Soil microbes perform crucial roles in the nutrient cycles of forest ecosystems, by effecting the decomposition of organic matter. Enzyme activities have been used to evaluate decomposition rates, as well as microbial activities. The principal objectives of this study were to determine the activities of different soil enzymes, to compare enzyme activities at different elevations, and to elucidate the most important controlling variables for enzyme activities. We conducted a field survey at three sites in Mt. Jumbong on a monthly basis from May, 2004 to September, 2005. Enzyme activities did not change substantially over different seasons. However, the spatial differences were distinct; the lowest elevation site evidenced the lowest levels of enzyme activity. Soils at the lowest elevation were nutrient-depleted soils, and enzyme activities appeared to be affected by precipitation and temperature. However, enzyme activities in fertile soils at high elevations were associated with nutrients and organic matter. The enzyme activities detected in this study differed significantly at the three elevations, and their controlling variables also evidenced different factors.
Carboxymethyl cellulase (CMCase) produced by cloned B. megaterium was found to contain 5.2% carbohydrate but no metal ion. The enzyme was isoelectric at pH 7.23 and was high is basic amino acids. The N-terminal of the enzyme was glutamic acid. The cellulolytic activity of this enzyme was extended to the small molecular substrates such as from cellotriose to cellopentaose. In additon, the enzyme showed transglycoslation activity. The pK values of the enzyme we estimated to be 4.4 and 6.7, andthat of the enzyme-substrate complex were 4.2 and 7.2, respectively. The enzyme was not affected by the treatment with iodoacetic acid, but the modification of enzyme with carbodiimide and diethyl pyrocarbonate resulted in a marked loss of the enzyme activity. These results suggest that the active site of enzyme essentially contains carboxylic and imidazole group of amino acid residues.
Fibrinolytic enzyme has been purified from the edible mushroom, Tricholoma sejunctum using DEAE-cellulose chromatography, Phenyl-Sepharose chromatography and Mono-S column chromatography. The apparent molecular mass of purified enzyme was estimated to be 17100 Da by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and 19000 Da by gel filtration, Indicating that it was a monomer. The N-terminal amino acid sequence of the enzyme was Ala-Thr-Tyr-Lys-Ile-X-Ser-Ala-Thr-His-Gln-X-X-Leu-Val. It has a pH optimum at pH 9.5, suggested that purified enzyme was a alkaline protease. The activity of purified enzyme was inhibited by EDTA and 1,10-phenanthroline, indicating that purified enzyme is a metalloprotease. The activity of purified enzyme was increased by Zn$^{2+}$ and Co$^{2+}$, however, the enzyme activity was totally inhibited by Hg$^{2+}$.
Aspergillus flavus K-03 isolated from poultry forming soil in Korea was studied for its ability to produce extracellular proteases on basal medium containing 2%(w/v) chicken feathers. The fungus was observed to be a potent producer of such enzymes. Keratinolytic enzyme secretion was the best at 15 days of incubation period at pH 9 and temperature $40^{\circ}C$. No relationship existed between the enzyme yield and increase of biomass. Enzyme production was suppressed by exogenous sugars in descending order arabinose>maltose>mannose>fructose. But glucose did not influence the enzyme activity. The keratinolytic enzyme released by the fungus demonstrated the ability to decompose keratin substrates as chicken feather when exogenous glucose was present. The keratinolytic activity was inhibited by $HgCl_2$ and serine-protease inhibitors such as phenymethylsulfonyl fluoride(100%), chymostain(88%), crystalline soybean trypsin inhibtor(80%), antipain(45%) and aprotinin(40%), and was not by cystein-protease and aspartyl-protease inhibitors. The enzyme activity is only partially inhibited by metallo-protease inhibitor. Thus, the enzyme secreted by A. flavus K-03 belongs to the alkaline serine-type protease.
A diaphorase enzyme electrode for the catalytic reduction of NAD+ , the oxidized form of nicotinamide adenine dinucleotide, has been prepared. The enzyme layer grew spontaneously over an aminoethanethiol self assembled monolayer on a go ld plate electrode. The growth was accomplished by simply dipping the electrode covered by the aminoethanethiol monolayer into a solution containing both glutaraldehyde and diaphorase. We suggested that the glutaraldehyde as a cross-linking reagent was attached to the amino groups of the aminoethanethiol monolayer and the diaphorase enzyme molecules were bound to free aldehyde groups of the glutaraldehyde. Further attachments of the enzyme molecules over the bound enzyme molecules continued with the bridging of the glutaraldehyde. In frequency measurements with a quartz crystal microbalance, the frequency decrease was much more than it was for that of the enzyme monolayer formation, and an enzyme layer thicker than a monolayer was formed. The modified electrode was employed to reduce NAD+ , using diffusional methyl viologen as an electron transfer mediator. The NAD+ was electrocatalytically reduced, and the catalytic current was almost equivalent to that with the multilayered electrode of ten enzyme layers.
