To detect and quantitation residual antibiotics and antibacterial agents in meats, we performed a biological assay employing the three microorganisms Bacillus subtilis ATCC 6633, Micrococcus luteus ATCC 9341, and Bacillus cereus var. mycoides ATCC 11778 for the screening purpose and developed a Gas Chromatography-mass Spectrometry(GC/MS) analysis for the confirmation and quantiation. In the biological assay (paper disk method), three test solution are used depending on the character of the residual antibiotics and antibacterial agents, follow by a simple clean up procedure which includes homogenization with Mcilvaine buffer, defatting with includes homogenization with Mcilvaine buffer, defatting with hexane, extraction with chloroform, clean-up by Sep-Pak $C_{18}$ and Bakerbond SPE carboxylic acid column. The chloroform layer is used for the analysis of sulfa agents. macrolides antibiotics and antibacterial agents, Adsorbed materials in the Sep-Pak $C_{18}$ were also employed for th analysis of penicillins and tetracyclines. Effluents from the Sep-Pak $C_{18}$ were cleaned-up one more by Bakerbond 10 SPE COOH column and employed for the analysis of aminoglycosides. In the instrumental analysis by using the GC/MSD, residual antibiotics and antibacterial agent were quantitated by selected ion monitoring (SIM) mode after derivatization. A simultaneous analysis of six residual antibiotic and antibacterial agent such as oxytetracycline, penicillin, ampicillin, choliraphenicol and thiamphenicol was developed with simple cleanup procedures revealing good recovery and reproducibility. Also, simultaneous detection of macrolides antibiotics such as erythromycin, spiramycin, and oleandomycin was developed after acid hydrolysis due to their large molecular structures. Because of the high reproducibility and selectivity of these two methods, it is very desirable that the combination of the two methods be used in the bioassay for the screening of residual antibiotics and antibacterial agent and that GC/MSD analysis be used for the confirmation and quantitation.
Lithium Ion capacitor (LIC) is a new storage device which combines high power density and high energy density compared to conventional supercapacitors. LIC is capable of storing approximately 5.10 times more energy than conventional EDLCs and also have the benefits of high power and long cycle-life. In this study, LICs are assembled with activated carbon (AC) cathode and pre-doped graphite anode. Cathode material of natural graphite and artificial graphite kinds of MAGE-E3 was selected as the experiment proceeds. Super-P as a conductive agent and PTFE was used as binder, with the graphite: conductive agent: binder of 85: 10: 5 ratio of the negative electrode was prepared. Lithium doping condition of current density of $2mA/cm^2$ to $1mA/cm^2$, and was conducted by varying the doping. Results Analysis of Inductively Coupled Plasma Spectrometer (ICP) was used and a $1mA/cm^2$ current density, $2mA/cm^2$, when more than 1.5% of lithium ions was confirmed that contained. In addition, lithium ion doping to 0.005 V at 10, 20 and $30^{\circ}C$ temperature varying the voltage variation was confirmed, $20^{\circ}C$ cell from the low internal resistance of $4.9{\Omega}$ was confirmed.
Journal of the Korean Institute of Electrical and Electronic Material Engineers
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v.36
no.4
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pp.376-384
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2023
Nitrogen-doped graphene was synthesized by a hydrothermal method using graphene oxide (GO) as the raw material, urea as the reducing agent and nitrogen as the dopant. The morphology, structure, composition and electrochemical properties of the samples are characterized by scanning electron microscopy (SEM), transmission electron microscopy (TEM), Fourier transform infrared (FTIR) spectroscopy, X-ray diffraction (XRD), X-ray photoelectron spectroscopy (XPS), nitrogen adsorption-desorption analysis, electrical conductivity and electrochemical tests. The results show that urea can effectively reduce GO and achieve nitrogen doping under the hydrothermal conditions. By adjusting the mass ratio of raw materials to dopants, the graphene with different nitrogen doping contents can be obtained; the nitrogen content range is from 5.28~6.08% (atomic fraction percentage).When the ratio of dopant to urea is 1:30, the nitrogen doping content reaches a maximum of 6.08%.The supercapacitor performance test shows that the nitrogen content prepared by the ratio of 6.08% is the best at 0.1 A·g-1. The specific capacitance is 95.2 F·g-1.
Kim, Hyun-Joo;Kim, Kyung-Ran;Youn, Ji-Youn;Kim, Min-Hee;Ryu, Jae-Chun
Proceedings of the Korea Society of Environmental Toocicology Conference
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1996.12a
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pp.61-61
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1996
Taxol is used as cancer therapeutic agent. It has been known as weak posotive of chromosome aberration assay in vitro in our previous results (Ryu et al., 1996) and potent clastogens in the mouse bone marrow micronucleus (Tinwell and Ashby, 1994). We performed microgel electrophoresis to determine the effect of taxol and it's precursor 10-deacetyl baccatin III(DAB) on DNA. Microgel electrophoresis is useful, rapid, simple, visual, and sensitive technique for measuring DNA breakage and repair mechanisms in mammalian 근ells. The range of concentration used for taxol were 854, 427, 213.5, 106.8, 53.4 Ug/ml, for DAB 910 ,455, 227.5 U9/ml, Cell viability always exceed 85%. We analyzed the results by using the special software of image analyzer for this comet assay (Komet 3.0). By using this image analyzer software , we can get the result as the tail moment ((mean of tail length - mean of head lengh) x tail%DNA/100). A slight increase in DNA migration was observed for taxol at the concentration of 854 Ug/m4 in the absence of S9 mixture. No increased DNA migration was observed after treatment with DAB.
