A bacterial strain producing a large amount of EPS was isolated from marine sediment sample collected from the Cheju Island, Republic of Korea. In the present study, the isolation and identification of this isolate, which is named Hahella chejuensis gen. nov., sp. nov., the effects of nutrients on the production of EPS, and some properties of this EPS are reported.
Kim, Jung Ho;Sang Ki Choi;Moon Ki Park;Young Ho Kim;Seung Kyo Suh;Cheol Joo Woo;Heui Dong park
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.6
no.3
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pp.167-172
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1996
The bacterial strain P2 degrading polychlorinated biphenyls (PCBs) was isolated from the soil around the Shinchun stream in Taegu after enrichment culture in a media containing biphenyl as the sole carbon source. The isolate was identified as a strain of Pseudomonas sp. based on its morphological and physiological characteristics. The optimal conditions of initial pH of media and temperature for growth were 7.0 and $30^{\circ}C$, respectively. Degradation of biphenyl and PCBs was confirmed by GC during the culture of Pseudomonas sp. P2 in a media containing them at a concentration of 500 mg/I. It was observed that Pseudomonas sp. P2 could degrade 97.0$%$ of biphenyl and 60.0$%$ of PCBs after 160 h culture.
The two-component signal transduction, which typically consists of a histidine kinase and a response regulator, is used by bacterial cells to sense changes in their environment. Previously, the SphS-SphR histidine kinase and response regulator pair of phosphate sensing signal transduction has been identified in Synechocystis sp. PCC 6803. In addition, some response regulators in bacteria have been shown to be cross regulated by low molecular weight phosphorylated compounds in the absence of the cognate histidine kinase. The ability of an endogenous acetyl phosphate to phosphorylate the response regulator, SphR in the absence of the cognate histidine kinase, SphS was therefore tested in Synechocystis sp. PCC 6803. The mutant lacking functional SphS and acetate kinase showed no detectable alkaline phosphatase activity under phosphate-limiting growth conditions. The results suggested that the endogenous acetyl phosphate accumulated inside the mutants could not activate the SphR via phosphorylation. On the other hand, exogenous acetyl phosphate could allow the mutant lacking functional acetate kinase and phosphotransacetylase to grow under phosphate-limiting conditions suggesting the role of acetyl phosphate as an energy source. Reverse transcription PCR demonstrated that the transcripts of acetate kinase and phospho-transacetylase genes in Synechocystis sp. PCC 6803 is up-regulated in response to phosphate limitation suggesting the importance of these two enzymes for energy metabolism in Synechocystis cells
A bacterial strain, producing extracellular inulin fructotransferase which converts inulin into di-D-fructofuranose dianhydride (DFA) was isolated from soil and presumed as Enterobacter sp. The DFA isolated on Bio-gel P2 column was identified as DFA III by high performance liquid chromatography and $^13C-nmr$ spectroscopy. The enzyme production was induced by inulin and markedly enhanced by the addition of corn steep liquor and $NH_4H_2P0_4$ for nitrogen source. Under optimum condition, the enzyme activity in the culture broth reached at maximum, 0.22 unit/ml after cultivation for 72 hour.
A bacterial strain KP-364 producing extracellular keratinolytic protease was isolated from the soil of the poultry fac-tory. It was identified as Pseudomonas sp. based on its morphological and physiological characteristics, The optimal culture conditions for the production of keratinolytic protease by Pseudomonas sp. KP-364 were investigated. The composition of optimal medium for the keratinolytic protease was 2.0% glucose, 0.5% soybean meal. 0.5% $NaNO_3$ and 0.2% KCI Optimal initial pH for production of Keratinolytic protease production were 6.5 and $37^{\circ}C$ respec- tively. The keratinolytic protease production reached a maximum of 1,270 U/ml/hr after 48 hours cultivation under the optimal culture conditions.