Kim, Young-Ok;Lee, Jung-Kee;Sunitha, Kandula;Kim, Hyung-Kwoun;Oh, Tae-Kwang
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제9권4호
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pp.469-474
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1999
Thermoactinomyces sp. E79 produced two types of thermostable alkaline proteases extracellularly. A minor protease was separated from a major protease by using DEAE-column chromatography. This enzyme was purified to homogeneity by ammonium sulfate and DEAE-Sepharose ion-exchange chromatography. The purified minor protease showed different biochemical properties compared to the major protease. The molecular mass of the purified enzyme was estimated by SDS-PAGE to be 36 kDa. Its optimum temperature and pH for proteolytic activity against Hammarsten casein were $70^{\circ}C$ and 9.0, respectively. The enzyme was stable up to$75^{\circ}C$ and in an alkaline pH range of 9.0-11.0. The enzyme was inhibited by phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) and $Hg^{2+}, indicating that the enzyme may be a cysteine-dependent serine protease. In addition, the enzyme cleaved the endoproteinase substrate, succinyl-Ala-Ala-Pro-Phe-p- nitroanilide, and the $K_m$ value for the substrate was 1.2 mM.
A bacteium, KP-6408, capable of hydrolyzing fibrin was isolated from Chungkook-jang, which was possibly identified as a strain of Bacillus sp. The effects of culture condition and medium composition on the enzyme production were investigated. Among nitrogen sources tested, yeast extract was the most effective for the enzyme production, and the level of the concentration for the optimal enzyme production was 0.2%(w/v). For carbon sources, glucose was the best for the enzyme production with the level of 2.0%(w/v). The enzyme was maximally produced by cultivating the enzyme production with the level of 2.0%(w/v). The enzyme was maximally produced by cultivating the organism at the liquid medium of the initial pH 8.0 and temperature of 4$0^{\circ}C$. In Chungkook-jang fermentation, the enzyme was maximally produced when incubated at 35$^{\circ}C$ for 24 hrs using soybean as a solid medium. The addition of various rice starch to the soybean in Chungkook-jang fermentation lowered the enzyme production.
Ku, Su-Kyung;Kim, Jake;Kim, Se-Myung;Yong, Hae In;Kim, Bum-Keun;Choi, Yun-Sang
한국축산식품학회지
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제42권3호
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pp.441-454
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2022
This study aimed to determine the effect of enzyme, guar gum, and pressure processing on the digestibility and physicochemical properties of age-friendly liver sausages. Liver sausages were manufactured by adding proteolytic enzyme (Bromelain) and guar gum, and pressure-cooking (0.06 MPa), with the following treatments: control, without proteolytic enzyme; T1, proteolytic enzyme; T2, proteolytic enzyme and guar gum; T3, pressure-cooking; T4, proteolytic enzyme and pressure-cooking; T5, proteolytic enzyme, guar gum, and pressure-cooking. The pH was high in the enzyme- and pressure-processed groups. The pressure-processed groups had lower apparent viscosity than other cooking groups, and it decreased during enzyme treatment. Hardness was lower in the enzyme- and pressure-processed groups than in the control, and the T4 was the lowest. Digestibility was the highest in T4 at 82.58%, and there was no significant difference with that in T5. The general cooking group with enzyme and guar gum also showed higher digestibility than the control (77.50%). As a result of the sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis, the enzyme- and pressure-treated groups (T4, T5) were degraded more into low-molecular-weight peptides (≤37 kDa) than the control and other treatments. Viscoelasticity showed similar trends for viscous and elastic moduli. Similarly, combined pressure processing and enzymatic treatment decreased viscoelasticity, while guar gum increased elasticity but decreased viscosity. Therefore, the tenderized physical properties and improved digestibility by enzyme and pressurization treatment could be used to produce age-friendly spreadable liver sausages.
Aldose reductase was purified to electrophoretic homogeneity from porcine liver. The purified enzyme was a monomer of 36 kDa. The enzyme was strongly inhibited by $Cu^{2+}\;and\;Mg^{2+}$ ions. Incubation of the enzyme with pyridoxal 5'-phosphate led to complete inhibition of enzymatic activity, suggesting that lysine residue is involved at or near the active site of the enzyme. The enzyme exhibited a broad substrate specificity. Furthermore, the enzyme was capable of decolorizing Alizarin, an anthraquinone dye.
Molecular characteristics and improving methods for thermal stability of enzyme have been considered. Intrinsic and extrinsic stabilizing mechanisms are two governing principles for enhanced thermal stability of enzyme in molecular basis. Factors contributing to the former and the latter mechanisms may be involved in the enhanced thermal stability of enzyme complementarily. Also, the methods for improving thermal stability of enzyme which comprise reaction in organic solvent system, chemical modification, immobilization, sequential unfolding and refolding, gene manipulation techniques and enzyme-antibody complexing are reviewed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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