Kim, Chang-Jae;Moon, Se-Ho;Lee, Byung-Ho;Chung, Mee-Young;Chea, Jun-Seuk;Lee, Mun-Yong;Chun, Myung-Hoon
The Korean Journal of Pain
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v.11
no.2
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pp.182-193
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1998
Background: Ciliary neurotrophic factor (CNTF), identified as a survival factor for developing peripheral neurons is upregulated by reactive astrocytes in the traumatized tissue and in areas of terminal degeneration after a brain lesion. But in the spinal cord, CNTF is expressed in the non-astrocytic phenotypic, maybe oligodendrocytes. The present study was undertaken to determine the upregulation of CNTF expression in reactive astrocytes following spinal cord lesion in the rat. Methods: Unilateral incision of the dorsal funiculus at the thoracic level was performed and rats were sacrificed on days 3, 7, 14 and 28 postlesion. Western blot analysis, immunocytochemical analysis and double immunofluorescence for CNTF and glial fibrillary acidic protein (GFAP) were performed after spinal cord lesion. Results: A major band with 24 kDa and additional band of higher molecular weight form were detectable, and the intensity of the 24 kDa immunoreactive band increased up to 14 days postlesion and decreased toward laminectomized control values. CNTF immunoreactivity was markedly upregulated in the injured dorsal funiculus and adjacent gray matter. The time course of CNTF expression is coincident with the appearance of reactive astrocytes in the injured spinal cord. Moreover, double immunofluorescence for CNTF and glial fibrillary acidic protein (GFAP) revealed that CNTF immunoreactivity was in GFAP immunoreactive astrocytes. Conclusions: These results show that CNTF upregulation occurred in reactive astrocytes following spinal cord lesion, and suggest a role for CNTF in the regulation of astrocytic responses after spinal cord injury.
The present study demonstrates the effect of fibrates, agonists of $PPAR{\alpha}$ on cytokines-induced proliferation in primary cultured astrocytes. Alone or combination treatment with cytokines, such as IL-$1{\beta}$ (10 ng/ml), $IFNP{\gamma}$ (10 ng/ml), and TNF-$\alpha$ (10 ng/ml) cause a significant increase of cell proliferation in a time-dependent manner. Treatment of astrocytes with bezafibrate and fenofibrate (0, 5, and $10\;{\mu}M$) reduced the $IFNP{\gamma}$ and IL-$1{\beta}$-induced cell proliferation in a dose-dependent manner. To address the involvement of IL-6 on the $IFNP{\gamma}$ and IL-$1{\beta}$-induced cell proliferation, released IL-6 level was measured. $IFNP{\gamma}$ and IL-$1{\beta}$ cause an increase of released IL-6 protein level in a time-dependent manner. Furthermore, pretreatment with IL-6 antibody (0, 0.1, 1, 2.5, and 5 ng/ml) dose-dependently inhibited the $IFNP{\gamma}$ and IL-$1{\beta}$-induced cell proliferation. However, bezafibrate and fenofibrate did not affect increased mRNA and protein levels of IL-6 in $IFNP{\gamma}$ and IL-$1{\beta}$-stimulated astrocytes. Taken together, these results clearly suggest that activation of $PPAR{\alpha}$ attenuates the $IFNP{\gamma}$ and IL-$1{\beta}$-induced cell proliferation through IL-6 independent pathway.
Peroxynitrite is a potent neurotoxic molecule produced from a reaction between NO and super-oxide and induces NO-mediated inflammation under neuropathological conditions. Previously, we reported that glucose deprivation induced ATP depletion and cell death in immunostimulated astrocytes, which was mainly due to peroxynitrite. In this study, the role of MAPKs (ERK1/2, p38MAPK, and JNK/SAPK) signal pathway in the SIN-1/glucose deprivation-induced death of astrocytes was examined. A combined treatment with glucose deprivation and $50 {\mu}M$ SIN-1, an endogenous peroxynitrite generator, rapidly and markedly increased the death in rat primary astrocytes. Also, SIN-1/glucose deprivation resulted in the activation of MAPKs, which was significantly blocked by the treatment with $20{\mu}M$ MAPKs inhibitors (ERK1/2, PD98059; p38MAPK, SB203580; JNK/SAPK, SP600125). Interestingly, SIN-1/glucose deprivation caused the loss of intracellular ATP level, which was significantly reversed by MAPKs inhibitors. These results suggest that the activation of MAPKs plays an important role in SIN-1/glucose deprivation-induced cell death by regulating the intracellular ATP level.
