Staphylococcus aureus strains are important foodborne pathogens that produce various toxins. To evaluate the risk of the enterotoxins, four S. aureus strains from kimbap and two clinical samples were isolated and identified, and their expression of the enterotoxin genes were analyzed using a reverse transcription real-time PCR. Various enterotoxin genes were detected, including sea, seg, seh, sei, sen, seo, and sem, where each isolate contained one or two. When the mRNA detection of the enterotoxin genes was analyzed using a reverse transcriptase PCR, various levels of expression were found depending on the species and enterotoxin gene. Therefore, it is reasonable to suggest that the poisoning risk of S. aureus can be effectively evaluated based on the gene expression at the mRNA level.
Role of enterotoxin from Salmonella in pathogenesis is not know. Enterotoxin gene from Salmonella typhimurium(stn) encodes a 29kDa toxin that has no homology to any other known enterotoxins. Expression of stn is enthanced upon contact with epithelial cell but not all strains having the stn gene express Stn, Based on PCR analysis, we found that all 36 clinical strains of Salmonella isolated in Korea tested carried the stn gene. To understand the trgulation of the stn transcription, the expression of stn was studies in vitro. RNA polymerase was purified by polymin P fraction-ation, DNA-agarose affinity chromatography, and Mono-Q ion exchange chromatography from Salmonella. The expression of stn was inhibited by cAMP·CRP complex by about 50%.
Staphylococcus aureus cultures exposed to rotating magnetic field (RMF) were studied in order to analyse the possible induced changes in staphylococcal enterotoxin genes (se) expression. Liquid cultures of S. aureus strains carrying different se were exposed to the RMF of magnetic frequency 50 Hz and magnetic induction 34 mT for 10 h at $37^{\circ}C$. Three time points of bacterial growth cycle were considered for RNA extractions. Gene expression analyses were evaluated using real-time quantitative PCR method. The present study confirmed, that the RMF can stimulate the growth rate of S. aureus cultures in comparison to the unexposed controls, while the stimulation is not strain dependent. The studies have also shown, that the RMF, depending on the exposure time but regardless the bacterial strain, can influence on the expression of various se. In general, except for sea, as a result of bacterial exposure to the RMF through subsequent growth phases, the expression of se decreased, reaching the values below results recorded for unexposed controls. In the case of sea expression remained at a lower level as compared to the control, regardless the time of exposition.
We have earlier reported on the cloning and identification of bft-k from an enterotoxigenic strain of Bacteroides fragilis 419, which was isolated from the blood of a Korean patient who suffered from systemic infections [4,5]. The bft-k gene encodes a 397-amino-acids metalloprotease enterotoxin, and the protein has been identified as a new isoform of B. fragilis enterotoxins (BFTs), which are cytopathic to intestinal epithelial cells to induce fluid secretion and tissue damage in ligated intestinal loops [4, 6, 18, 20]. This report describes the cloning and sequencing of the enterotoxin pahogenicity islet of B. fragilis 419 which contains the bft-k gene. the cloned enterotoxin pathogenicity islet was found to have 6,045 bp in length and to contain 120bp direct repeats near its end. In the pathogenicity islet, in addition to the BFR-K, two putative open reading frames (ORFs) were identified; (1) the t-3 gene encoding a 396-amino-acids protein of a putative metalloprotease; (2) the third gene encoding an ORF of a 59-amino-acids protein, whose function has not yet beenn characterized. The expression of the t-3 gene in B. fragilis 419 was verified by western blot analysis.
