The fusion rates of nuclear transplant embryos with various DC voltage were 55.6-79.2%. The significantly higher fusion rates of nuclear transplant embryos were achieved at the electric field strenght of DC 1.0-2.0kV/cm(72.0-79.2%) than DC 0.75kV/cm(55.6%, P<0.05). No significant differences in the percentage of embryos that cleaved(48.1, 55.4 and 42.6% respectively) and the percentage of cleaved embryos that developed to morulae/blastocyst(1.9, 5.3 and 1.9% respectively) could be found among the three types of in vitro culture system (Granulosa cell, BOEC co-culture and SOF, P>0.01). The age of the recipient cytoplast(30 vs 40hr) had no effect on the fusion rates and the rates of cleavage development(36.9 vs 44.1%, P>0.01).
This study was performed to establish the condition and the methods for the techniques of insertion the isolated blastomere cells into cytoplasm, in order to research the develop-mental ability of bovine embryo blastomere cells in vitro produced. After 24h in vitro ovary maturation with the ovaries from a slaughter house, in vitro fertilization was performed to the vital sperms which their mobility were decided by percoll gradient method, with 2~8 cell stage embryos, the blastomeres were isolated in $Ca^2$+. $Mg^2$+-free PBS, and following that embedded into agar and alginate solution, respectively. The rates of in vitro develop-ment are as follows ; in agar embedded 11 among 120(9.2%) 1 /2~1 /3 blastomers cleaved and 6 among 93(6.5%) 1 /4~1 /8 blastomeres cleaved. In sodium alginate-embedded 14 among 84(16.7%) 1 /2~1 /3 blastomeres cleaved and 6 among 85(7.1%) 1 /4~1 /8 blastomeres cleaved. In case of Na-alginate, the rate of the cells were better than those of agar. The results suggest that the techniques for embeeding the isolated blastomeres into gel may help cloning of bovine early embryo without nuclear transplantation.
The objectives of this study were to investigate the effects of trehalose as a cryoprotectant for porcine freeze-dried spermatozoa, to find the optimal freeze-drying time and storage periods of freeze-dried spermatozoa, and to find out pronuclear formation rates, cleaved rates, and embryo development through intracytoplasmic injection of freeze-dried spermatozoa on porcine oocytes. The survival rates of spermatozoa after freeze-drying with trehalose treatment were significantly higher than those of them without trehalose treatment (p<0.05). The highest survival rates were found at 75 mM trehalose treatment. The longer storage periods after freeze-drying seemed to have a lower survival rates. Development in culture of pig by ICSI with trehalose treatment were significantly higher than those of them without trehalose treatment (p<0.05). Shorter freeze-drying time of spermatozoa was resulted in the highest cleaved rates and embryo development.
Heat stress to bovine oocytes and embryos has suggested a potential role of retardation of their development. Limited study has reported on the effect of heat shock on sperm before using it for IVF. Caudal epididymal sperm cultured in 42$^{\circ}C$ incubator for 0.5, 1 and 2 h compared on sperm viability and oocyte development after its use for IVF to those of control. Oocytes were matured for 22 h and then inseminated with treated or control sperm for 16 h. Embryos were cultured in CRlaa medium, transferred to TCM199+10% FBS on day 4, and maintained on day 9. A higher proportion (84.1%, 0.5 h; 72%, 1 h: 65%, 2 h) in treated sperm was observed dead and abnormal pattern as 100% of consider as control. In control the rates of cleavage and development into blastocyst were 76% and 22%, respectively, and did not differ the rates between 1 h and 2 h of culture. Significant differences were appeared in the rates between treated for an hour and control (32% and 5% vs. 54% and 10%, respectively). Moreover increased time of culture is more retardation to be cleaved the oocytes. However, the rates of blastocyst from cleaved embryos in treated group similar to control (25% vs. 29%, respectively). The reason for this remains unclear, but male sperm, from preliminary experiment(data un-shown) for sexing of resulting embryos, would be more fragility on heat stress.
Early cleavage is a reliable prognostic tool for successful embryo transfer in assisted reproduction because early cleaved embryo show better pregnancy rate after transfer. There for, preparation of good embryo recipient is important factor to optimize efficiency of pig cloning. The present study was performed to evaluate the effect of early cleavage on the in vivo development of cloned embryos and to analyze breed, parity and estrous synchrony to optimize recipient for pig cloning. In vitro matured porcine oocytes derived from local slaughterhouse and fibroblasts derived from miniature pig fetuses were used for somatic cell nuclear transfer (SCNT). Reconstructed embryos were transferred to recipient pigs on the same day of SCNT or after 1~2 days of in vitro culture for selecting early cleaved embryos. Breed, parity and date of standing estrous of recipients were recorded for analysis. After 25~35 days after embryo transfer pregnancy was diagnosed using ultrasonography, and pregnant recipients were monitored till delivery. Between purebred and crossbred, no significant difference was founded in both pregnancy and delivery rates. However, early cleaved embryos showed significantly higher pregnancy (46.2%) and delivery (12.8%) rates compared to non-selectively transferred group (24.8% and 4.5%, respectively). The results also showed that the recipients showing standing estrous on the same day of SCNT and less than 4 parities were most suitable for pig cloning.
A new computer algorithm is described to order the restriction fragments of plasmid DNA which has been cleaved with several restriction endonucleases in single or double digestions rapidly with realistic error rates. The permutation and high weight on small fragments methods construct all logical circular map solutions. The program is written in Apple BASIC and run on an Apple II plus microcomputer with 64K memory. Several examples are presented which indicate the high efficiency of the profram in construction possible restriction map for YEp24.
