Kim, Gyu-Yong;Kim, Myeong-Dong;Han, Nam-Su;Seo, Jin-Ho
한국생물공학회:학술대회논문집
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2000.11a
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pp.191-193
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2000
A whole-cell biocatalyst was constructed by immobilizing an enzyme on the surface of the yeast Saccharomyces cerevisiae. The gene encoding Bacillus macerans cyclodextrin glucanotransferase(CGTase) was fused with the AGA2 gene encoding a small peptide disulfide-linked to the aga1, a cell wall protein of a-agglutinin. The plasmid was introduced S. cerevisiae and expressed in the medium consisting of 10g/L yeast extract, 20g/L peptone, and 20g/L galactose. The activity was detected with the formation of cyclodextrin(CD) from 10g/L soluble starch. Surface display of CGTase was also verified with the halo-test, flow cytometry, and immunofluorescence microscopy. The recombinant S. cerevisiae produced ${\alpha}-cyclodextrin$ more efficiently than the free CGTase by simultaneous fermentation and cyclization as yeast consumes glucose and maltose which are inhibitors for CD synthesis.
The genome of tomato spotted wilt virus (TSWV) is composed of three RNA segments, S, M, and L RNA and the 5.0 kb M RNA encodes two glycoproteins Gl, G2 and NSm protein of unknown function. In an effort to investigate the function of the NSm protein, antibody was raised against NSm fusion protein overexpressed in Escherichia coli. This antibody was used to detect the NSm protein by using western blot analysis and electron microscopic observation after immunogold labelling. For the cloning of the NSm gene, total RNA extracted from a TSWV infected plant was used for cDNA synthesis and polymerase chain reaction (PCR) instead of going through time-consuming virus purification. A protein band specifically reacting to the NSm antibody was detected from TSWV inoculated plants. The NSm protein was detected in the cell wall fraction and in pellet from low speed centrifugation when the infected plant tissue was fractionated into 4 fractions. In the immuno-electron microscopic observation, gold particles were found around the plasmodesmata of infected plant tissue. These results suggest that the NSm protein of TSWV plays some role in cell-to-cell movement of this virus.
Hollow mesoporous carbon nitride material with sphere shape was synthesized using polystyrene sphere as template and cyanamide as nitrogen and carbon atom sources via thermal treatment process. The process of the silica removal is not necessary because silica as template is not in use for the synthesis of hollow mesoporous carbon nitride material and any solvents are also not in use. The size of polystyrene spheres was about 170 nm. Hollow diameter and wall thickness were 82 nm and 13 nm, respectively, in hollow mesoporous carbon nitride sphere. Surface area, mesopore size and pore volume of hollow mesoporous carbon nitride material was $188m^2g^{-1}$, 3.8 nm and $0.35cm^3g^{-1}$, respectively. The wall in hollow sphere has graphitic structure. Hollow mesoporous carbon nitride material has potential applications in the area of fuel cell, catalysis, photocatalysis, electroemmision device, etc.
Based on a tracer study, starch phosphorylase was implicated as an agent in the starch synthesis in sweet potato roots. The enzyme was purified from the tissue as a cluster of isozymes with an average mw of 205K (fresh roots) or 159K (roots stored for 3 mon.). On SDS polyacrylamide gel electrophoresis, one large subunit of 98K mw and several small ones of 47${\sim}57K mw were observed. From the mw data and the results of peptide mapping and immunoelectrophoretic blotting using mono- and polyclonal antibodies, it was deduced that a large part of the large subunit was cleaved at the middle part of the peptide chain to give rise to the small subunits, and on storage, the enzyme molecules were further modified by proteolysis. During the course of phosphorylase purification, a proteinaceous inhibitor of the enzyme was isolated. It had a mw of 250K and was composed of 5 identical subunits of 51K mw. In the direction of starch synthesis, the inhibitor showed a noncompetitive kinetics with a Ki of $1.3{\times}10^{-6}\;M$. By immunohistochemical methods, both the enzyme and the inhibitor were located on the cell wall and amyloplast. Crossreacting materials of the inhibitor were present in spinach leaf, potato tuber and rice grain. These findings indicate the wide occurrence of the inhibitor and also imply its possible participation in regulating starch phosphorylase activity in vivo.
