Biofilm formation on the membrane surface results in the loss of permeability in membrane bioreactors (MBRs) for wastewater treatment. Studies have revealed that cellulose is not only produced by a number of bacterial species but also plays a key role during formation of their biofilm. Hence, in this study, cellulase was introduced to a MBR as a cellulose-induced biofilm control strategy. For practical application of cellulase to MBR, a cellulolytic (i.e., cellulase-producing) bacterium, Undibacterium sp. DM-1, was isolated from a lab-scale MBR for wastewater treatment. Prior to its application to MBR, it was confirmed that the cell-free supernatant of DM-1 was capable of inhibiting biofilm formation and of detaching the mature biofilm of activated sludge and cellulose-producing bacteria. This suggested that cellulase could be an effective anti-biofouling agent for MBRs used in wastewater treatment. Undibacterium sp. DM-1-entrapping beads (i.e., cellulolytic-beads) were applied to a continuous MBR to mitigate membrane biofouling 2.2-fold, compared with an MBR with vacant-beads as a control. Subsequent analysis of the cellulose content in the biofilm formed on the membrane surface revealed that this mitigation was associated with an approximately 30% reduction in cellulose by cellulolytic-beads in MBR.
This study was carried out to clarify the effects of antifungal Streptomyces sp. isolated from the soil grown kiwifruit on the growth inhibition of fruit rot (Botryosphaeria dothidea) infected in kiwi fruit plants in the southwestern districts of Jeonnam. Two hundred and fifty microorganisms were isolated and examined into the antifungal activity against Botryosphaeria dothidea. We screened and isolated six bacterial strains which have a strong inhibition against Botryosphaeria dothidea. And the best antifungal strain designated as the strain #120 showing 96.0% antifungal activity against Botryosphaeria dothidea was finally selected. The strain #120 was identified as Streptomyces sp. #120 based on its morphological, physiological, biochemical and chemotaxonomic characteristics.
Moderately halophilic bacterium, Kordia algicida gen. nov., sp. novo was isolated from seawater of Masan Bay, Korea, during algal blooming caused by Skeletonema costatum. This bacterium was grown on the ZoBell 2216e medium supplied aged seawater, but not grown the medium supplied $3\%$ NaCl. This bacterium showed absolute requirements for mono and divalent cations such as $Na^+,\;Mg^{2+}\;and\;Ca^{2+}$, since no growth was observed in the medium, which is not supplemented with one of $Na^+,\;Mg^{2+}\;and\;Ca^{2+}$ ions. In kinetic studies for three kinds of cation, Km values of $Na^+,\;Ca^{2+}\;and\;Mg^{2+}$ were determined to 0.202 M, 0.089 mM, and 0.189 mM, respectively. Also, $V_{max}({\mu}max)$ was 0.442 h, 0.411 hand 0.316 h. The bacterial cells were quickly lysed in the condition limited by the cations. This result should be suggested that Kordia algicida originated from marine.
Diesel oil-degrading bacterial strains were isolated from diesel oil contaminated soil and called HS series (HS1, HS2 and HS3). These strains were identified as Acinetobacter sp. (HS1) and Pseudomonas sp. (HS2 and HS3) based on Biolog test, cellular fatty acid composition, and 16S rDNA sequence analysis. These strains were coltivated in liquid minimal media containing 2% diesel oil, and diesel oil-degrading activity was measured. As result, all strains degraded over 70% of total diesel oil. But PAH (polycyclic aromatic hydrocarbon)- and pris- tane-degrading rate of these strain was below 20% of total PAH and pristane. The HS 1 strain showed highest hydrophobicity and low emulsifying activity among the experimental strains and high diesel oil-degrading activity. From the above-mentioned result, microcosm experiment was performed with the HS1 strain. The HS1 strain showed a degrading activity of over 80% of total diesel oil in microcosm test. And microbial activity was correlated to diesel oil-degrading activity. Therefore, it is suggested that the HS1 strains could be effectively used for the bioremediation for diesel oil.
A bacterial strain No. 40, which produced extracellular endoglucanase, was isolated from the rumen of Korean native goals and identified to be a genus of Actinomyces sp. The optimum conditions for endoglucanase production in PY-CMC medium were initial pH of 7.0 and 4 days of cultivation at $39^{\circ}C$. When localization of endoglucanase activity of Actinomyces sp. was determined, 68% of the enzyme activity was found in the extracellular fraction, 11% of the activity was detected in the periplasmic space and the remaining activity was in the intracellular and cell-bound fractions. The maximal endoglucanase activity was observed at pH 5.0 and it was most s table at pH 5.0. The optimum temperature of this enzyme activity was $55^{\circ}C$, but enzyme activity was gradually lost at temperature above $60^{\circ}C$. The crude enzyme was activated by addition of 10 mM cysteine and 10 mM DTT. But it was inhibited by addition of 10 mM $Cu^{{+}{+}}$ and $Fe^{{+}{+}}$. This crude enzyme could digest carboxymethylcellulose (CMC), and degrade xylan, avicel, pNPG, and pNPC to a less extent.
