Transient receptor potential ankyrin 1 from rattlesnakes (rsTRPA1) and boas (bTRPA1) was previously proposed to underlie thermo-sensitive infrared sensing based on transcript enrichment in infrared-sensing neurons and hyper-thermosensitivity expressed in Xenopus oocytes. It is unknown how these TRPA1s show thermosensitivities that overwhelm other thermoreceptors, and why rsTRPA1 is more thermosensitive than bTRPA1. Here, we show that snake TRPA1s differentially require Ca2+ for hyper-thermosensitivity and that predisposition to cytosolic Ca2+ potentiation correlates with superior thermosensitivity. Extracellularly applied Ca2+ upshifted the temperature coefficients (Q10s) of both TRPA1s, for which rsTRPA1, but not bTRPA1, requires cytosolic Ca2+. Intracellular Ca2+ chelation and substitutive mutations of the conserved cytosolic Ca2+-binding domain lowered rsTRPA1 thermosensitivity comparable to that of bTRPA1. Thapsigargin-evoked Ca2+ or calmodulin little affected rsTRPA1 activity or thermosensitivity, implying the importance of precise spatiotemporal action of Ca2+. Remarkably, a single rattlesnake-mimicking substitution in the conserved but presumably dormant cytosolic Ca2+-binding domain of bTRPA1 substantially enhanced thermosensitivity through cytosolic Ca2+ like rsTRPA1, indicating the capability of this single site in the determination of both cytosolic Ca2+ dependence and thermosensitivity. Collectively, these data suggest that Ca2+ is essential for the hyper-thermosensitivity of these TRPA1s, and cytosolic potentiation by permeating Ca2+ may contribute to the natural variation of infrared senses between rattlesnakes and boas.
Youm, Jae-Boum;Choi, Seong-Woo;Jang, Chang-Han;Kim, Hyoung-Kyu;Leem, Chae-Hun;Kim, Na-Ri;Han, Jin
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.15
no.4
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pp.217-239
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2011
We carried out a series of experiment demonstrating the role of mitochondria in the cytosolic and mitochondrial $Ca^{2+}$ transients and compared the results with those from computer simulation. In rat ventricular myocytes, increasing the rate of stimulation (1~3 Hz) made both the diastolic and systolic [$Ca^{2+}]$ bigger in mitochondria as well as in cytosol. As L-type $Ca^{2+}$ channel has key influence on the amplitude of $Ca^{2+}$ -induced $Ca^{2+}$ release, the relation between stimulus frequency and the amplitude of $Ca^{2+}$ transients was examined under the low density (1/10 of control) of L-type $Ca^{2+}$ channel in model simulation, where the relation was reversed. In experiment, block of $Ca^{2+}$ uniporter on mitochondrial inner membrane significantly reduced the amplitude of mitochondrial $Ca^{2+}$ transients, while it failed to affect the cytosolic $Ca^{2+}$ transients. In computer simulation, the amplitude of cytosolic $Ca^{2+}$ transients was not affected by removal of $Ca^{2+}$ uniporter. The application of carbonyl cyanide 4-(trifluoromethoxy) phenylhydrazone (FCCP) known as a protonophore on mitochondrial membrane to rat ventricular myocytes gradually increased the diastolic [$Ca^{2+}$] in cytosol and eventually abolished the $Ca^{2+}$ transients, which was similarly reproduced in computer simulation. The model study suggests that the relative contribution of L-type $Ca^{2+}$ channel to total transsarcolemmal $Ca^{2+}$ flux could determine whether the cytosolic $Ca^{2+}$ transients become bigger or smaller with higher stimulus frequency. The present study also suggests that cytosolic $Ca^{2+}$ affects mitochondrial $Ca^{2+}$ in a beat-to-beat manner, however, removal of $Ca^{2+}$ influx mechanism into mitochondria does not affect the amplitude of cytosolic $Ca^{2+}$ transients.
