Viomycin inhibited polypeptide biosynthesis, initiation complex formation and translocation of peptidyl-tRNA on ribosomes derived from a sensitive strain of Mycobacterium smegmatis (R-15), but not significantly on ribosomes from viomycin-resistant mutants(R-31 and R-43). The inhibition of translocation was stronger than that of initiation complex formation in the sensitive strain. The binding of [$^{14}C$] tuberactinomycin O, a viomycin analog, to ribosomal particles was studied by Millipore filter method. The sensitive ribosome exhibited higher affinity for the antibiotic than the resistant ribosomes. The resistance was localized on the large ribosomal subunit in a mutant(R-31), and on the small subunit in another mutant(R-43). The binding of the drug to the sensitive ribosomal subunit was markedly reduced by combination with the resistant pair subunit, and the entire ribosome became resistant to the antibiotic.
Chemotherapy has long been considered as one of useful strategies for cancer treatment. It is primarily based on the apoptosis that can selectively kill cancer cells. However, cancer cells can progressively develop an acquired resistance to apoptotic cell death, rendering refractory to chemo- and radiotherapies. Although the mechanism by which cells attained resistance to drug remains to be clarified, it might be caused by either pumping out of them or interfering with apoptotic signal cascades in response to cancer drugs. In case that cancer cells are defective in some part of apoptotic machinery by repeated exposure to anticancer drugs, alternative cell death mechanistically distinct from apoptosis could be adopted to remove cancer cells refractory to apoptosis-inducing agents. This review will mainly deal with harnessing of necrotic cell death, specifically, programmed necrosis and practical uses. Here, we begin with various defects of apoptotic death machinery in cancer cells, and then provide new perspective on programmed necrosis as an alternative anticancer approach.
Insulin stimulates glucose uptake in muscle and adipose cells primarily by recruiting GLUT4 from an intracellular storage pool to the plasma membrane. Dysfunction of this process known as insulin resistance causes hyperglycemia, a hallmark of diabetes and obesity. Thus the understanding of the mechanisms underlying this process at the molecular level may give an insight into the prevention and treatment of these health problems. GLUT4 in rat adipocytes, for example, constantly recycles between the cells surface and an intracellular pool by endocytosis and exocytosis, each of which is regulated by an insulin-sensitive and GLUT4-selective sorting mechanism. Our working hypothesis has been that this sorting mechanism includes a specific interaction of a cytosolic protein with the GLUT4 cytoplasmic domain. Indeed, a synthetic peptide of the C-terminal cytoplasmic domain of GLUT4 induces an insulin-like GLUT4 recruitment when introduced in rat adipocytes. Relevance of these observations to a novel euglycemic drug design is discussed.
Multidrug resistance is a major obstacle in cancer chemotherapy. Cancer cells efflux chemotherapeutic drug out of cell by means of transporter and reduce the active concentration of it inside cell. Such transporters are member of the ATP binding cassettes (ABC) protein. It includes P-gp, multiple resistant protein (MRP), and breast cancer resistant protein (BCRP). These proteins are widely distributed in the human cells such as kidney, lung, endothelial cells of blood brain barrier etc. However, there are number of drugs developed for it, but most of them are getting transported by it. So, still there is necessity of a good modulator, which could effectively combat the transport of chemotherapeutic agents. Natural products origin modulators were found to be effective against transporter such as flavonoids, which belongs to third generation modulators. They have advantage over synthetic inhibitor in the sense that they have simple structure and abundant in nature. This review focuses on the P-gp structure its architecture, efflux mechanism, herbal inhibitors and their mechanism of action.
