본 연구는 돼지 수정란의 동결에 있어서 vitrification 동결 융해 후 내동제의 종류완 농도, PVP 및 sucrse와 trehalose의 첨가가 생존율에 미치는 영향을 조사하고자 수행하였다. 1 Vitrification동결에 이용된 각 발생단계의 체외수정란은 1,063개 중 2세포기는 245$(23.0\%)$개, 배반포는 $256(24.1\%)$, 초기 배반포는 $234 (22.0\%)$, 확장 배반포는 221개 $(20.8\%)$, hatching 배반포는 107개 $(10.1\%)$이었다. 상실배, 초기 배반포 및 확장배반포를 EDS와 ETS로 희석 후 vitrification동결 융해했을 때 생존율은 각각 $69.1\%,\;70.3\%,\;69.8\%$ 및 $62.5\%,\;61.7\%,\;63.6\%$로서 EDS군에서 확장 배반포군에서 가장 높은 생존율을 나타냈다. 2. 각 발생단계의 수정란을 vitrification동결 융해했을 때 생존율은 초기 배반포는 $61.1\%$, 확장 배 반포는 $27.8\%$, hatching 배 반포는 $16.7\%$로서 대조군의 $92.3\%,\;71.2\%,\;55.8\%$에 비해 낮았지만 높은 생존율을 나타냈다. 3. 수정란을 EDS와 EDT내동제에 $10\%$ 및 $20\%$ PVP 액을 첨가하석 희석 후 vitrification 동결 융해했을 때 정상적 발생을 나타내는 수정란은 $74.3\%,\;77.5\%$ 및 $79.4\%$ 및 $71.1\%$였다. 동결 융해한 수정란을 $24\~48$시간 배양했을 때 $37.1\%,\;40.0\%$ 및 $35.3\%,\;31.6\%$로서 생존율이 현저하게 감소하였다. 수정란에 EDS와 EDT와 $10\%$ 및 $20\%$의 PVP를 첨가한 내동제를 이용하여 동결 응해했을 때 PVP농도간의 생존율은 유의한 차이가 없었다. 4. 각 발생단계의 수정란을 EDS 내동제로 vitrification 동결 융해 후 배양했을 때 발생율은 상실배는 $58.2\%,\;36.4\%,\;14.5\%$였고, 초기 배반포는 $62.5\%,\;45.8\%,\;20.8\%$였고, 확장 배반포는 $74.1\%,\;61.1\%,\;29.6\%$였고, hatching 배반포는 $60.0\%,\;40.0\%,\;14.0\%$였다.
The purpose of this is to investigate the effects of vitrification in open pulled straws (OPS) on in vitro survival of porcine embryos. Blastocysts were produced by in vitro fertilization of slaughterhouse-derived, in vitro matured oocytes with frozen-thawed boar semen, and subsequent culture on granulosa cell monolayer. After frozen-thawing, embryos were culture in NCSU-23 medium with 5 mM hypotaurine, 4 mg/$m\ell$ BSA and 10 ng/$m\ell$ for 48 hrs to survival tests. When blastocysts were frozen-thawed by OPS methods, the embryos with normal morphology were 32.1, 34.5 and 38.9 % in early blastocyst, blastocyst and expanded blastocyat stages. The rates of partial damaged embryos were significantly (P<0.05) higher in early biastocysts than expanded blastocysts. In another experiment, the embryos frozen by OPS methods were cultured for 48 hrs for survival and developmental rates in vitro. The proportions of embryos hatched were 11.8, 20.2 and 33.3% in embryos frozen-thawed at stages of early blastocyst, blastocyst and expanded embryos. On the other hand, The proportions of embryo with normal morphology after culture were 23.5, 25.0 and 33.3% in embryos frozen-thawed at stages of early blastocyst, blastocyst and expanded embryos. These finding indicate the possible broader application for OPS methods that this procedure described is relatively harmless, that it can be used for blastocysts of different developmental stages.
