Citrate synthase 1 (mitochondrial) and citrate synthase 2 (nonmitochondrial) were purified from Saccharomyces cerevisiae. The physical and enzymatic characteristics of citrate synthase 2 were ananlyzed in comparison with citrate synthase 1. Both isoenzymes were shown to be dimeric proteins of identical subunits, and the molecular weights of the subunits were estimated to be 48.3kDa for citrate synthase 1 and 47.0kDa for citrate synthase 2, respectively. The optimal pH value for enzyme activity was pH 7.5 for both isoenzymes. However, the optimal temperature for the activity was strikingly different; while the activity of citrate synthase 1 reached its peak at 65.deg.C, that of citrate synthase 2 was maximal at 40.deg.C. Citrate synthase 2 showed much lower thermal and pH stability than citrate synthase 1. In addition, citrate synthase 2 was affected much more by the metal ions such as $Zn^{2+}$ , $Mn^{2+ , and $Co^{2+} than citrate synthase 1. Among the several possible regulatory metabolites tested, ATP showed the strongest inhibitory effect on both enzymes. ADP and NADH were found to have greater effect on citrate synthase 2 than on citrate synthase 1. Kinetic analysis revealed that citrate synthase 2 has approximately 7- and 3.5-fold lower affinity to acetyl CoA and to oxaloacetate, respectively, than citrate synthase 1.
To screen chaperone proteins from Schizosaccharomyce pombe (S. pombe), we prepared recombinant citrate synthase of the fission yeast as a substrate of anti-aggregation assay. Purified recombinant citrate synthase showed citrate synthase activity and was suitable for the substrate of chaperone assay. Several heat stable proteins including aspartyl aminopeptidase (AAP) for candidates of chaperone were screened from the supernatant fraction of heat-treated crude extract of S. pombe. The purified AAP migrated as a single band of 47 kDa on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The native size of AAP was estimated as 200 kDa by a HPLC gel permeation chromatography. This enzyme can remove the aspartyl residue at N-terminus of angiotensin I. In addition, AAP showed the heat stability and protected the aggregation of citrate synthase caused by thermal denaturation. This study showed that S. pombe AAP is a moonlight protein that has aspartyl aminopeptidase and chaperone activities.
Almost all of the aerobic organisms contain citric acid cycle (or, tricarboxylic acid cycle). This cycle is involved both in energy metabolism and biosynthetic reactions; generation of NADH which derives the synthesis of chemical energy, ATP, and provision of intermediates needed for the biosynthesis. Because of its importance in the cellular metabolism, the regulation of the TCA cycle and its component enzymes has been extensively studied by many biologists (7,28). Citrate synthase is resposible for the initial step of the cycle and has been recognized as the rate limiting step (14,121,26). Understanding of the mechanism of the expression of citrate synthase should be a key step for the elucidation of the regulation of the TCA cycle in the cell metabolism.
The enzymatic characteristics of Alcaligenes latus were investigated by measuring the variations of various enzyme activities related to biosynthesis and degradation of poly-${\beta}$-hydroxybutyrate (PHB) during cultivation. All PHB biosynthetic enzymes, ${\beta}$-ketothiolase, acetoacetyl-CoA reductase, and PHB synthase, were activated gradually at the PHB accumulation stage, and the PHB synthase showed the highest value among three enzymes. This indicates that the rate of PHB biosynthesis is mainly controlled by either ${\beta}$-ketothiolase or acetoacetyl-CoA reductase rather than PHB synthase. The enzymatic activities related to the degradation of PHB were also measured, and the degradation of PHB was controlled by the activity of PHB depolymerase. The effect of supplements of metabolic regulators, citrate and tyrosine, was also investigated, and the activity of glucose-6-phosphate dehydrogenase was increased by metabolic regulators, especially by tyrosine. The activities of ${\beta}$-ketothiolase and acetoacetyl-CoA reductase were also activated by citrate and tyrosine, while the activity of PHB depolymerase was depressed. The increased rate and yield of PHB biosynthesis by metabolic regulators may be due to the increment of acetyl-CoA concentration either by the repression of the TCA cycle by citrate through product inhibition or by the activation of sucrose metabolism by the supplemented tyrosine.