To characterize cytosolic $Ca^{2+}$ fluctuations under metabolic inhibition, rat ventricular myocytes were exposed to $200{\mu}M$ 2,4-dinitrophenol (DNP), and mitochondrial $Ca^{2+}$, mitochondrial membrane potential (${\Delta}{\Psi}m$), and cytosolic $Ca^{2+}$ were measured, using Rhod-2 AM, TMRE, and Fluo-4 AM fluorescent dyes, respectively, by Laser Scanning Confocal Microscopy (LSCM). Furthermore, the role of sarcolemmal $Na^+$/$Ca^{2+}$ exchange (NCX) in cytosolic $Ca^{2+}$ efflux was studied in KB-R7943 and $Na^+$-free normal Tyrode's solution (143 mM LiCl ). When DNP was applied to cells loaded with Fluo-4 AM, Fluo-4 AM fluorescence intensity initially increased by $70{\pm}10$% within $70{\pm}10$ s, and later by $400{\pm}200$% at $850{\pm}45$ s. Fluorescence intensity of both Rhod-2 AM and TMRE were initially decreased by DNP, coincident with the initial increase of Fluo-4 AM fluorescence intensity. When sarcoplasmic reticulum (SR) $Ca^{2+}$ was depleted by $1{\mu}M thapsigargin plus $10{\mu}M ryanodine, the initial increase of Fluo-4 AM fluorescence intensity was unaffected, however, the subsequent progressive increase was abolished. KB-R7943 delayed both the first and the second phases of cytosolic $Ca^{2+}$ overload, while $Na^+$-free solution accelerated the second. The above results suggest that: 1) the initial rise in cytosolic $Ca^{2+}$ under DNP results from mitochondrial depolarization; 2) the secondary increase is caused by progressive $Ca^{2+}$ release from SR; 3) NCX plays an important role in transient cytosolic $Ca^{2+}$ shifts under metabolic inhibition with DNP.
Ca2+ is implicated as a second messenger in coupling various stimuli such as hormone, gravity and light. The determine whether or not plant hormones mobilize calcium with different action, we investigated the cytosolic Ca2+ changes by IAA and zeatin in the protoplasts isolated from elongating mesocotyl of maize. IAA increased the influx of Ca2+ due to the calcium channel opening, which was confirmed by using verapamil, calcium channel blocker. On the other hand, zeatin increased the cytosolic Ca2+ by promoting the efflux of Ca2+ derived from cellular organelles. These results suggest that different calcium flux induced by IAA and zeatin plays a role in appropriate response resulting in increase of cell elongation or repression cell elongatoin.
Saturated fatty acids contribute to β-cell dysfunction in the onset of type 2 diabetes mellitus. Cellular responses to lipotoxicity include oxidative stress, endoplasmic reticulum (ER) stress, and blockage of autophagy. Palmitate induces ER Ca2+ depletion followed by notable store-operated Ca2+ entry. Subsequent elevation of cytosolic Ca2+ can activate undesirable signaling pathways culminating in cell death. Mitochondrial Ca2+ uniporter (MCU) is the major route for Ca2+ uptake into the matrix and couples metabolism with insulin secretion. However, it has been unclear whether mitochondrial Ca2+ uptake plays a protective role or contributes to lipotoxicity. Here, we observed palmitate upregulated MCU protein expression in a mouse clonal β-cell, MIN6, under normal glucose, but not high glucose medium. Palmitate elevated baseline cytosolic Ca2+ concentration ([Ca2+]i) and reduced depolarization-triggered Ca2+ influx likely due to the inactivation of voltage-gated Ca2+ channels (VGCCs). Targeted reduction of MCU expression using RNA interference abolished mitochondrial superoxide production but exacerbated palmitate-induced [Ca2+]i overload. Consequently, MCU knockdown aggravated blockage of autophagic degradation. In contrast, co-treatment with verapamil, a VGCC inhibitor, prevented palmitate-induced basal [Ca2+]i elevation and defective [Ca2+]i transients. Extracellular Ca2+ chelation as well as VGCC inhibitors effectively rescued autophagy defects and cytotoxicity. These observations suggest enhanced mitochondrial Ca2+ uptake via MCU upregulation is a mechanism by which pancreatic β-cells are able to alleviate cytosolic Ca2+ overload and its detrimental consequences.
