Kim, Seon-Young;Lee, Chang-Hun;Kim, Kyung-Joo;Kim, Yeon-Soo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제11권2호
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pp.234-241
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2001
The C-terminal 393 bp region of the human interleukin-16 (IL-16) gene was cloned and expressed in E. coli along with mammalian cell lines. Recombinant IL-16 expressed from E. coli was 22 kDa on SDS-PAGE and showed 260% of chemoattractant activity at a concentration of $0.1\;{\mu}g/ml$. HeLa, COS, and Neuro-2a cells were transduced by recombinant retrovirus vector pLNC/IL-16/IRES/TK and the intracellular and secreted amounts of IL-16 produced by HeLa/IL-16/TK, COS/IL-16/TK, and Neuro-2a/IL-16/TK cells were determined by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). HeLa/IL-16/TK $(1{\times}10^5)$ and COS/IL-16/TK $(1{\times}10^5)$ cells secreted 36.1 and 13.3 ng of IL-16 for 48 h, respectively. Forty-nine ng and 86.4 ng of IL-16 remained in the cell lysates of HeLa/IL-16/TK and COS/IL-16/TK. Intracellular and secreted amounts of IL-16 from Neuro-2a/IL-16/TK $(5{\times}10^5)$ cells during 24 h cultivation were 50 ng and 3.3 ng, respectively. Also, HeLa and COS cells wee stably transfected with mammalian expression vector pCRIII/IL-16. Both culture media and cell lysates prepared from HeLa/IL-16 cells and COS/IL-16 cells showed chemoattractant activity ranging from 190% to 460% as compared to the control experiment. Expression of the herpes simplex virus thymidine kinase (HSV0tk) gene in pLNC/IL-16/ IRES/TK bicistronic retroviral expression vector was verified by performing a genciclovir (GCV) sensitivity assay. Finally, IL-16 repressed Tat-transactivated human immunodeficiency virus type 1 long terminal repeat (HIV-1 LTR) promoter activity.
Background: Protease-activated receptor 2 (PAR2) belongs to a family of G protein coupled receptors activated by proteolytic cleavage. Trypsin-like serine proteases interact with PAR2 expressed by a variety of tissues and immune cells. The aim of our study was to investigate whether PAR2 stimulation can lead to the activation of human mac rophages. Methods: PAR2-mediated proliferation of human macrophage cell line THP-1 was measured with MTT assay. We also examined the extracellular regulated kinase (ERK) phosphorylation and cytokine production induced by trypsin and PAR2-agonist using western blot and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), respectively. Results: Treatment of trypsin or PAR2-activating peptide increased cell proliferation in a dose-dependent manner, and induced the activation of ERK1/2 in THP-1 cells. In addition, trypsin-induced cell proliferation was inhibited by pretreatment of an ERK inhibitor (pD98059) or trypsin inhibitor (SBTI). Moreover, PAR2 activation by trypsin increased the secretion of TNF-${\alpha}$ in THP-1 cells. Conclusion: There results suggest that P AR2 activation by trypsin-like serine proteases can induce cell proliferation through the activation of ERK in human macrophage and that PAR2 may playa crucial role in the cell proliferation and cytokine secretion induced by trypsin-like serine proteases.
Objective: The aim of this study was to investigate the protective effect of wheat phytase as a structural decomposer of inflammatory nucleotides, extracellular adenosine triphosphate (ATP), and uridine diphosphate (UDP) on HT-29 cells. Methods: Phosphatase activities of wheat phytase against ATP and UDP was investigated in the presence or absence of inhibitors such as L-phenylalanine and L-homoarginine using a Pi Color Lock gold phosphate detection kit. Viability of HT-29 cells exposed to intact- or dephosphorylated-nucleotides was analyzed with an EZ-CYTOX kit. Secretion levels of pro-inflammatory cytokines (IL-6 and IL-8) in HT-29 cells exposed to substrate treated with or without wheat phytase were measured with enzyme-linked immunosorbent assay kits. Activation of caspase-3 in HT-29 cells treated with intact ATP or dephosphorylated-ATP was investigated using a colorimetric assay kit. Results: Wheat phytase dephosphorylated both nucleotides, ATP and UDP, in a dose-dependent manner. Regardless of the presence or absence of enzyme inhibitors (L-phenylalanine and L-homoarginine), wheat phytase dephosphorylated UDP. Only L-phenylalanine inhibited the dephosphorylation of ATP by wheat phytase. However, the level of inhibition was less than 10%. Wheat phytase significantly enhanced the viability of HT-29 cells against ATP- and UDP-induced cytotoxicity. Interleukin (IL)-8 released from HT-29 cells with nucleotides dephosphorylated by wheat phytase was higher than that released from HT-29 cells with intact nucleotides. Moreover, the release of IL-6 was strongly induced from HT-29 cells with UDP dephosphorylated by wheat phytase. HT-29 cells with ATP degraded by wheat phytase showed significantly (13%) lower activity of caspase-3 than HT-29 cells with intact ATP. Conclusion: Wheat phytase can be a candidate for veterinary medicine to prevent cell death in animals. In this context, wheat phytase beyond its nutritional aspects might be a novel and promising tool for promoting growth and function of intestinal epithelial cells under luminal ATP and UDP surge in the gut.