Salmonella encodes an enterotoxin (Stn) which possesses biological activity similar to the cholera toxin. Stn contributes significantly to the overall virulence of S. typhimurium in a murine model. The production of Stn is enhanced in a high-osmolarity medium and by contact with epithelial cells. In the present study, the in vitro and in vivo transcriptional regulations of the sin promoter revealed two promoters, P1 and P2. The P1 promoter identified by a primer extension analysis of stn mRNA exhibited a switching mechanism in vivo. Depending on the growth stage, transcription was initiated from different start sites termed $P1_S\;and\;P1_E$. $P1_S$, recognized by RNA polymerase containing ${\sigma}^S(E{\sigma}^S),\;and\;P1_E$, recognized by $E{\sigma}^70$, were activated during the stationary and exponential phases, respectively, while $P1_S\;and\;P1_E$ were both negatively regulated by CRPㆍcAMP and H-NS. Results revealed that $P1_S$ was the responsible promoter activated under a high osmolarity and low pH. The P2 promoter was identified 45 nucleotides downstream from $P1_E$ and negatively controlled by CRPㆍcAMP in vitro. No P2 activity was detected in vivo. The regulation of stn expression monitored using a Pstn::egfp fusion indicated that $E{\sigma}^S$ was required for the induction of stn and various factors were involved in stn regulation inside animal cells.
Escherichia coli (E. coli) heat-labile enterotoxin B subunit (LTB) was regarded as one of the most powerful mucosal immunoadjuvants eliciting strong immunoresponse to coadministered antigens. In the research, the high-level secretory expression of functional LTB was achieved in P. pastoris through high-density fermentation in a 5-1 fermentor. Meanwhile, the protein was expressed in E. coli by the way of inclusion body, although the gene was cloned from E. coli. Some positive yeast and E. coli transformants were obtained respectively by a series of screenings and identifications. Fusion proteins LTB-6$\times$His could be secreted into the supernatant of the medium after the recombinant P. pastoris was induced by 0.5% (v/v) methanol at $30^{\circ}C$, whereas E. coli transformants expressed target protein in inclusion body after being induced by 1 mM IPTG at $37^{\circ}C$. The expression level increased dramatically to 250-300 mg/l supernatant of fermentation in the former and 80-100 mg/l in the latter. The LTB-6$\times$His were purified to 95% purity by affinity chromatography and characterized by SDS-PAGE and Western blot. Adjuvant activity of target protein was analyzed by binding ability with GMI gangliosides. The MW of LTB-6$\times$His expressed in P. pastoris was greater than that in E. coli, which was equal to the expected 11 kDa, possibly resulted from glycosylation by P. pastoris that would enhance the immunogenicity of co-administered antigens. These data demonstrated that P. pastoris producing heterologous LTB has significant advantages in higher expression level and in adjuvant activity compared with the homologous E. coli system.
Rezaee Mohammad Ahangarzadeh;Rezaee Abbas;Moazzeni Seyed Mohammad;Salmanian Ali Hatef;Yasuda Yoko;Tochikubo Kunio;Pirayeh Shahin Najar;Arzanlou Mohsen
Journal of Microbiology
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제43권4호
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pp.354-360
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2005
Heat-labile enterotoxin B subunit (LTB) of enterotoxigenic Escherichia coli (ETEC) is both a strong mucosal adjuvant and immunogen. It is a subunit vaccine candidate to be used against ETEC-induced diarrhea. It has already been expressed in several bacterial and plant systems. In order to construct yeast expressing vector for the LTB protein, the eltB gene encoding LTB was amplified from a human origin enterotoxigenic E. coli DNA by PCR. The expression plasmid pLTB83 was constructed by inserting the eltB gene into the pYES2 shuttle vector immediately downstream of the GAL1 promoter. The recombinant vector was transformed into S. cerevisiae and was then induced by galactose. The LTB protein was detected in the total soluble protein of the yeast by SDS-PAGE analysis. Quantitative ELISA showed that the maximum amount of LTB protein expressed in the yeast was approximately $1.9\%$ of the total soluble protein. Immunoblotting analysis showed the yeast-derived LTB protein was antigenically indistinguishable from bacterial LTB protein. Since the whole-recombinant yeast has been introduced as a new vaccine formulation the expression of LTB in S. cerevisiae can offer an inexpensive yet effective strategy to protect against ETEC, especially in developing countries where it is needed most.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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