To investigate the mechanism of adriamycin (ADM) resistance in the ADM resistant subline PC-14/ADM, we examined the expressions of p-glycoprotein (P-gp), topoisomerase I (Topo I) and II (Topo II), glutathione-S-transferases (GSTs), tissue transglutaminase (t-TG), epidermal growth factor receptor (EGFR), and E-cadherin and the activity of superoxide dismutase (SOD) in PC-14 and PC-14/ADM cells. There was no change in the cellular levels of P-gp, Topo I, Topo II, and the two isoforms of GSTs. However, SOD activity in PC-14/ADM cells was 2.38 fold higher than that in PC-14 cells. A marked induction of the t-TG expression was also observed in PC-14/ADM cells. In addition to those changes, expressions of EGFR and E-cadherin were down regulated in PC-14/ADM cells. Therefore, molecular modifications such as an increase in SOD activity, induction of the t-TG expression, and down regulation of EGFR and E-cadherin expressions may play important roles in PC-14/ADM cells during the development of ADM resistance.
A previous report recently demonstrated that ultrasound-induced hyperthermia (USHT:0.4 watts (W)/$cm^2$ at $41^{\circ}C$) could increase cellular uptake of P-glycoprotein (P-gp) substrates in P-gp expressing cancer cell lines. Since P-gp plays a major role in limiting drug permeability in the multi-drug resistant (MDR) cells, studies were conducted to elucidate the mechanism of USHT on cellular accumulation of P-gp and non-P-gp substrate in MDR cells. To accomplish this aim, we studied the effects of USHT on the accumulation of P-gp substrate, R123 and non-P-gp substrate, antipyrine in MDR cells. We demonstrated that USHT increased permeability of hydrophobic molecules (R123 and $[^{14}C]$-antipyrine). The enhanced permeability is reversible and size-dependent as USHT produces a much larger effect on cellular accumulation of $[^{14}C]$-antipyrine (MW 188) than that of R123 (MW 380.8). These results suggest that USHT could affect MDR cells more sensitive than BBMECs. Also, the present results point to the potential use of USHT to increase cellular uptake of P-gp recognized substrates, mainly anti-cancer agents into cancer cells.
The effects of non-cytotoxic concentrations of tamoxifen, verapamil, and trifluoperazine on doxorubicin cytotoxicity in five human breast cancer cell lines were studied. A non-cytotoxic concentration of tamoxifen resulted in enhanced doxorubicin cytotoxicity in HTB-123, HTB-26, and MCF-7. In these three cell lines, a combination of tamoxifen with verapamil resulted in even more increased doxorubicin cytotoxicity. Addition of verapamil or trifluoperazine alone did not influence the doxorubicin cytotoxicity significantly. Only in HTB-19 did coincubation with verapamil increase the doxorubicin cytotoxicity. In HTB-123, combination of tamoxifen with trifluoperazine increased the doxorubicin cytotoxicity significantly. In the cell lines where co-incubation with tamoxifen increased doxorubicin sensitivity, high estrogen receptor expression was detected. However, HTB-20, where tamoxifen did not enhance doxorubicin action, was also estrogen receptor positive. None of the cell lines had multidrug resistance related drug efflux and drug retention was not increased by the treatment with tamoxifen and verapamil. Cell cycle traverses were not altered by incubation with tamoxifen, verapamil or combinations thereof. These observatlons suggest mechanism of non-cytotoxic concentrations of tamoxifen and verapamil on doxorubicin cytotoxicity may involve one or more other cellular processes besides those of interference of estrogen binding to its receptor, cell cycle perturbation, or drug efflux blocking.