In this study, the kinetic properties of wild-type and C117D mutant H. influenzae MurA (Hi MurA), which catalyzes the first reaction in the biosynthetic pathway of the cell wall, were characterized. Purified recombinant Hi MurA was active at pH values ranging from pH 5.5 to pH 10, and its $K_m$ (UNAG), $K_m$ (PEP), and $k_{cat}$ values were measured to be 31 ${\mu}M$, 24 ${\mu}M$, and 210 $min^{-1}$, respectively. Hi MurA activity was effectively inhibited by fosfomycin with an $IC_{50}$ value of 60 ${\mu}M$. Hi MurA contains a cysteine residue (C117) at the loop region near the PEP binding, whereas MurA from fosfomycin resistant Mycobaterium tuberculosis or Chlamydia trachomatis contain an aspartate residue instead of the cysteine at the corresponding site. Aspartate substitution of Cys117 in Hi MurA shifted its optimum pH from 7.8 to 6.0. In addition, the $K_m$ values for UNAG and PEP were increased to 160 ${\mu}M$ and 150 ${\mu}M$, respectively, and the $k_{cat}$ value was significantly reduced to 41 $min^{-1}$. Furthermore, the C117D mutant form of Hi MurA was not inhibited by 1 mM fosfomycin. These results indicate that the Cys117 of Hi MurA is the binding site of fosfomycin and plays an important role in the fast turnover of the catalytic reaction.
Melittin (ME) from honeybee venom has a broad range of strong antimicrobial activity, but it has hemolytic activity against eukaryotic cells. In order to design peptides with powerful antifungal activity without cytotoxic property of ME and understand structure-antifungal activity relationships, the hybrid peptides derived from the sequences of ME and cecropin A (CA) or magainin 2 (MA), MA(10-17)ME(1-12) and CA(1-8)ME(1-12). were synthesized by solid phase method. MA(10-17)ME(1-12) showed potent antifungal activity comparable to ME against Fusarium oxysporum with no hemolytic activity against human red blood cells. The hybrid peptides showed strong inhibi- tion of (1, 3)-$\beta$-D-glucan synthase. This result indicates that the antifungal activity of the hybrid peptides against Fusarium oxysporum is attributed to the inhibition of cell wall synthesis. The results therefore showed a successful design of a peptide having antifungal activity without hemolytic property.
${\beta}$-Glucan is a chief structural polymer in the cell wall of yeast. ${\beta}$-Glucan has attracted intensive attention because of its wide applications in health protection and cosmetic areas. In the present study, the ${\beta}$-glucan biosynthesis pathway in S. Cerevisiae was engineered to enhance ${\beta}$-glucan accumulation. A newly identified bacterial ${\beta}-1$, 6-glucan synthase GsmA from Mycoplasma agalactiae was expressed, and increased ${\beta}$-glucan content by 43%. In addition, other pathway enzymes were investigated to direct more metabolic flux towards the building of ${\beta}$-glucan chains. We found that overexpression of Pgm2 (phosphoglucomutase) and Rho1 (a GTPase for activating glucan synthesis) significantly increased ${\beta}$-glucan accumulation. After further optimization of culture conditions, the ${\beta}$-glucan content was increased by 53.1%. This study provides a new approach to enhance ${\beta}$-glucan biosynthesis in Saccharomyces cerevisiae.
