Agrobacterium tumefaciens-mediated cotyledonary-node explants transformation was used to produce transgenic cucumber. Cotyledonary-node explants of cucumber (Cucumis sativus L. cv., Eunsung) were co-cultivated with Agrobacterium strains (EHA101) containing the binary vector (pPZP211) carrying with CaMV 35S promoter-nptII gene as selectable marker gene and 35S promoter-DQ gene (unpublished data) as target gene. The average of transformation efficiency (4.01%) was obtained from three times experiments and the maximum efficiency was shown at 5.97%. A total of 9 putative transgenic plants resistant to paromomycin were produced from the cultures of cotyledonary-node explants on selection medium. Among them, 6 transgenic plants showed that the nptII gene integrated into each genome of cucumber by Southern blot analysis.
Calli were induced from the explants of infloresence, petiole and leaf blade of Cnidium officinale on MS medium with 2.4-D, while embryogenic callus was induced only from inflorescence explants. Somatic embryos of 78 per explant were formed during subculture of the explants on medium without 2.4-D after culture on medium with 2 mg/L 2.4-D. Cotyledonary variation, cup-shaped cotyledon of 49% and other abnormal cotyledons of 13.5 % was observed on the somatic embryos. However this variation could be overcomed by the addition of activated charcoal onto culture medium. Somatic embryos at cotyledonary stage germinated on MS basal medium but the germination rate was very poor, blow 50 %. Somatic embryos on the medium with activated charcoal showed improved germinaton.
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2017.06a
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pp.176-176
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2017
Hydropriming had positive effects on the time for germination to reach 50%, the germination index, the time to final germination percentage, and the number of uniform seedlings with enlarged cotyledons in in vitro germination of small watermelon. In addition, the highest shoot initiation was obtained from hydroprimed cotyledonary nodes ($95{\pm}6%$), followed by non-primed cotyledonary nodes ($78{\pm}6%$), hydroprimed cotyledons ($72{\pm}4%$), and non-primed cotyledons ($48{\pm}4%$). Meanwhile, no shoots were initiated from hypocotyls. The total number of shoots that initiated from cotyledonary nodes and cotyledon explants was insignificant, indicating that both cotyledons and cotyledonary node were good sources for the in vitro culture. Choosing explant sources that favor tetraploidy should be the key for producing higher polyploidy plants; a total of 10.5% of tetraploid regenerants were entirely identified from cotyledon explants. Cotyledons with highly differentiated cells might show higher variations than cotyledonary nodes with more preexisting meristematic cells. Cells of cotyledon tissue might undergo changes in ploidy level during differentiation of the culture, or it might be that some of the variations were already present in the tissues of the donor plant. Morphological changes in fruit length of tetraploid regenerants are genotype-dependent.
Soybean is the one of recalcitrant legume species for shoot induction. Shoot regeneration via direct organogenesis was investigated in five soybean cultivars, 'Dawon', 'Pungsan', 'Daewon', 'Taekwang' and 'Chongdoo 1' by using cotyledonary node explants. Out of 5 soybean cultivars, an efficient shoot regeneration condition was developed in the two soybean cultivars, 'Dawon' and 'Pungsan'. When various kinds of plant growth regulators with different concentration were estimated, the optimum medium condition for shoot induction in both soybean cultivars was MS + B5 vitamin supplemented with BA at concentration 2 mg/L. In addition, shoot formation efficiency was increased with 97.09% and 93.88% by the pretreatment of BA onto the explants before in vitro culture in both cultivars. Shoot induction in 'Dawon' cultivar was originated from epidermal tissue and sub-epidermal layers when histological changes were investigated under shoot regeneration after culturing cotyledonary node segments on shoot induction medium for 0 to 21 days. Especially, cell dedifferentiation was observed from parenchyma cells to meristematic cell in 3-day cultured segments.
Cotyledonary and hypocotyl explants of melon seedlings were cultured on Murashige and Skoog's (MS) medium supplemented with various concentrations of 2,4-Dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) and benzyladenine (B.A).Up to 22% of cotyledonary explants and 7%, of hypocotyl explants, respectively: Produced somatic embryos through intervening two types of calli: bright yellow compact (BYC) callus and pale-yellow compact (PYC) callus. BYC callus was capable of producing somatic embryos at initial culture, but it became necrotic as subrulhues proceeded. In contrast UC callus was incapable of producing somatic embryos during initial culture (first 6 weeks), but it became bright-yellow friable (BYF) callus with forming a few globular embryos after 2 months of subculture, indicating that the callus turned embryogenic. The embryogenic capacity of BYF maintained for over one year when the callus was sucultured at 4-week interval. Upon transfer onto MS basal medium the callus gave rise to numerous somatic embryos and subsequently converted to plantlets. Plantlets were transplanted to potting soil and grown to maturity in the phyotron.