Objective : Morus alba Linne Root Bark (MRAL) is a medicinal herb in Korean Medicine, known for its anti-inflammatory and anti-allergic properties. However, its mechanisms of action and the cellular targets have not yet been found and the study was developed to investigate the allergic suppressive effect of MRAL. The purpose of this study is to investigate the allergic suppressive effects of MRAL on activation of MC/9 mast cells. Methods : Cytotoxic activity of MRAL (50, 100, 200, 400 ${\mu}g/mL$) on MC/9 mast cells measured using EZ-Cytox cell viability assay kit (WST reagent). The levels of interleukin-5 (IL-5), IL-13 and IL-4, IL-5, IL-6, IL-13 mRNA expression were measured by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and real-time PCR respectively. The expression of transcription factors such as GATA-1, GATA-2, NFAT, AP-1 and NF-${\kappa}B$ p65 DNA binding activity were measured by western blot and electrophoresis mobility shift assay (EMSA). Results : Our results indicated that MRAL (50 ${\mu}g/mL$, 100 ${\mu}g/mL$) significantly inhibited PMA/Ionomycin-induced production of IL-5 and IL-13 and the expression of IL-4, IL-5, IL-6 and IL-13 mRNA in MC/9 mast cells. Moreover, MRAL (50 ${\mu}g/mL$, 100 ${\mu}g/mL$) inhibited PMA/Ionomycin-induced GATA-1, GATA-2, NFAT-1, NFAT-2, c-Fos protein expression and NF-${\kappa}B$ p65 DNA binding activity in MC/9 mast cells. Conclusions : In conclusion, we suspect the anti-allergenic activities of MRAL, may be related to the regulation of transcription factors GATA-1, GATA-2, NFAT-1, NFAT-2, c-Fos and NF-${\kappa}B$ p65 DNA binding assay causing inhibition of Th2 cytokines IL-5 and IL-13 in mast cells.
Cheonggeumganghwa-tang(CGT) has been used for the purpose of prevention and treatment of bronchial asthma and allergic asthma in Korea. To investigate the biological effect of CGT, the author examined cytotoxicity and inflammatory cytokines secretion with human mast cell line, HMC-1. HMC-1 was stimulated with phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) and calcium ionophore A23187. CGT by itself had no effect on viability of HMC-1. The effects of CGT on the secretion of tumor necrosis factor-alpha (TNF-α) and interleukin (IL)-6 from HMC-1 were evaluated with enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). CGT (1 ㎎/㎖) inhibited PMA plus A23187 -induced TNF-α and IL-6 secretion, by 93.86 ± 2.05%, 68.69 ± 2.86%, respectively. CGT also inhibited the NF-κB (p50) expression. Taken together, these results suggest that CGT inhibit the production of inflammatory cytokines in HMC-1 cells through blockade of NF-κB activation.
Immunoglobulin G was purified by 40% $(NH_4)_2SO_4$ precipitation, DEAE-Sephadex, Sephadex G-150 column chromatographies from rabbit antiserum against V. vulnificus ATCC 27562 O antigen and used for immunological test for V. vulnificus isolates. The profiles of cell lysate total protein and outer membrane protein from the isolates were analyzed by SDS-PAGE and densitometry. The overall profiles in all isolates were similar. Distict protein band was observed in comparison with V. parahaemolyticus. Western Blotting with rabbit Immunoglobulin G against cell lysates and OMP of V. vulnificus isolates showed a strong antigenic response to antigen 66, 60, 54, 48, 33 and 26 kDa which were common to all strains examined. The 26 kDa antigen showed V. vulnificus specific antigen in comparison with Vibrio parahaemolyticus. A sandwich enzyme-linked immunosorbent assay was developed by using rat anti-V. vulnificus ATCC 27562 polyclonal antibodies as capture antibody, a purified rabbit IgG antibody as detector antibody, and goat anti-rabbit IgG-alkaline phosphatase conjugate as developer antibody. When four V. vulnificus isolates were tested, the reactivity showed from 50 to 70% by sandwich ELISA.