An experiment was conducted to determine whether there were any apparent differences in the microbial population, colonization pattern and digestion of guinea grass in situ, between cattle and swamp buffalo. Percentage losses in dry matter (DM), nitrogen (N) and neutral detergent fibre (NDF) of guinea grass were significantly (p<0.01) higher when incubated in the rumen of buffalo than in cattle. Buffalo also showed significantly (p<0.05) faster degradation rates than cattle for each grass component (DM, N, DNF). Light microscopy and SEM examination of the incubated grass materials showed that there were no apparent differences in the pattern of bacterial and fungal invasion and colonization of the grass materials between cattle and buffalo. Attachment of bacteria and fungal zoospores on the grass fragments occurred at 15 min after rumen incubation. After 3 h of rumen incubation, dense population of bacteria was observed in the thin-walled mesophyll and parenchyma tissues, whereas root-like fungal rhizoids were observed in both thin-walled and thick-walled cells. By 6 h, eroded zones were apparent in the thin-walled tissues and in thick-walled tissues with profuse rhizoids. After 24. 48 and 72 h of rumen incubation, most thin-walled tissues were degraded leaving mostly the thick-walled tissues. The predominant bacteria were the curved rods resembling Butyrivibrio sp., the thick rods resembling Fibrobacter sp., the diplococcoids resumbling Ruminococcus sp. And spirochetes. Fungi were predominantly those with spherical or oval sporangia. Fusiform sporangia with acuminate apices which resembled Ruminomyces sp. Were of lesser occurrence. Few protozoa were found on the grass fragments at all incubation times.
A bacterial strain producing a novel endo-inulinase, hydrolysing inulin into oligosaccharides was isolated from soil and identified as Arthrobacter sp. S37 The enzyme production was induced by inulin and jerusalem artichoke extract. The maximum enzyme production was obtained with medium containing 1.5% jerusalem artichoke extract, 1.0% yeast extract, $0.5%\;NaNO_3,\;0.05%\;MgSO_4{\cdot}7H_2O,\;0.05%\;KCl,\;0.0016%\;FeCl_3{\cdot}6H_2O\;and\;0.05%\;KH_2PO_4$. The optimum temperature and pH for the enzyme production were $30^{\circ}C$ and 8.0, respectively. Under the optimum condition, the enzyme activity in the culture broth reached at maximum, 10.8 units/ml after cultivation for 24 hours.
Twenty-four bacterial strains among alkalophillic bacteria isolated from soil samples were examined for the presence of type II restriction endonuclease in aerobic culture. One strain was found to contain specific enzyme to cleave lambda DNA. The characteristics of this microorganism is the ability to grow well in alkalophilic and high temperature condition, that is at pH 10.3 and $50^{\circ}C$. This strain was tentatively identified to Bacillus alkaloPhilus subsp. halodurans when morphological, physiological and biochemical characteristics were examined. The enzyme was purified from crude extract by streptomycin sulfate, ammonium sulfate precipitation, which was followed by DEAE-cellulose and phosphocellulose ion exchange column chromatography, and the subunit molecular weight was about, 32,000 daltons by polyacrylamide gel electrophoresis containing 0.1% SDS.
A bacterial strain capable of hydrolyzing xylan and locust bean gum (LBG) was isolated from farm soil by enrichment culture using mixture of palm kernel meal (PKM) and wheat bran as carbon source. Nucleotide sequence of 16S rDNA amplified from the isolate YB-1107 showed high similarity with those of genus Cellulosimicrobium strains. Xylanase productivity was increased when the Cellulosimicrobium sp. YB-1107 was grown in the presence of wheat bran or oat spelt xylan, while mannanase productivity was increased drastically when grown in the presence of PKM or LBG. Particularly, maximum mannanase and xylanase activities were obtained in the culture filtrate of media containing 0.7% PKM or 1% wheat bran, respectively. Both enzyme activities were produced at stationary growth phase. Mannanase from the culture filtrate showed the highest activity at $55^{\circ}C$ and pH 6.5. Xylanase activity was optimal at $65^{\circ}C$ and pH 5.5. The predominant products resulting from the mannanase or xylanase hydrolysis were oligosaccharides for LBG or xylan, respectively. In addition, the enzymes could hydrolyze wheat bran and rice bran into oligosaccharides.
A large residual fraction of aliphatic components of diesel prevails in soil, which has adverse effects on the environment. This study identified the most bio-recalcitrant aliphatic residual fraction of diesel through total petroleum-hydrocarbon fractional analysis. For this, the strain Acinetobacter sp. K-6 was isolated, identified, and characterized and investigated its ability to degrade diesel and n-alkanes (C18, C20, and C22). The removal efficiency was analysed after treatment with bacteria and nutrients in various soil microcosms. The fractional analysis of diesel degradation after treatment with the bacterial strains identified C18-C22 hydrocarbons as the most bio-recalcitrant aliphatic fraction of diesel oil. Acinetobacter sp. K-6 degraded 59.2% of diesel oil and 56.4% of C18-C22 hydrocarbons in the contaminated soil. The degradation efficiency was further improved using a combinatorial approach of biostimulation and bioaugmentation, which resulted in 76.7% and 73.7% higher degradation of diesel oil and C18-C22 hydrocarbons, respectively. The findings of this study suggest that the removal of mid-length, non-volatile hydrocarbons is affected by the population of bio-degraders and the nutrients used in the process of remediation. A combinatorial approach, including biostimulation and bioaugmentation, could be used to effectively remove large quantities of aliphatic hydrocarbons persisting for a longer period in the soil.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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