Many flowering plants possess genetically controlled self -incompatibility (SI) system that prevents inbreeding and promotes outcrosses. SI is usually controlled by a single, multiallelic S-locus. In gametophytically controlled system, SI results when the S-allele of the pollen is matched by one of the two S-alleles in the style, while in the sporophytic system self-incompatible reaction occurs by the interaction between the pistil genotype and genotype of, not the pollen, but the pollen parent In the former system the self-incompatible phenotype of pollen is determined by the haploid genome of the pollen itself but in the latter the pollen phenotype is governed by the genotype of the pollen parent along with the occurrence of either to-dominant or dominant/recessive allelic interactions. In the sporophytic type the inhibition reaction occurs within minutes following pollen-stigma contact, the incompatible pollen grains usually failing to germinate, whereas in gametophytic system pollen tube inhibition takes place during growth in the transmitting tissue of the style. Recognition and rejection of self pollen are the result of interaction between the S-locus protein in the pistil and the pollen protein. In the gametophytic SI the S-associated glycoprotein which is similar to the fungal ribonuclease in structure and function are localized at the intercellular matrix in the transmitting tissue of the style, with the highest concentration in the collar of the stigma, while in the sporophytic SI deposit of abundant S-locus specific glycoprotein (SLSG).is detected in the cell wall of stigmatic papillae of the open flowers. In the gametophytic system S-gene is expressed mostly at the stigmatic collar the upper third of the style length and in the pollen after meiosis. On the other hand, in the sporophytic SI S-glycoprotein gene is expressed in the papillar cells of the stigma as well as in e sporophytic tape is cells of anther wall. Recognition and rejection of self pollen in the gametophytic type is the reaction between the ribonuclease in the transmitting tissue of the style and the protein in the cytoplasm of pollen tube, whereas in the sporophytic system the inhibition of selfed pollen is caused by the interaction between the Sycoprotein in the wall of stigmatic papillar cell and the tapetum-origin protein deposited on the outer wall of the pollen grain. The claim that the S-allele-associated proteins are involved in recognition and rejection of self pollen has been made merely based on indirect evidence. Recently it has been verified that inhibition of synthesis of S$_3$ protein in Petunia inflata plants of S$_2$S$_3$ genotype by the antisense S$_3$ gene resulted in failure of the transgenic plant to reject S$_3$ pollen and that expression of the transgenic encoding S$_3$ protein in the S$_1$S$_2$ genotype confers on the transgenic plant the ability to reject S$_3$ pollen. These finding Provide direct evidence that S-proteins control the s elf-incompatibility behavior of the pistil.
Candida albicans infections are often problematic to treat owing to antifungal resistance, as such infections are mostly associated with biofilms. The ability of C. albicans to switch from a budding yeast to filamentous hyphae and to adhere to host cells or various surfaces supports biofilm formation. Previously, the ethanol extract from Paeonia lactiflora was reported to inhibit cell wall synthesis and cause depolarization and permeabilization of the cell membrane in C. albicans. In this study, the P. lactiflora extract was found to significantly reduce the initial stage of C. albicans biofilms from 12 clinical isolates by 38.4%. Thus, to assess the action mechanism, the effect of the P. lactiflora extract on the adhesion of C. albicans cells to polystyrene and germ tube formation was investigated using a microscopic analysis. The density of the adherent cells was diminished following incubation with the P. lactiflora extract in an acidic medium. Additionally, the P. lactiflora-treated C. albicans cells were mostly composed of less virulent pseudohyphae, and ruptured debris was found in the serum-containing medium. A quantitative real-time PCR analysis indicated that P. lactiflora downregulated the expression of C. albicans hypha-specific genes: ALS3 by 65% (p = 0.004), ECE1 by 34.9% (p = 0.001), HWP1 by 29.2% (p = 0.002), and SAP1 by 37.5% (p = 0.001), matching the microscopic analysis of the P. lactiflora action on biofilm formation. Therefore, the current findings demonstrate that the P. lactiflora ethanol extract is effective in inhibiting C. albicans biofilms in vitro, suggesting its therapeutic potential for the treatment of biofilm-associated infections.
The bacteriocin produced by Lactobacillus sp. GM7311 showed strong inhibitory activity against the growth of three Gram positive bacteria, Listeria monocytogenes, Bacillus subtilis, and Staphylococcus aureus. When the bacteriocin was added to the culture at different phases, viable cells of all of the tested strains were decreased, although the most inhibited phase was different. Thereby, when the bacteriocin $(100\;Bu/m{\ell})$ was added to exponential and stationary phase of L. monocytogenes, the rapid reduction of viable cell counts occured. And, in the case of B. subtilis, the highest inhibitory effect occured at lag phase and mid-exponential phase by the addition of the bacteriocin under same condition as mentioned above. Also, we can observe the accelerated reduction of survivors counts for the all of the phase except stationary phase in the S. auresus. Transmission electron microscopic observation of L. monocrogenes and B. subtilis treated with bacteriocin revealed apparent Iysis of the cell wall and excretion of the cell contents, indicating bacteriolysis. Also, the amino acids and fatty acids compositions were different from controls. However, the Iysis of cell wall didn't occur in S. aureus, though the cytoplasmic materials were reduced. This result indicates that the bacteriocin inhibits the synthesis of nuclear materials such as DNA, RNA and proteins.
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