Objective : Activated endothelial cells mediate the cascade of reactions in response to hypoxia for adaptation to the stress. It has been suggested that hypoxia, by itself, without reperfusion, can activate the endothelial cells and initiate complex responses. In this study, we investigated whether hypoxia-induced endothelial products alter the endothelial permeability and have a direct cytotoxic effect on nerve cells. Methods : Hypoxic condition of primary human umbilical vein endothelial cells[HUVEC] was induced by $CoCl_2$ treatment in culture medium. Cell growth was evaluated by 3,4,5-dimethyl thiazole-3,5-diphenyl tetrazolium bromide [MTT] assay Hypoxia-induced products [$IL-1{\beta},\;TGF-{\beta}1,\;IFN-{\gamma},\;TNF-{\alpha}$, IL-10, IL-6, IL-8, MCP-l and VEGF] were assessed by enzyme-linked immunosorbent assay. Endothelial permeability was evaluated by Western blotting. Results : Prolonged hypoxia caused endothelial cells to secrete IL -6, IL -8, MCP-1 and VEGF. However, the levels of IL -1, IL -10, $TNF-{\alpha},\;TGF-{\beta},\;IFN-{\gamma}$ and nitric oxide remained unchanged over 48 h hypoxia. Hypoxic exposure to endothelial cells induced the time-dependent down regulation of the expression of cadherin and catenin protein. The conditioned medium taken from hypoxic HUVECs had the cytotoxic effect selectively on neuroblastoma cells, but not on astroglioma cells. Conclusion : These results suggest the possibility that endothelial cell derived cytokines or other secreted products with the increased endothelial permeability might directly contribute to nerve cell injury followed by hypoxia.
Objectives : Traditional medicines isolated from natural products often have positive effects in the prevention and healing of various immune disorders, such as allergy and atopic inflammation. Scrophulariae Radix (SR) been used in oriental medicine used for treatment of acute and chronic inflammatory diseases. Mast cells are known to play important roles in the initiation of allergic reactions. In this study, we investigated the effects of SR ethanol extract on inflammatory responses in IgE-stimulated RBL-2H3 mast cells. Methods : Rat basophilic leukemia RBL-2H3 cells were purchased from Korean Cell Line Bank (KCLB No. 22256). Cell viability was measured by MTT assay. Assays for ${\beta}-Hexosaminidase$ Secretion : RBL-2H3 cells were sensitized with dinitrophenyl-ImmunoglobulinE (DNP IgE). The next antigen DNP-BSA ($25ng/m{\ell}$) was added for 10 minutes and the reaction was terminated after 5 minutes in the ice bath. To determine ${\beta}-Hexosaminidase$ release, supernatants were aliquoted into 96-well plates. Samples were mixed with substrate solution and incubated for 1 h at $37^{\circ}C$. Absorbance was measured with a spectrophotometer at 405 nm. IL-4 and tumor necrosis $factor-{\alpha}$($TNF-{\alpha}$) concentrations in cell culture supernatants were measured using enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) kits. Results : The cytotoxicity of SRE in RBL-2H3 cells was less than 5%. SRE inhibited DNP-IgE-imduced degranulation of mast cells in RBL-2H3 cells. Also significantly decreased the levels of inflammatory cytokine, IL-4 and TNF-alpha. In this study, the SRE showed potential anti-allergic and antiinflammatory. Conclusions : These results indicate that SRE could be inhibit the allergic response through suppressing the mast cell activation.
Objectives : Jinnoe-san (JNS) is a novel herbal formula consisting of five oriental medicinal herbs including Polygalae Radix, Prunellae Spica, Perillae Herba, Betulae Cortex, and Lonicerae Flos. In this study, we investigated the effects and molecular mechanism of JNS on Parkinson's disease in vitro model. Methods : The effects of JNS on 1-methyl-4-phenylpyridinium ($MPP^+$)-induced cell death in SH-SY5Y cells were evaluated with a cell viability assay, flow cytometry, and western blots analysis. The effects of JNS on lipopolysaccharide (LPS)-stimulated BV2 microglia were determined with a nitric oxide (NO) assay, enzyme linked immunosorbent assays, and western blots analysis. Result : $MPP^+$-induced cell death in SH-SY5Y cells was significantly reduced by JNS pre-treatment in a dose-dependent manner. JNS inhibited the production of reactive oxygen species, mitochondria dysfunction, and apoptosis induced by $MPP^+$ in SH-SY5Y cells. Furthermore, JNS significantly activated Akt and ERK in SH-SY5Y cells and the ability of JNS to prevent mitochondria dysfunction by $MPP^+$ was antagonized by pre-treatment of LY294002 and PD98059, an Akt and ERK inhibitor, respectively. In addition, JNS inhibited LPS-induced NO and $PGE_2$ production as well as iNOS expression and secretion of TNF-${\alpha}$, pro-inflammatory cytokines without affecting the cell viability. JNS also suppressed LPS-induced ERK activation. Conclusions : These results demonstrate that JNS has a protective effect on the dopaminergic neurons against $MPP^+$-induced neurotoxicity and anti-inflammatory effect on the LPS-stimulated microglia. These findings provide evidences for JNS to be considered as a new prescription for treating Parkinson's disease.
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