Objective: The aim of this study is to compare the efficiency of a method for the cryopreservation of mouse blastocyst.. Methods: Mouse embryos were obtained at 2-cell stage and cultured to blastocyst stage in T6 medium supplemented with 10% fetal bovine serum. Morphologically normal blastocysts were collected and randomly divided to one control and four experimental groups. In control group, blastocysts were cultured in vitro continuously for additional two days. In group 2, blastocysts were exposed to vitrification solution (ethylene glycol) only without cryopreservation (exposure only group). In group 3, 4 and 5, blastocysts were cryopreserved by slow-freezing procedure with glycerol (slow-fteezing group) or by vitrification procedure using EM grids (EM grids group) and cryoloop (cryoloop group), respectively. Frozen blastocysts were thawed and cultured for additional two days. Twenty four hours after thawing, some blastocysts were fixed and stained with Hoechst 33342 (bisbenzimide) and the number of nuclei in each blastocysts were counted to confirm the survival of bias to cysts in experimental groups. Results: Survival rate and hatching rate of the blastocysts in slow-freezing group (24 h: 72.4% and 66.0%, 48 h: 63.2% and 64.6%) and EM grids group (24 h: survival rate 77.3%, 48 h: 70.1% and 71.4%) were significantly lower ($X^2$-test p<0.05) than those of control group (24 h: 93.4% and 86.0%, 48 h: 88.5% and 90.7%). In contrast, the survival rate and hatching rate of the blastocysts in cryoloop group (24 h: 84.1% and 84.1%,48 h 79.3% and 87.7%) is well compared with those in the control group. The mean (${\pm}SD$) cell number of blastocyst in the exposure only ($89.2{\pm}11.5$), EM grids ($85.0{\pm}10.3$) and cryoloop ($89.0{\pm}11.0$) groups, except slow-freezing group ($79.0{\pm}10.0$), were not significantly different from that of control group ($93.1{\pm}13.9$) 24 h after thawing (Student's t-test). Conclusion: This study demonstrates that higher survival rate of vitrified-thawed mouse blastocyst can be obtained using cryoloop as the embryo container at freezing rather than slow-freezing or vitrification using EM grids. The results of this study suggest that vitrification using cryoloop (with ethylene glycol) may be a preferable procedure for mouse blastocyst cryopreservation and could be applied to the human blastocyst cryopreservation.
The purpose of this study was to investigate the effects of developmental stage and equilibration time on survival of rabbit embryos following freezing by vitrification. Adult New Zealand White female rabbits were superovulated with PMSG and hCG. The 8-cell stage embryos were collected from 40 to 45 hours after hCG injection by flushing oviducts with Dulbecco's phosphated buffered saline and in vitro cultured in TCM-199 containing 10% fetal calf serum(FCS). Each embryos developed in vitro to 16-cell, compact morula and blastocyst was cryopreserved and cultured following thawing to examine their developmental potential to expanded blastocyst stage in vitro. The frozen-thawed-cultured embryos were stained with Hoechst 33342, and their nuclei were counted using a fluorescence microscope. On the toxicity test of EFS solution as cryopreservation, the survival rates of 8-cell stage embryos was decreased in reverse to increasing of exposure time over 5 minutes. The post-thaw survival rates of embryos on equilibration times was significantly(P<0.05) higher for 2 min. than for 5 or 10 minutes. From morula to blastocyst of rabbit embryos was more suitable than 8-cell stage for cryopreservation by vitrification. The higher post-thaw survival rate of embryos can be achieved by keeping the cryoprotectant at $4^{\circ}C$ than at $20^{\circ}C$. The mean number of nuclei per embryo following freezing by vitrification and in vitro culture to expanded blastocyst at compacted morula and blastcyst was not significantly differ from fresh blastocyst.
