Centrobin/Nip2 was initially identified as a centrosome protein that is critical for centrosome duplication and spindle assembly. In the present study, we determined the expression and subcellular localization of centrobin in selected mouse tissues. Immunoblot analysis revealed that the centrobin-specific band of 100 kDa was detected in all tissues tested but most abundantly in the thymus, spleen and testis. In the testis, centrobin was localized at the centrosomes of spermatocytes and early round spermatids, but no specific signal was detected in late round spermatids and elongated spermatids. Our results also revealed that the centrosome duplication occurs at interphase of the second meiotic division of the mouse male germ cells. The centrobin protein was more abundant in the mitotically active ovarian follicular cells and thymic cortex cells than in non-proliferating corpus luteal cells and thymic medullary cells. The expression pattern of centrobin suggests that the biological functions of centrobin are related to cell proliferation. Consistent with the proposal, we observed reduction of the centrobin levels when NIH3T3 became quiescent in the serum-starved culture conditions. However, a residual amount of centrobin was also detected at the centrosomes of the resting cells, suggesting its role for maintaining integrity of the centrosome, especially of the daughter centriole in the cells.
The centrosome is a subcellular organelle from which a cilium assembles. Since centrosomes function as spindle poles during mitosis, they have to be present as a pair in a cell. How the correct number of centrosomes is maintained in a cell has been a major issue in the fields of cell cycle and cancer biology. Centrioles, the core of centrosomes, assemble and segregate in close connection to the cell cycle. Abnormalities in centriole numbers are attributed to decoupling from cell cycle regulation. Interestingly, supernumerary centrioles are commonly observed in cancer cells. In this review, we discuss how supernumerary centrioles are generated in diverse cellular conditions. We also discuss how the cells cope with supernumerary centrioles during the cell cycle.
PCD (programmed cell death) is important mechanism for development, homeostasis and disease. To analyze the gene expression pattern in brain cells undergoing PCD in response to serum deprivation, we analyzed the cDNA microarray consisting of 2,300 genes and 7 housekeeping genes of cortical cells derived from mouse embryonic brain. Cortical cells were induced apoptosis by serum deprivation for 8 hours. We identified 69 up-regulated genes and 21 down-regulated genes in apoptotic cells. Based on the cDNA microarray data four genes were selected and analyzed by RT-PCR and northern blotting. To characterize the role of UNC-51-like kinase (ULK2) gene in PCD, we investigated cell death effect by ULK2. And we examined expression of several genes that related with PCD. Especially GAPDH was increased by ULK2. Theses findings indicated that ULK2 is involved in apoptosis through p53 pathway.
Eun Ji Lee;Seung-Ho Baek;Chi Hun Song;Yong Hwan Choi;Kyung Ho Han
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제32권12호
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pp.1615-1621
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2022
Tissue regeneration is the ultimate treatment for many degenerative diseases, however, repair and regeneration of damaged organs or tissues remains a challenge. Previously, we showed that B1 Ab and H3 Ab induce stem cells to differentiate into microglia and brown adipocyte-like cells, while trafficking to the brain and heart, respectively. Here, we present data showing that another selected agonist antibody, P1 antibody, induces the migration of cells to the pancreatic islets and differentiates human stem cells into beta-like cells. Interestingly, our results suggest the purified P1 Ab induces beta-like cells from fresh, human CD34+ hematopoietic stem cells and mouse bone marrow. In addition, stem cells with P1 Ab bound to expressed periostin (POSTN), an extracellular matrix protein that regulates tissue remodeling, selectively migrate to mouse pancreatic islets. Thus, these results confirm that our in vivo selection system can be used to identify antibodies from our library which are capable of inducing stem cell differentiation and cell migration to select tissues for the purpose of regenerating and remodeling damaged organ systems.
Chinese hamster ovary (CHO) cells are the most widely used mammalian host for the commercial production of recombinant proteins. However, they show relatively low yields of recombinant proteins in comparison with microbial cells. Various strategies have been tried to overcome this drawback. The acetyl moieties are attached to the N-terminus of histone by histone acetyltransferase (HAT) while histone deacetylase (HDAC) removes histone-bound acetyl groups. HDAC inhibitor (HDACi), such as sodium butyrate, sodium propionate and valproic acid, can enhance specific productivity of CHO cells. Human albumin-erythropoietin (Alb-EPO) is a novel 105 kDa protein comprising recombinant human EPO fused to human albumin. In this study, we examined the effects of HDACi on the production of Alb-EPO in CHO cells with various concentrations in the range of 0-1 mM. The results showed that sodium butyrate was found to be the best HDACi for enhancing productivity. It enhanced not only the production of Alb-EPO but also the apoptosis of recombinant CHO cells.
