Bacteriocin J105 is a proteinaceous inhibitory substance produced by Latococcus latis subsp. lactis j105 isolated from Kimchi. Bacteriocin J105 was purified to homogeneity by the pH-dependent adsorption-desorption method and reverse-phase HPLC from the culture broth of Lactococcus lactis subsp. lactis J105. Purification of bacteriocin J105 resulted in a 1.47-fold increase in the specific activity and the recovery was 1.5%. Its molecular mass measured by the electrophoretic pattern in the sodium, dodecyl sulfate polyacrylamide gel was about 3.4 kDa. It was stable at $121^{\circ}C$ for 15 min at pH between 2 and 4. However, at pH above 5, bacteriocin was rapidly inactivated. Twenty-one residues from the N-terminal portion of bacteriocin J105 were sequenced using sequence analysis of lantibiotics. Bacteriocin J105 showed significant homology with known nisin A from lactic acid bacteria.
Purification of the bacteriocin from Lactococcus sp. 1112-1 was achieved by successive column chromatography on CM-Sephadex C-25 and Sephadex G-50, starting from cell disruption broth. 16.2% of the initial activity was recovered after this purification step and it was shown 123-fold increase in purification. Purified bacteriocin was shown a single band on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. This substance was rather stable at heat treatment and alkaline pH relatively. The residual antimicrobial activity was 38% when the bacteriocin was treated by heat at $100^{\circ}C$ for 60 min. And 23% of the activity remained at pH 8.0 after standing for 48 hr. The amino acid composition of purified bacteriocin was made up 26 residues.
We isolated microorganism secreting antimicrobial substance from tomato and identified as Enterococcus faecium. This substance was completely inactivated by pretense treatment and retained activity after catalase treatment. This result indicated that the antimicrobial activity of this substance was due to proteinaceous substance known as bacteriocin. The bacteriocin inhibited growth of Gram positive bacteria, such as Listeria monocytogenes, Leuconostoc mesenteroides, Lactobacillus plantarum, Streptococcus agalactiae, Streptococcus pyrogenes, and Gram negative bacteria, such as Pseudomonas aeruginosa. Purification of the bacteriocin was achieved by ethanol precipitation, ion exchange chromatography on CM Sepharose CL-6B, and gel filtration on Sephacryl S-100 HR. After these purification steps, the specific activity of the bacteriocin was increased 35.8 fold compared with culture broth. Purified bacteriocin was shown single band on SDS-PAGE and molecular weight was estimated 51 kDa. The residual activity of this bacteriocin was 3.3% at 10$0^{\circ}C$ for 60 min, and this bacteriocin was stable at pH 2~7.
Leuconostoc sp. LAB145-3A isolated from kimchi produced a bacteriocin which was active against food pathogens, such as Listeria monocytogenes, Enterococcus faecalis, and E. faecium. Bacteriocin production occurred during the early exponential phase of growth and was stable upto the late stationary phase of growth. Optimum conditions for bacteriocin production were $37^{\circ}C$ with an initial pH of 7.0. The bacteriocin of LAB145-3A was sensitive to proteases, but stable for solvents, pH change and heat treatment. It was stable even at autoclaving temperature for 15 min. The bacteriocin exhibited a bactericidal mode of action against Lactobacillus curvatus LAB170-12. The bacteriocin produced by Leuconostoc sp. LAB145-3A was purified by CM-cellulose cation exchange column chromatography and Sephadex G-50 gel filtration. The purification resulted in an approximate 10,000-fold increase in the specific activity. Approximately 4% of the initial activity was recovered. Purified bacteriocin exhibited a single band on the SDS-PAGE with an apparent molecular weight of 4,400 daltons. This bacteriocin was named leucocin K. Leuconostoc sp. LAB145-3A had two residential plasmids with molecular sizes of 23 kb and 48 kb. A comparison of plasmid profiles between LAB145-3A and its mutants revealed that the 23 kb plasmid (pCA23) was responsible for bacteriocin production and immunity to the bacteriocin in Leuconostoc sp. LAB145-3A.
The bacteriocin produced by Lactobacillus sp. GM7311 was purified by sequential steps including n-propanol/acetone treatment, CM-cellulose chromatography, and gel filtration on Sephacryl HR-100. The relative activity of bacteriocin increased 493-fold after final purification step with a recovery of 8.3%. Two protein bands of ca. 8,200 and 2,500 were detected by SDSPAGE of bacteriocin purified through CM-cellulose and sephacryl HR-100 chromatography and both of them had bacteriocin activity.
A bactriocin produced by Lactrococcus sp. HY449 was purified by sequential purfication steps such as n-propanol-acetone precipitation ion -exchange chromatography using CM-Sequential CL6B. gel filtration chromatography using Sephacry HR100 and reverse-phase chromatography using pro RPC HR 5/10. Reverse-phase chromatography the final step of the purfication yielded a single symmetrical peak of bacteriocin activity The purification resulted in final yield of 3.25% and 413.35 fold increase of the specific activity of bacteriocin. The active fraction from reverse-phase chromatography was used for N-terminal amino acid analysis . The purified bacteriocin contained isoleucine, leucine, methionine, and glycine at but N-terminal end no aromatic amino acids. Calculation of the number of amino acid residues in the bacteriocin revealed that it is consisted of 32 residues assuming the molecular weight of bacteriocin to be about 3.6kDa. Edman degrandation elucidated amino acid residues of the first four of the N-terminus to be $NH_2$-Ile-Leu-Pro-GIn.
Twenty seven strains of Lactobacillus acidophilus among 92 isolated from fecal contents of humans, pigs, calves, chickens, rodents and turkeys demonstrated inhibitory attributed to bacteriocin(s). The bacteriocin(s) were heat stable and nondialyzable proteinous compounds and exhibited narrow inhibitory spectra of activity. Neither hydrogen peroxide nor low pH were responsible for inhibitory action. All of the producer strains were resistant to their own bacteriocin or bacteriocin(s) produced by other strains. The bacteriocins from several strains from different host species were purified for further characterization. The bacteriocin(s) all exhibited similar characteristics.
The bacteriocin produced by E. faecium MJ-14 was precipitated with $50\%$ saturated ammonium sulfate in MRS broth and then the precipitated protein was dissolved in 20 mM sodium phosphate buffer (pH 6.0). The crude bacteriocin was purified by CM-sepharose CL 6B and Sephacry S-100 column chormatograhy. In this case, the purification fold of the bacteriocin was 114, therefore, its activity was 127,293 BU/mg of specific activity. Result from SDS-PAGE of the purified bacteriocin, it was obtained two protein bands of 4.3 kDa and 5.8 kDa having antilisterial activity.
A new bacteriocin, named lacticin 10790, was purified from Lactococcus lactis subsp. cremoris KFCC 10790 by sequential adsorption, immobilized metal-affinity, cation-exchange, and $C_{18}$ reverse-phase chromatographies. The molecular mass of the bacteriocin was estimated to be between 3,000 and 3,500 Da. Lacticin 10790 showed a broad antimicrobial spectrum against many gram-positive bacteria. The bacteriocin was stable to heat and in the pH range between 2 and 6. Lacticin 10790 was destroyed by digestion with proteases and exhibited a bactericidal mode of action. An amino acid composition analysis of purified lacticin 10790 revealed a high concentration of hydrophobic amino acids. The N terminus of the bacteriocin was found to be blocked, upon analysis by Edman degradation. The results suggest that lacticin 10790 is a class I bacteriocin.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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