Vitrification methods are commonly used for mammalian reproduction through the long-term storage of blastocyst produced in vitro. However, the survival and quality of embryos following vitrification are significantly low compared with blastocyst from in vitro production (IVP). This study evaluates that the survival of frozen-thawed bovine embryos was relevant to mitochondrial superoxide derived mitochondrial activity. Here we present supplementation of the cryopreservation medium with Mito-TEMPO (0.1 µM) induced a significant (p < 0.001; non-treated group: 56.8 ± 8.7%, reexpanded at 24 h vs Mito-TEMPO treated group: 77.5 ± 8.9%, re-expanded at 24 h) improvement in survival rate of cryopreserved-thawed bovine blastocyst. To confirm the quality of vitrified blastocyst after thawing, DNA fragmentation of survived embryos was examined by TUNEL assay. As a result, TUNEL positive cells rates of frozen-thawed embryos were lower in the Mito-TEMPO treated group (4.2 ± 1.4%) than the non-treated group (7.1 ± 3.5%). In addition, we investigated the intracellular ROS and mitochondrial specific superoxide production using DCF-DA and Mito-SOX staining in survived bovine embryos following vitrification depending on Mito-TEMPO treatment. As expected, intracellular ROS levels and superoxide production of vitrified blastocysts after cryopreservation were significantly reduced (p < 0.05) according to Mito-TEMPO supplement in freezing medium. Also, mitochondrial activity measured by MitoTracker Orange staining increased in the frozen-thawed embryos with Mito-TEMPO compared with non-treated group. These results indicate that the treatment of Mito-TEMPO during cryopreservation might induce reduction in DNA fragmentation and apoptosis-related ROS production, consequently increasing mitochondrial activation for developmental capacity of frozen-thawed embryos.
Objective: The purpose of this study was to evaluate the survival rate of vitrified blastocyst according to the freezing vessels, equilibration time in cryoprotectant and artificial dehydration method. Methods: Human blastocysts were vitrified after loading onto the plastic straw, open-pulled straw (OPS), electron microscopy grid (EM grid) for 1.5 min or 3 min. They also were directly plunged into LN2 within 30sec. For artificial shrinkage of blastocysts, 36 gauge fine needle was pushed at the cellular junction of the trophectoderm into the blstocoele cavity until it shrank without damage of inner cell mass. Results: The survival rate of vitrified blastocysts on plastic straw, OPS, EM grid as freezing vessels were 26.7, 13.0 and 60.5%, respectively. The survival rate of EM grid was significantly higher than that of plastic straw and OPS (p<0.05). For 1.5 min equilibrium, the survival rates of early blastocyst (EB), middle blastocyst (MB) and late blastocyst (LB) were 64.4, 81.0, and 20.0% respectively. For 3 min equilibrium, the survival rates of EB, MB, and LB were 69.9, 50.0 and 57.5% respectively. The survival rates of EB and MB were significantly higher than that of LB in 1.5 min equilibrium group (p<0.05), however, the significance was not observed in 3 min equilibrium groups. In cytoplasmic shrinkage before vitrification, the survival rates of EB, MB and LB were 92.9, 100 and 75.9% respectively. The survival rate of MB was significantly higher than that of LB (p<0.05). The survival rates of vitrified blastocysts by artificial dehydration and slow-frozen blastocysts were not significantly different as 88.9 and 66.7%, respectively. Conclusion: This study showed that the vitrification of human blastocysts using EM grid and artificial dehydration is an effective method. Therefore, these methods would be an useful techniques for blastocyst cryopreservation.
W.S. Moon;S.R. Jeong;S.H. Jung;B.H. Son;Lee, J. W.;I.K. Kong
한국수정란이식학회:학술대회논문집
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한국수정란이식학회 2002년도 국제심포지엄
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pp.83-83
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2002
The purpose of this study was to investigate the warming temperature and exposed time on the post-thaw survival rate and viability of bovine blastocyst cryopreserved by GMP vitrification. Groups of three bovine IVP blastocysts were sequentially placed into vitrification solution before being loaded into the GMP straws and immersed into LN$_2$within 20 to 25 sec. The warming rate was increased 2 times of warming temperature for improvement of post-thaw survival rates. The frozen embryos were warmed either at 35 or 70$^{\circ}C$ for 1 or 2 sec and then diluted in sucrose solution. Post-thaw blastocysts were serially washed in 0.25 and 0.15 M sucrose in holding medium (HM: TCM199 supplemented with 10% FCS) and TCM-199 for each 5 min, respectively, and then cultured in TCM199 for 24 h. The rate of re-expanded blastocyst was significantly different fer 35 and 70$^{\circ}C$ warming temporature (76.4 vs. 89.3%; P<0.05). The rate of re-expanded blastocyst at 70$^{\circ}C$ for 1 sec was significantly higher than that for 2 sec (91.1 vs. 70.9%; P<0.05). The number of nuclei counted were significantly different among control, 35 and 70$^{\circ}C$ (121${\pm}$8.5 vs. 104${\pm}$11.7 vs. 114${\pm}$10.3; P<0.05). These results indicated that the increasing of warming rate can provide high survival rates of bovine IVP blastocysts. Especially, the best viability of post-thaw blastocyst could be thaw at 70$^{\circ}C$ for 1 sec. The warming temperature and exposed time far warming was considered to be limiting factors to the viability of bovine IVP embryos. he purpose of this study was to investigate the warming temperature and expose.