To screen molecular chaperones similar to small heat shock proteins (sHsps), but without ${\alpha}$-crystalline domain, heat-stable proteins from Schizosaccharomyces pombe were analyzed by 2-dimensional electrophoresis and matrix assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry. Sixteen proteins were identified, and four recombinant proteins, including cofilin, NTF2, pyridoxin biosynthesis protein (Snz1) and Wos2 that has an ${\alpha}$-crystalline domain, were purified. Among these proteins, only Snz1 showed the anti-aggregation activity against thermal denaturation of citrate synthase. However, pre-heating of NTF2 and Wos2 at $70^{\circ}C$ for 30 min, efficiently prevented thermal aggregation of citrate synthase. These results indicate that Snz1 and NTF2 possess molecular chaperone activity similar to sHsps, even though there is no ${\alpha}$-crystalline domain in their sequences.
The aim of the present study was to investigate the effect of glutamate on the biosynthesis of tylosin. Activities of enzymes involved in the metabolic pathway of glutamate to form tylactone, an essential precursor of tylosin, were determined using Streptomyces fradiae grown at different concentration of glutamate. As results, it was found that cell growth and tylactone formation was controlled by the metabolic flux of oxaloacetate. It was clear that cell growth was favored by the activities of citrate synthase and aspartate aminotransferase, while the tylactone synthesis was stimulated by the activity of methylmalonyl-CoA carboxyltransferase. Therefore it was concluded that channelling of oxaloacetate was a point for favoring either cell growth or tylosin biosynthesis.
The use of gltA gene, as a new biomarker for environmental stress biomonitoring, was investigated because of its key position as the first enzyme of the tricarboxylic acid (TCA) cycle. A recombinant bioluminescent Escherichia coli strain, EBJM2, was constructed using a plasmid carrying the citrate synthase (gltA) promoter transcribing the Photorhabdus luminescens IuxCDABE genes (gltA::luxCDABE). The responses from this strain were studied with five different classes of toxicants: DNA damage chemicals, phenolics, oxidative-stress chemicals, PAHs, and organic solvents. EBJM2 responded strongly to DNA damage chemicals, such as mitomycin C (MMC) and methyl-nitro-nitrosoguanidine (MNNG) and nalidixic acid with the strongest responses. In contrast, tests with several compounds from the other four classes of toxicants gave no significant response. Therefore, EBJM2 was found to be sensitive to DNA damage chemicals.
Sexually compatible heterothallic haploids and diploids therefrom of Saccharomycopsis lipolytica were compared with respect to production. Diploids constructed through mating were confirmed by random spore analysis, whereas those constructed through protoplast fusion were confirmed by haploidization. ATCC 44601 and IFO 1209 produced larger amount of citrate and isocitrate than IFO 1550 and IFO 1551. A mode of citrate production by diploids was intermediate of the parental haploid strains. The specific activities of citrate synthase and isocitrate lyase in IFO 1550 and IFO 1551 were higher than those in ATCC 44601 and IFO 1209, indicating little correlation between citrate production and specific activities of these enzymes.
The effects of heat shock, or all-trans retinoic acid, on the expression of the C-reactive protein mRNA in the HT-29 human colon carcinoma cells, as well as the functional role of the C-reactive protein as a molecular chaperone, were studied. The expression level of the C-reactive protein mRNA in the HT-29 cells was increased time-dependently when exposed to heat-shock, and dose-dependently when treated with all-trans retinoic acid. The activities of transglutaminase C and K in the HT-29 cells were significantly increased when treated with all-trans retinoic acid. The C-reactive protein prevented thermal aggregation of the citrate synthase and stabilized the target enzyme, citrate synthase. The C-reactive protein promoted functional refolding of the urea-denatured citrate synthase up to 40-70%. These results suggest that the C-reactive protein, which is induced in human colon carcinoma cells, when heated or treated with all-trans retinoic acid has in a part functional activity of the molecular chaperone.
Small heat shock proteins (sHSPs) function as molecular chaperones that protect cells against environmental stresses. In the present study, the genes of hsp17.6 and hsp17.7, cytosolic class I sHSPs, were cloned from a tropical plant, Ageratina adenophorum. Their C-terminal domains were highly conserved with those of sHSPs from other plants, indicating the importance of the C-terminal domains for the structure and activity of sHSPs. The recombinant HSP17.6 and HSP17.7 were applied to determine their chaperone function. In vitro, HSP17.6 and HSP17.7 actively participated in the refolding of the model substrate citrate synthase (CS) and effectively prevented the thermal aggregation of CS at $45^{\circ}C$ and the irreversible inactivation of CS at $38^{\circ}C$ at stoichiometric levels. The prior presence of HSP17.7 was assumed to suppress the thermal aggregation of the model substrate CS. Therefore, this report confirms the chaperone activity of HSP17.6 and HSP17.7 and their potential as a protectant for active proteins.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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