Park, Yu Jin;Hong, Duck Jin;Yoon, Eun-Jeong;Kim, Dokyun;Choi, Min Hyuk;Hong, Jun Sung;Lee, Hyukmin;Yong, Dongeun;Jeong, Seok Hoon
Annals of Laboratory Medicine
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제38권6호
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pp.545-554
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2018
Background: The increasing morbidity and mortality rates associated with Acinetobacter baumannii are due to the emergence of drug resistance and the limited treatment options. We compared characteristics of colistin-resistant Acinetobacter baumannii (CR-AB) clinical isolates recovered from patients with and without prior colistin treatment. We assessed whether prior colistin treatment affects the resistance mechanism of CR-AB isolates, mortality rates, and clinical characteristics. Additionally, a proper method for identifying CR-AB was determined. Methods: We collected 36 non-duplicate CR-AB clinical isolates resistant to colistin. Antimicrobial susceptibility testing, Sanger sequencing analysis, molecular typing, lipid A structure analysis, and in vitro synergy testing were performed. Eleven colistin-susceptible AB isolates were used as controls. Results: Despite no differences in clinical characteristics between patients with and without prior colistin treatment, resistance-causing genetic mutations were more frequent in isolates from colistin-treated patients. Distinct mutations were overlooked via the Sanger sequencing method, perhaps because of a masking effect by the colistin-susceptible AB subpopulation of CR-AB isolates lacking genetic mutations. However, modified lipid A analysis revealed colistin resistance peaks, despite the population heterogeneity, and peak levels were significantly different between the groups. Conclusions: Although prior colistin use did not induce clinical or susceptibility differences, we demonstrated that identification of CR-AB by sequencing is insufficient. We propose that population heterogeneity has a masking effect, especially in colistin non-treated patients; therefore, accurate testing methods reflecting physiological alterations of the bacteria, such as phosphoethanolamine-modified lipid A identification by matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight, should be employed.
Background: Current cancer therapy mainly focuses on identifying novel targets crucial for tumorigenesis. The FoxM1 is of preference as an anticancer target, due to its significance in execution of mitosis, cell cycle progression, as well as other signal pathways leading to tumorigenesis. FoxM1 is partially regulated by oncoproteins or tumor suppressors, which are often mutated, lost, or overexpressed in human cancer. Since sustaining proliferating signaling is an important hallmark of cancer, FoxM1 is overexpressed in a series of human malignancies. Alarge-scale gene expression analysis also identified FoxM1 as a differentially-expressed gene in most solid tumors. Furthermore, overexpressed FoxM1 is correlated with the prognosis of cancer patients, as verified in a series of malignancies by Cox regression analysis. Thus, extensive studies have been conducted to explore the roles of FoxM1 in tumorigenesis, making it an attractive target for anticancer therapy. Several antitumor drugs have been reported to target or inhibit FoxM1 expression in different cancers, and down-regulation of FoxM1 also abrogates drug resistance in some cancer cell lines, highlighting a promising future for FoxM1 application in the clinic.
Most patients with mutant B-Raf melanomas respond to inhibitors of oncogenic B-Raf but resistance eventually emerges. To better understand the mechanisms that determine the long-term responses of mutant B-Raf melanoma cells to B-Raf inhibitor, we used chronic selection to establish B-Raf (V600E) melanoma clones with acquired resistance to the new oncogenic B-Raf inhibitor UI-152. Whereas the parental A375P cells were highly sensitive to UI-152 ($IC_{50}$ < $0.5{\mu}M$), the resistant sub-line (A375P/Mdr) displayed strong resistance to UI-152 ($IC_{50}$ < $20{\mu}M$). Immunofluorescence analysis indicated the absence of an increase in the levels of P-glycoprotein multidrug resistance (MDR) transporter in A375P/Mdr cells, suggesting that resistance was not attributable to P-glycoprotein overexpression. In UI-152-sensitive A375P cells, the anti-proliferative activity of UI-152 appeared to be due to cell-cycle arrest at $G_0/G_1$ with the induction of apoptosis. However, we found that A375P/Mdr cells were resistant to the apoptosis induced by UI-152. Interestingly, UI-152 preferentially induced autophagy in A375P/Mdr cells but not in A375P cells, as determined by GFP-LC3 puncta/cell counts. Further, autophagy inhibition with 3-methyladenine (3-MA) partially augmented growth inhibition of A375P/Mdr cells by UI-152, which implies that a high level of autophagy may protect UI-152-treated cells from undergoing growth inhibition. Together, our data implicate high rates of autophagy as a key mechanism of acquired resistance to the oncogenic B-Raf inhibitor, in support of clinical studies in which combination therapy with autophagy targeted drugs is being designed to overcome resistance.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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