The activity of phospholipase A$_2$ (PLA$_2$) was identified and characterized from cytosolic and membrane fractions of oat cells, respectively. PLA$_2$ activity was determined fluorometrically in the presence of serum albumin using phospholipids labeled at sn-2-acyl position with 10-pyrenyldecanoic acid. When the cell-free extracts of oat tissues were fractionated by ultracentrifugation at 100,000 x g and the PLA$_2$ activity was assayed, we found that most of the PLA$_2$ activity was revealed from the cytoplasmic fraction rather than from the membrane fraction. The activity of cytosolic PLA$_2$ was dependent on Ca$^{2+}$ concentration and the optimum concentration of Ca$^{2+}$ was found to be 100 $\mu$M. It was also found that PLA$_2$ could be translocated toward the membrane site from the cytosol upon increasing Ca$^{2+}$ concentration. These results might suggest that an increased [Ca$^{2+}$]$_i$ by phytochrome action could promote the translocation of the cytosolic PLA$_2$ toward the membrane site.
Cytosolic $Ca^{2+}$ is an important regulator of tumor cell proliferation and metastasis. Recently, the strategy of blocking receptors and channels specific to certain cancer cell types has emerged as a potentially viable future treatment. Oral squamous cell carcinoma is an aggressive form of cancer with a high metastasis rate but the receptor-mechanisms involved in $Ca^{2+}$ signaling in these tumors have not yet been elucidated. In our present study, we report that bradykinin induces $Ca^{2+}$ signaling and its modulation in the human oral squamous carcinoma cell line, HSC-3. Bradykinin was found to increase the cytosolic $Ca^{2+}$ levels in a concentration-dependent manner. This increase was inhibited by pretreatment with the phospholipase C-${\beta}$ inhibitor, U73122, and also by 2-aminoethoxydiphenyl borate, an inhibitor of the inositol 1,4,5-trisphosphate receptor. Pretreatment with extracellular ATP also inhibited the peak bradykinin-induced $Ca^{2+}$ rise. In contrast, the ATP-induced rise in cytosolic $Ca^{2+}$ was not affected by pretreatment with bradykinin. Pretreatment of the cells with either forskolin or phorbol 12-myristate 13-acetate (activators of adenylyl cyclase and protein kinase C, respectively) prior to bradykinin application accelerated the recovery of cytosolic $Ca^{2+}$ to baseline levels. These data suggest that bradykinin receptors are functional in $Ca^{2+}$ signaling in HSC-3 cells and may therefore represent a future target in treatment strategies for human oral squamous cell carcinoma.
Although arginase primarily participates in the last reaction of the urea cycle, we have previously demonstrated that arginase II is an important cytosolic calcium regulator through spermine production in a p32-dependent manner. Here, we demonstrated that rhaponticin (RPT) is a novel medicinal-plant arginase inhibitor and investigated its mechanism of action on Ca2+-dependent endothelial nitric oxide synthase (eNOS) activation. RPT was uncompetitively inhibited for both arginases I and II prepared from mouse liver and kidney. It also inhibited arginase activity in both aorta and human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). Using both microscope and FACS analyses, RPT treatments induced increases in cytosolic Ca2+ levels using Fluo-4 AM as a calcium indicator. Increased cytosolic Ca2+ elicited the phosphorylations of both CaMKII and eNOS Ser1177 in a time-dependent manner. RPT incubations also increased intracellular L-arginine (L-Arg) levels and activated the CaMKII/AMPK/Akt/eNOS signaling cascade in HUVECs. Treatment of L-Arg and ABH, arginase inhibitor, increased intracellular Ca2+ concentrations and activated CaMKII-dependent eNOS activation in ECs of WT mice, but, the effects were not observed in ECs of inositol triphosphate receptor type 1 knockout (IP3R1-/-) mice. In the aortic endothelium of WT mice, RPT also augmented nitric oxide (NO) production and attenuated reactive oxygen species (ROS) generation. In a vascular tension assay using RPT-treated aortic tissue, cumulative vasorelaxant responses to acetylcholine (Ach) were enhanced, and phenylephrine (PE)-dependent vasoconstrictive responses were retarded, although sodium nitroprusside and KCl responses were not different. In this study, we present a novel mechanism for RPT, as an arginase inhibitor, to increase cytosolic Ca2+ concentration in a L-Arg-dependent manner and enhance endothelial function through eNOS activation.