The developmental regulation of the preimplantation mammalian embryos is a fundamental step for preparing the implantation and it may be regulated by several autocrine and paracrine factors including platelet-activating factor. PAF improved the embryonic survival and implantation but its role during blastocyst development is still largely unknown. In this study, the effects and the possible pathway of PAF on developmental regulation of blastocyst to hatching stage were investigated. Developmental pattern in hatching embryo was a concentration-response curve showing maximal activity at 1 nM PAF, with decreasing activity at higher concentrations. $50{\mu}M$ 1-(5-isoquinolimnesulfonyl)-2-methylpiperazinme dihydrochloride (H-7), a PKC inhibitor, inhibited the progression of blastocyst to hatching embryo. In addition H-7 blocked the PAF effects on the blastocyst development. Besides tetradecanoylphorbol acetate (TPA), a PKC activator stimulated development of blastocyst to the hatching stage. These finding revealed that PAF support the blastocyst development to the hatching embryo. Also it is suggested that PAF action pathways in hatching supporting include the PKC signaling pathway.
The objective of this study was to optimize the vitrification method of in vitro produced bovine embryos. Thus, in vitro produced embryos at 8 cell, morula and blastocyst stages were vitrified on electron microscope grids (EM grids) or in open pulled straws (OPS) with EG5.5 (5.5 M ethylene glycol, 1.0 M sucrose and 10% FBS in m-DPBS medium) freezing solution and their survival rates after thawing were compared. The embryos on EM grids or in OPS were briefly exposed to EG5.5 freezing solution and plunged directly into liquid nitrogen within 30 to 35 sec. Post-thawed embryos were serially diluted in 0.5, 0.25 and 0.125 M sucrose in m-DPBS, each for 1 min, and then cultured in CRI aa medium supplemented with 10% FBS. Embryonic survival rate was assessed as re-expanded and hatched rates of those embryos after warming. The rates of re-expansion embryos did not significantly different between EM grid (8 cell: 42.10%, morula: 66.66% and blastocyst: 77.08%) and OPS (8 cell: 47.36%, morula: 61.90% and blastocyst: 83.33%) methods. In addition, the hatched rates in EM grid (8 cell: 31.57%, morula: 57.14% and blastocyst: 72.91%) were similar to those in OPS (8 cell. 34.21%, morula: 50.00% and Blastocyst: 77.08%). Interestingly, even at the same blastocyst stage, the in vitro survival of day 7 embryos (EM grid: 79.48 and OPS: 87.18%) was higher than those of day 8 embryos (EM grid: 72.10 and OPS: 82.06%). The total cell number of blastocyst developed in vitro after vitrification was examined with Hoechst 33342 staining to compare the embryo quality among different treatment groups. The total cell number of blastocyst was not significantly different between vitrified groups (EM grid: 162.4$\pm$8.0 and OPS: 158.4$\pm$7.1) and unvitrified control (168.0$\pm$5.6). These results indicate that both vitrification containers can provide the high rate of embryo survival. Moreover, the OPS container may not need a cap to protect the container from floating after immersion in L$N_2$. Therefore, this study suggest that bovine embryos can be cryopreserved easily, effectively and successfully by vitrification method using EM grid or OPS with EG5.5 freezing solution. In the future, the Pregnancy rate would be investigated after transfer of our vitrified embryos into the appropriated recipients.
In vitro fertilization(IVF) derived morula and blastocyst embryos were bisected by a simple method and cultured in vitro without zona pellucida And also bisected embryos were frozen-thawed and cultured in vitro) to evaluate the survival rate. The results obtained were as follows : The average number of grade I or II immature follicular oocytes recovered by slicing method per ovary was 11.9 from 142 ovaries. Following in vitro fertilization, the rates of cleavage and in vitro development to morula and blatocyst were 61.7 and 32.2% respectively. The successful bisection rate of IVE embryos was 67.51%, and the embryos of blastocyst stage were bisected successfully at significantly(P
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[게시일 2004년 10월 1일]
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