Yang Zhi Hong;Jin Hua;Plaha Prikshit;Woong Bae Tae;Jiang Guo Bin;Woo Jong Gyu;Yun Han Dae;Lim Yong Pyo;Lee Hyo Yeon
Journal of Plant Biotechnology
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v.6
no.4
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pp.235-239
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2004
We studied the effect of genotype, explant, age of explant, medium (plant growth regulators and gelling agents), and standardized an efficient regeneration protocol for inbred lines of Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis). Of the different concentrations of NAA and BA tested, the combination of $5\;\cal{mg/L}\;BA\;and\;0.5\;\cal{mg/L}$ NAA gave the highest frequency of shoot regeneration. The cotyledonary explants had more shoot regeneration frequency ($\ge40\%$) than the hypocotyl ex-plants. Besides, the cotyledonary explants, excised from the 4-day old seedlings, showed higher shoot regene-ration ($56.7\%$). Of the three gelling agents and their concentrations used, 16 g/L agar was found to be the best for shoot regeneration. Shoot regeneration frequency in-creased significantly by supplementing the medium with $4\;\cal{mg/L}\;of\;AgNO_3$ MS medium devoid of NAA showed higher frequency of rooting in the regenerated shoots than the ones supplemented with NAA. Our improved regeneration protocol will be especially useful for the genetic transformation of Chinese cabbage inbred lines to develop transgenic hybrids.
Kim, Hyun-A;Min, Sung-Ran;Choi, Dong-Woog;Choi, Pil-Son;Hong, Seong-Gyun
Journal of Plant Biotechnology
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v.37
no.1
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pp.72-76
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2010
To develop transgenic cucumber tolerant to abiotic stress, a cotyledonary-node explants were co-cultivated with Agrobacterium tumefaciens (EHA101) carrying TPSP gene (pHC30-TPSP). After transfer to fresh medium every two week for eight weeks, putative transgenic plants were selected when shoots grown a length greater than 3 cm from the cotyledonary-node explants on selection medium supplemented with $5\;mgl^{-1}$ phospinotricin as selectable agent. The confirmation of transgenic cucumber was based on the Northern blot analysis. Thirty four shoots (5.2%) with resistance to phospinotricin were obtained from 660 explants inoculated. Of them, transformants were only confirmed from 11 plants (1.7%). Transgenic cucumber expressing TPSP gene was more synthesized at 3.8 times amounts of trehalose (0.014 mg g fresh $wt^{-1}$) than non-transformants (0.0037 mg g fresh $wt^{-1}$). However, all of transgenic plants showed abnormal morphology, including stunted growth (< height 15 cm), shrunken leaves, and sterility as compared with non-transgenic plants (> height 150 cm) under the same growth environment. These results lead us to speculate that the overproduction of trehalose was toxic for cucumber, even though that had known for rice as non-toxic.
To elucidate the relationship between in vitro flowering and the structure of cytokinins in ginseng (Panax ginseng C.A. Meyer), zygotic embryos, seedlings, and cotyledonary nodes were cultured on MS medium supplemented with 5 $\mu$M of various cytokinins (BA, kinetin, 2-iP, and zeatin) with or without GA$_3$ (5 $\mu$M). The frequency of in vitro flowering was the highest when explants were cultured on the medium containing BA regardless of the kinds of explants, followed by kinetin, 2-iP, and zeatin. Flowering frequency of cotyledonary node explants was significantly increased by the combined treatment of cytokinin and GA$_3$. Flowering frequency was highly correlated with the logP of cytokinins, indicating that the lipophilicity of each cytokinin may involved in the in vitro flowering of ginseng.
To induce adventitious buds, hypocotyl and cotyledonary explants from 7 to 10 day-old seedlings of lettuce (Lactuca sativa L.: two Japanese cultivars of crisphead lettuce and four Korean cultivars of leaf lettuce) were cultured or Murashige and Skoog (MS) and Schenk and Hildebrandt (SH) media supplemented with BA and NAA in the light for five weeks. Cotyledonary explants produced adventitious shoots at greater frequencies than hypocotyl explants. MS medium was more favorable to adventitious shoot formation than HS medium. Combination of 0.5 mg/L BA and 0.1 to 1 mg/L HPh in MS medium led to the greatest frequency (86%) in adventitious shoot formation. Creator than 95% of shoots excised from explants were rooted when cultured on MS basal medium.
Cho Mi-Ae;Song Yun-Mi;Park Yun-Ok;Ko Suck-Min;Min Sung-Ran;Liu Jang-Ryol;Lee Jun-Haeng;Choi Pil-Son
Journal of Plant Biotechnology
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v.32
no.4
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pp.257-262
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2005
Agrobacterium tumefaciens-mediated cotyledonary-node explants transformation was used to produce transgenic melon. Cotyledonary-node explants of melon (Cucumis melo L. cv. Super VIP) were co-cultivated with Agrobacterium strains (LBA4404, GV3101, EHA101) containing the binary vector (pPTN289) carrying with CaMV 35S promoter-gus gene as reporter gene and NOS promoter-bar gene conferring resistance to glufosinate (herbicide Basta) as selective agent, and the binary vector (pPTN290) carrying with Ubiquitin promoter-GUS gene and NOS promoter-nptll gene conferring resistance to paromomycin as selective agent, respectively. The maximum transformation efficiency (0.12%) was only obtained from the cotyledonary-node explants co-cultivated with EHA101 strain (pPTN289) on selection medium with 5 mg/L glufosinate and not produced a transgenic melon from the cotyledon or cotyledonary-node co-cultivated with other strains. Finally, five plants transformed showed the resistance in glufosinate antibiotic and the GUS positive response in leaf ($T_0$), flower ($T_0$), seeds ($T_1$) and plantlet ($T_1$). Southern blot analysis revealed that the gus gene integrated into each genome of transgenic melon.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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