The purpose of this study was to clarify the effect of silica on cytosolic free calcium mobilization and cell injury in primary cultured rat hepatocytes. Cytosolic free calcium concentration ([Ca$^{2+}$]) was measured employing calcium sensitive fluorescent dye, Fura-2 / AM, and cell injury was evaluated by determination of cellular ATP contents. Silica increased [Ca$^{2+}$], in a concentration-dependent manner in hepatocytes (10$^{-5}$ ~10$^{-2}$ M). Silica caused a biphasic increase in [Ca$^{2+}$], which was composed of an initial rapid rise and following sustained phase. $Ca^{2+}$ removal from the medium resulted in abolishment of initial and sustained phase of silica (10$^{-2}$ M)-induced [Ca$^{2+}$], in hepatocytes. The pretreatment with nifedipine (1 $\mu$M) attenuated silica-induced [Ca$^{2+}$], increases. Silica decreased cellular ATP contents in a dose-dependent manner. This silica-induced cell injury was attenuated by the pretreatment with EGTA (100 $\mu$M) and nifedipine (1 $\mu$M). This study suggests that the elevation of [Ca$^{2+}$], caused by silica may be due mainly to influx through a plasma membrane $Ca^{2+}$ channel and hepatotoxicity by silica relate with alteration of calcium homeostasis.ium homeostasis.
This study was designed to clarify the mechanism of the inhibitory effect of forskolin on contraction, cytosolic $Ca^{2+}$ level $([Ca^{2+}]_i)$, and $Ca^{2+}$ sensitivity in guinea pig ileum. Forskolin (0.1 nM ${\sim}$ 10 ${\mu}M$) inhibited high $K^+$ (25 mM and 40 mM)- or histamine (3 ${\mu}M$)-evoked contractions in a concentration-dependent manner. Histamine-evoked contractions were more sensitive to forskolin than high $K^+$-evoked contractions. Spontaneous changes in $[Ca^{2+}]_i$ and contractions were inhibited by forskolin (1 ${\mu}M$) without changing the resting $[Ca^{2+}]_i$. Forskoln (10 ${\mu}M$ ) inhibited muscle tension more strongly than $[Ca^{2+}]_i$ stimulated by high $K^+$, and thus shifted the $[Ca^{2+}]_i$-tension relationship to the lower-right. In histamine-stimulated contractions, forskolin (1 ${\mu}M$) inhibited both $[Ca^{2+}]_i$ and muscle tension without changing the $[Ca^{2+}]_i$-tension relationship. In ${\alpha}$-toxin-permeabilized tissues, forskolin (10 ${\mu}M$) inhibited the 0.3 ${\mu}M$$Ca^{2+}$-evoked contractions in the presence of 0.1 mM GTP, but showed no effect on the $Ca^{2+}$-tension relationship. We conclude that forskolin inhibits smooth muscle contractions by the following two mechanisms: a decrease in $Ca^{2+}$ sensitivity of contractile elements in high $K^+$-stimulated muscle and a decrease in $[Ca^{2+}]_i$ in histamine-stimulated muscle.
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