Two-dimensional cultivation is typically used for cell growth, but the method reduces the characteristics of chondrocytes and stem cells, and limits culture area. Therefore, development of three-dimensional culture method is needed to mimic in vivo environment, improve quality of cells and scale-up efficiently. Improving proliferation and chondrogenesis is available by co-culture of chondrocytes and mesenchymal stem cells (MSCs) that leads to interaction between two kinds of cells. However, the co-culture has problems that permeability of sphere diminishes as aggregate size increased and ratio of two kinds of cells composing each spheres is different. In this work, co-cultivation method using controlled sphere composed of chondrocytes and MSCs was established and enhanced chondrogenesis. Periosteum-derived progenitor cells (PDPCs) that are appropriate for cell therapy source of articular cartilage were used as MSCs. Controlled spheres were formed in the hanging-drop plates and shifted for being induced chondrogenesis in 35-mm non-adhesive culture dishes at a rotation rate of 60 rpm. After inducing chondrogenesis, gene expressions related with chondrogenesis were found to be improved and it was apparent that the utilization of controlled spheres promoted chondrogenesis. As a result, available numbers of cells per unit area were increased and chondrogenic differentiation ability was improved compared to typical two-dimensional culture. This approach shows the potential in cartilage regeneration as it can provide sufficient numbers of chondrocytes.
The PC12 is the widely used cell line to study neuronal differentiation. We had extensively investigated the details of protein expression in differentiated PC12 cells by proteomic analysis. The cells were incubated at the presence of nerve growth factor. We had analyzed the expression changes in the differentiating PC12 cells by 2-dimensional electrophoresis and the identification of the proteins using MALDI-TOF MS. By comparing expression pattern in the time course, we identified the candidate genes which are associated with neuronal differentiation. Among these genes, we performed real-time PCR analysis to validate $Idh3{\alpha}$ expression by the time course. To identify the function of $Idh3{\alpha}$ in neuronal differentiation stage, the transfection of $Idh3{\alpha}$ to PC12 cells was performed. As a result, we proved that up-regulation of $Idh3{\alpha}$ causes reduction in neural differentiation of PC12 cells. Based on these data, we suggest that $Idh3{\alpha}$ plays a role to the neuronal differentiation.
Feeding biological cells one by one is the key point in the manipulation of cells. The conventional valve systems have many difficulties in feeding cells one by one, because they shut the whole flow of fluids when they are closed and have possibilities of breaking the fragile cells. They need some other equipments for continuous supply of suspension and to protect the cells. We design a check valve for feeding biological cells one by one using polyimide all the silicon substrate. The cells are fed by hydraulic pressure through the isotropically etched cavity. When the suspension flows continuously along the channel the valve is bent by hydraulic pressure and a cell is fed to the outlet. We have studied a cell fusion device fabricated with polyimide and electroplating. If the designed check valve is located in front of the cell fusion device it is helpful to fuse two different kinds of cells.
hybridoma cells producing IgM anti-pneuococcal 6B polysaccharide antibodies were induced to switch to IgG-producing cells in vitro by treating with acridine orange. Treating 0.5 $\mu\textrm{g}$/ml of acridine orange for 24 hours generated maximal number of variant cells. The maximal isotype switch frequency was 3${\times}$10-5, which is about 30-fold higher than the frequency of spontaneous switching. Resulting IgG-producing variants were enriched by sib selection and ELISA spot assay. Two IgG3-producing variant cells were finally cloned by limiting dilution. The variant cells produced similar amounts of antibodies as their parental cells did. The two switched antibodies had similar reactivity to pneumococcal 6B polysaccharide. When compared to their parental IgM antibodies, the switched IgG3 than that of IgM antibody. The antibodies will be useful as essential tools for comparative study of the role of heavy chain isotypes in protection against Streptococcus pneumoniae.
곤충세포주로 널리 이용되고 있는 Sf 세포주와 Bm 세포주의 분자생물학적 표식자를 탐색하기 위하여, 총 세포 단백질의 SDS-PAGE와 genomic DNA를 RAPD(Random Amplification of Polymorphic DNA) 방법으로 분석하였다. 그 결과, 총 세포 단백질 및 genomic DNA, 패턴에서 두 세포주를 뚜렷하게 구별할 수 있는 밴드를 탐색하였으며, 이들은 유용한 분자 생물학적 표식자로 이용될 수 있을 것이다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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