This study was conducted to examine the viability of nuclear transfer bovine embryos following embryo transfer. Donor embryos were treated with nocodazole to arrest their cell-cycle-stage at mitotic(M) phase. After releasing from nocodazole blastomeres were separated and transferred into the enucleated oocytes(BC), or cultured in medium with aphidicolin. Freshly cleaved blastomeres within 1.5h after cleavage(AC) and non-cleaved ones up to 3h after releasing from nocodazole(NC) were transferred into the enucleated oocytes. Blastocysts derived from nuclear transfer were transferred to Day 7~8 recipient cows. Some blastocysts were vitrified and thawed before embryo transfer. Developmental rates to the blastocyst stage were higher in AC(18.1%, P<0.05) than BC(8.6%) and NC(5.1%). Blastocyst development slightly enhanced with aphidicolin(1~2$\mu\textrm{g}$/ml) treatment(16.9~22.6%) compared to non treated control(11.1%). Survival rate fo vitrified nuclear transfer embryos after thawing was 75%(24/32). Twnety-three vitrified nuclear transfer embryos and 3 fresh ones were transferred to 23 recipients, 6 heads were pregnant and 1 male calf(24 kg) was born from a recipient cow recevied one vitrifiedthawed nuclear transfer embryo at 277 days after embryo transfer. This result suggests that the nuclear transfer embryos can developed to term after vitrification andembryo transfer.
Methods for activation of reconstructed oocytes were examined for the production of nuclear transfer (NT) rat embryos using fetal neural stem cells as donor. Neural stem cells were isolated from Day 14.5 rat fetuses, and the oocytes for recipient cytoplasm were recovered from 4-week old Sprague Dawley rats. After enucleation and nuclear injection, the reconstructed oocytes were immediately exposed to activation medium consisting of 10 mM $SrCl_2$ for 4 h (immediate activation after injection; IAI), or cultured in vitro for $2\~3$ h before activation treatment (injection before activation; IBA). Pre-activated oocytes were also used for NT to test reprogramming potential of artificially activated oocytes. The oocytes were grouped as IIA (immediate injection after activation) and ABI (activation $2\~3$ h before injection). Following NT, the oocytes were cultured in vitro. Development of the NT embryos was monitored at 44 and 119 h after activation. The embryos in groups IAI, mA, and IIA were cleaved to the 2-cell stage at the rates of $36.6\%\;(15/41),\;39.5\%\;(17/43)\;and\;46.3\%$ (25/54), respectively. However, in the ABI group, only one embryo ($1.8\%$, 1/55) was cleaved after activation. After in vitro culture, two NT embryos from IAI group had developed to the morula stage $(4.9\%\cdot2/41)$. However, no morula or blastocyst was obtained in the other groups. These results suggest that immediate activation after injection (IAI) method may be used for the production of rat somatic cell NT embryos.
This experiment was carried out to investigate the effects of different IVM-IVC culture media factors, such as development rates according to the maturation media, collecting times from slaughter to initiation of incubation and with cumulus cells, on in vitro maturation of oocytes collected from 3∼5mm diameter follicles of the swine abattoir The development rates significantly(p<0.05) higher when the oocytes were matured TCM-199 media than NCSU-23 media. In comparing with TCM199 medium in presence of Earle's salts and Hank's salt, there were no significantly differences between each salt balance in cleaved rate and in number of morulae plus blastocyst. Among 1,455 immature oocytes, 999(68.6%) of oocytes were cleaved. The number of development to the morulae and blastocysts were 617(61.8%) include 62 balstocysts(6.2%).
The objective of this study was carried out to examine the selection effects of in vitro matured porcine follicular oocytes with polar body extrusion and early cleavage as non-invasive marker to know the developmental competence in advance. The porcine oocytes matured for 48 h were examined the polar body extrusion. The examined oocytes were matured for additional $16{\sim}18h$ and activated with 7% ethanol and cultured in $5{\mu}g/ml$ cytochalasin B for 5 h for diploid formation. The treated oocytes were cultured and examined the cleavage after 48 h and continued culturing for 5 days. The oocytes of 21.9% were discarded in morphological selection and 32.1% oocytes were discarded by failure of first polar body extrusion. The selected oocytes were matured and activated and then after 48 h the cleavage rates were examined. In morphologically selected oocytes, 15.8% oocytes were not cleaved and 52.6% oocytes were normally cleaved and 31.6% oocytes were hyper-cleaved over 8-cell stage. However in the first polar body extruded oocytes, 7.1% oocytes were not cleaved and 73.1% oocytes were normally cleaved and 19.8% oocytes were hyper-cleaved. The morphologically selected embryos that not cleavage-selected were developed in 16.7% up to blastocyst and the morphologically selected and cleavage-selected embryos were developed in 31.7%. The polar body extruded oocytes that were not carried out cleavage selection were developed in 39.0% and the polar body extruded and cleavage-selected embryos were developed 49.0%. The first cleavage timing was examined with 12 h interval after activation. In $0{\sim}12,\;12{\sim}24,\;24{\sim}36,\;and\;36{\sim}48h$ intervals, 4.1%, 68.6%, 19.1%, and 2.3% oocytes were cleaved and 5.9% oocytes were not cleaved until 48 after activation. The cleaved oocytes in each interval were cultured and developed upto blastocyst with 0, 39.1, 9.5, and 0%, respectively. This results suggests that polar body extruded and cleaved at $12{\sim}36h$ embryo has higher developmental potential than the others.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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