful because the pretreatment processes in a routine bioseparation process can be done in a single column operation, and therefore may contribute towards lowering the operating cost of overall recovery/purification process. In the operation of EBA, it has been observed that the change in broth feed volume does not influence much the protein recovery in a tested range. The amount of protein adsorption per mL of resin was increased from $3.44{\times}106unit to 5.28{\times}106unit$ by doubling the column length. By two-fold increase of the column diameter, the ratio of protein concentration in eluent to that in feed was increased from 0.8 to 2.1. It is concluded from the present investigation that the increase of column length and diameter is necessary to enhance the protein adsorption amount per volume of resin and protein concentration in the eluent. The development of resins with various physical properties will be necessary for more extensive application of EBA.
The fiber-optic biosensor using enzyme-immobilized Langmuir-Blodgett film is developed fort the measurement of ethanol. The enzyme, alcohol dehydrogenase, is immobilized at the molecular level on the arachidic acid monolayer using Langmuir-Blodgett film technique. Based on the ordered multisubstrate mechanism, the immobilized enzyme kinetics is investigated. The optical sensing system is proposed, and sensor signal is proportional to ethanol concentration and is related wish the number of enzyme layers. As the number of deposited LB film layer increases up to 20 1ayers, the high ethanol concentration of 45mM can be measured without the saturation of signal. Surface pressure-area isotherm is measured for the three-different charged-lipids. Arachidic acid is the most suitable for the adsorption of alcohol dehydrogenase based on electrostatic force.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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