SOON-DUCK HONG;SHIN, WOO-CHANG;DONG-SUN LEE;TAE-HO KIM;JU-HYUNG WOO;JIN-MAN LEE;JONG-GUK KIM
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.5
no.2
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pp.80-86
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1995
The bacterial strain WC-17 able to produce chitinase was isolated from soil using an enrichment technique. The isolated strain was identified as Acinetobacter sp. judging by their morphological and physiological characterisitics. The optimal culture conditions for the production of chitinase of Acinetobacter sp. WC -17 are 1.5% colloidal chitin and 1 % tryptone at $30^{\circ}C$ with pH 6.5. Since the enzyme was rapidly produced in a culture supplied with chitin, glucose, or N-acetylglucosamine but not with other polymers and monosaccharide, the enzyme was considered to be an inducible enzyme. Notably N- acetylglucosamine and glucose were found to be effective inducers at low concentrations but repressors at excessive concentrations. The cultural supernatant of Acinetobacter sp. WC-17 inhibited the growth of phytopathogenic fungi such as P.oryzae, R.solani, and F.solani. Among the phytopathogenic fungi tested, P.oryzae was the most sensitive. The conventional agar plate (PDA containing 1 % colloidal chitin) method also produced the same result.
A bacterial strain producing high level of an extracellular phytase was isolated from cooked rice and identified as a strain of Bacillus sp. and designated as Bacillus sp. KHU-10. Optimum culture conditions were investigated for the maximum productivity of phytase by Bacillus sp. KHU-10. 1.0% Maltose and 1.0% peptone with 0.5% beef extract were the best carbon source and nitrogen source, respectively. The addition of $CaCl_2$, stimulated the enzyme productivity with concentration between 0.01% and 0.2%, in the medium. Although sodium phosphate increased the cell mass, the enzyme activity decreased. Calcium phytate and wheat bran containing phytate did not enhance the enzyme production. Under the optimum medium, the production of the phytase reached the highest level of 0.2 unit/ml after 4 days of incubation.
A strain of Pseudomonas sp. isolated from soil was shown to produce a high level of extracellular endo-inulinase. In this work, the endo-inulinase gene (inu1) of the bacterial strain was cloned into the plasmid pBR322 by using EcoRI restriction endonuclease and E. coli HB101 as a host strain. One out of 7, 000 transformants obtained from the above cloning experiment formed a clear zone around its colony on the selective medium supplemented with 2.0% inulin after a prolonged incubation at 37$\circ$C and subsequent cold shock treatment. The functional clone was found to carry a recombinant plasmid (pKMG50) with a 3.7 kb genomic insert containing the genetic information for the inulinase activity. The inulinase from E. coli HB101/pKMG50 was proved to be an endo-acting enzyme and produced constitutively in the recombinant E. coli cells. Zymogram of the enzyme from the recombinant cells with inulin substrate indicated that the molecular mass of the active protein was 190 Kd, while that of the endo-inulinase from the Pseudomonas strain was 170 Kd. This size discrepancy suggested that the inulinase from the recombinant E. coli HB101 cells might be the initial product of translation, not the mature form produced in the strain of Pseudomonas sp..
Kim, Yun-Sook;Jeong, Seong-Yun;Lee, Sang-Joon;Lee, Won-Jae
Journal of Environmental Science International
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v.18
no.4
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pp.435-443
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2009
A bacterial strain SY-97 that showed algicidal activity against Cochlodinium polykrikoides was isolated from coastal water of Uljin (eastern coast of Korea) in August, 2005. The isolated strain was identified as Brachybacterium sp. by morphological and biological tests, and analysis of 16S rDNA sequence. The optimal culture conditions for the growth of strain SY-97 were $30^{\circ}C$, initial pH 7.0, and salinity 2.0%. From the result of cell culture insert experiment, Brachybacterium sp. SY-97 is assumed to produce secondary metabolites which have algicidal activity. When 10% culture filtrate of this strain was applied to C. polykrikoides ($1.2{\times}10^4\;cells/m{\ell}$) cultures, 100% of C. polykrikoides cells was destroyed within 15 hours. The released algicides were heat-tolerant to $100^{\circ}C$ and stable in pH $6.0{\sim}10.0$. These results suggest that Brachybacterium sp. SY-97 is potentially useful for controlling outbreaks of C. polykrikoides.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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