A carbon doped $TiO_2$ (C-$TiO_2$) photocatalyst, which shows good photocatalytic activity to Ultraviolet irradiation and visible irradiation, was successfully prepared by co-grinding of $TiO_2$ with ethanol or Activated Carbon(C), followed by heat treatment at $200^{\circ}C$ in air for 60 min. Ethanol and C were used as a representative agent of liquid and solid for carbon doping. Their influence on improving photocatalytic ability and carbon doping degree was studied with degradation of methyl orange and XPS analysis. The product prepared by co-grinding of $TiO_2$ with Ethanol had Ti-C and C-O chemical bonds and showed higher photocatalytic activity than the product prepared by co-grinding of $TiO_2$ with C, where just C-O chemical bond existed. As a result, mechanochemical route is useful to prepare a carbon doped $TiO_2$ photocatalyst activating to visible irradiation, where the solid-liquid operation is more effective than solid-solid operation to obtain a carbon doped $TiO_2$.
Ginkgo biloba (G. biloba) extract is a widely used phytomedicine for the oral treatment of peripheral vascular disease. Cilostazol is a synthetic antiplatelet and vasodilating agent for the treatment of intermittent claudication resulting from peripheral arterial disease. It is likely to use concomitantly G. biloba extract and cilostazol for the treatment of peripheral arterial disease, which raises a concern of increasing their adverse effects of herbal-drug interactions. To clarify any possible herbal-drug interaction between G. biloba extract and cilostazol, the effect of the G. biloba extract on the pharmacokinetics of cilostazol was investigated. As cilostazol is known to be eliminated mainly by cytochrome P450 (CYP)-mediated metabolism, we investigated the effects of G. biloba extract on the human CYP enzyme activities and the effect of G. biloba extract on the pharmacokinetics of cilostazol after co-administration of the two agents to male beagle dogs. The G. biloba extract inhibited more or less CYP2C8, CYP2C9, and CYP2C19 enzyme activities in the in vitro microsomal study with $IC_{50}$ values of 30.8, 60.5, and $25.2{\mu}g/ml$, respectively. In the pharmacokinetic study, co-administration with the G. biloba extract had no significant effect on the pharmacokinetics of cilostazol in dogs, although CYP2C has been reported to be responsible for the metabolism of cilostazol. In conclusion, these results suggest that there may not be a pharmacokinetic interaction between G. biloba extract and cilostazol.
A quantitation method for free amino acids in human serum was developed using a stepwise-dilution method and a bimodal cation exchange (CEX)/hydrophilic interaction liquid chromatography (HILIC)-tandem mass spectrometry system equipped with an electrospray ionization source (ESI/MS/MS). This method, which was validated using quality control samples, was optimized for enhanced selectivity and sensitivity. Dithiothreitol (DTT) was used as a reducing agent to prevent the oxidation of a serum sample ($50{\mu}L$), which was then subjected to stepwise dilution using 3, 30, and 90 volumes of acetonitrile containing 0.1% formic acid. Chromatographic separation was performed on an Imtakt Intrada Amino Acid column ($50mm{\times}3mm$, $3{\mu}m$) in mixed mode packed with CEX and HILIC ligands embedded in the stationary phase. Underivatized free amino acids were eluted and separated within 10 min. As a result of the validation, the precision and accuracy for the inter- and intraday assays were determined as 2.11-11.51% and 92.82-109.40%, respectively. The lowest limit of quantification (LLOQ) was $0.5-4.0{\mu}g/mL$ and the matrix effect was 80.22-115.93%. The proposed method was successfully applied to the quantitative analysis of free amino acids in human serum.
The distribution and excretion of radioactivity were examined after intraportal administration of sup 166/Ho-chitosan complex at a dose of 1 mcitg (10 mg chitosan/kg) to rats. Whole body macroautoluminographs showed that the radioactivity after an administration was concentrated in liver and perfused primarily to organs including kidney, spleen, and bone marrow, then to muscle and brain. Similar profiles were observed from 2 hr to 168 hr after the administration. The relative percentage of radioactivity in bone and spinal column increased with time, suggesting that free $^{166}$ Ho, released from chitosan complex deposited in the liver, selectively binds to these tissues. $^{166}$ Ho-chitosan complex administered intraportally was excreted less than 4% through urine (2.7$\pm$0.8%) and feces (0.65 $\pm$ 0.4%) up to seven days. These results demonstrate that the radio-activity of $_{166}$ Ho-chitusan complex when administered intraportally, mainly localizes in liver without affec-ting other tissues and organs. Considering the short half life of $^{166}$ Ho and the localization to the liver, $^{166}$ Ho-chitosan complex might be a useful agent in the treatment of hepatic carcinoma.
Metabolite identification and urinary and biliary excretion of the new fluoroquinolone antibacterial agent DW116 [1-(5-fluoro-2-pyridyl)-6-fluoro-7-(4-methyl-1 -piperazinyl)-1, 4-dihydro-4-oxoquinoline-3-carboxylic acid, hydrochloride] after oral administration have been studied in Sprague-Dawley rats. The excretion kinetics were monoexponential. Most of the drug was eliminated via the hepatic and renal routes. Mean renal clearance of DW116 was 73.4 ml/hr/kg and mean biliary clearance was 83.8 ml/hr/kg. The major metabolite excreted in the bile was identified as the glucuronide ester of the parent drug using base-hydrolysis of the conjugate metabolite followed by co-HPLC with standard compound, $^{19}$ F-NMR and LC-MS methods. The glucuronide conjugate was also found in urine. The mean urinary recoveries of free and total (free plus glucuronide ester) DW116 were $28.6{\pm}2.7% $and $36.4{\pm}1.8%$ of the administered dose and the corresponding biliary recoveries were $14.4{\pm} 5.5%$ and $37.0{\pm}7.6%$, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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