Background: Gintonin (GT), a novel ginseng-derived exogenous ligand of lysophosphatidic acid (LPA) receptors, has been shown to induce cell proliferation and migration in the hippocampus, regulate calcium-dependent ion channels in the astrocytes, and reduce β-amyloid plaque in the brain. However, whether GT influences autophagy in cortical astrocytes is not yet investigated. Methods: We examined the effect of GT on autophagy in primary cortical astrocytes using immunoblot and immunocytochemistry assays. Suppression of specific proteins was performed via siRNA. LC3 puncta was determined using confocal microscopy. Results: GT strongly upregulated autophagy marker LC3 by a concentration- as well as time-dependent manner via G protein-coupled LPA receptors. GT-induced autophagy was further confirmed by the formation of LC3 puncta. Interestingly, on pretreatment with an mammalian target of rapamycin (mTOR) inhibitor, rapamycin, GT further enhanced LC3-II and LC3 puncta expression. However, GT-induced autophagy was significantly attenuated by inhibition of autophagy by 3-methyladenine and knockdown Beclin-1, Atg5, and Atg7 gene expression. Importantly, when pretreated with a lysosomotropic agent, E-64d/peps A or bafilomycin A1, GT significantly increased the levels of LC3-II along with the formation of LC3 puncta. In addition, GT treatment enhanced autophagic flux, which led to an increase in lysosome-associated membrane protein 1 and degradation of ubiquitinated p62/SQSTM1. Conclusion: GT induces autophagy via mTOR-mediated pathway and elevates autophagic flux. This study demonstrates that GT can be used as an autophagy-inducing agent in cortical astrocytes.
Mitigating secondary delayed neuronal injury has been a therapeutic strategy for minimizing neurological symptoms after several types of brain injury. Interestingly, secondary neuronal loss appeared to be closely related to functional loss and/or death of astrocytes. In the brain damage induced by agonists of two glutamate receptors, N-ethyl-D-aspartic acid (NMDA) and kainic acid (KA), NMDA induced neuronal death within 3 h, but did not increase further thereafter. However, in the KA-injected brain, neuronal death was not obviously detectable even at injection sites at 3 h, but extensively increased to encompass the entire hemisphere at 7 days. Brain inflammation, a possible cause of secondary neuronal damage, showed little differences between the two models. Importantly, however, astrocyte behavior was completely different. In the NMDA-injected cortex, the loss of glial fibrillary acidic protein-expressing ($GFAP^+$) astrocytes was confined to the injection site until 7 days after the injection, and astrocytes around the damage sites showed extensive gliosis and appeared to isolate the damage sites. In contrast, in the KA-injected brain, $GFAP^+$ astrocytes, like neurons, slowly, but progressively, disappeared across the entire hemisphere. Other markers of astrocytes, including $S100{\beta}$, glutamate transporter EAAT2, the potassium channel Kir4.1 and glutamine synthase, showed patterns similar to that of GFAP in both NMDA- and KA-injected cortexes. More importantly, astrocyte disappearance and/or functional loss preceded neuronal death in the KA-injected brain. Taken together, these results suggest that loss of astrocyte support to neurons may be a critical cause of delayed neuronal death in the injured brain.
Here we have investigated how lactosylceramide (LacCer) modulates gene expression of adhesion molecules in TNF-${\alpha}$ and IFN ${\gamma}$ (CM)-stimulated astrocytes. We have observed that stimulation of astrocytes with CM increased the gene expression of ICAM-1 and VCAM-1. D-Threo-1-phenyl-2-decanoylamino-3-morpholino-1-propanol (PDMP) and N-butyldeoxynojirimycin (NBDNJ), inhibitors of glucosylceramide synthase (GLS) and LacCer synthase (galactosyltransferase, GalT-2), inhibited the gene expression of ICAM-1 and VCAM-1 and activation of their gene promoter induced by CM, which were reversed by exogenously supplied LacCer. Silencing of GalT-2 gene using its antisense oligonucleotides also attenuated CM-induced ICAM-1 and VCAM-1 expression, which were reversed by LacCer. PDMP treatment and silencing of GalT-2 gene significantly reduced CM-induced luciferase activities in NF-${\kappa}B$, AP-1, GAS, and STAT-3 luciferase vectors-transfected cells. In addition, LacCer reversed the inhibition of NF-${\kappa}B$ and STAT-1 luciferase activities by PDMP. Taken together, our results suggest that LacCer may play a crucial role in the expression of ICAM-1 and VCAM-1 via modulating transcription factors, such as NF-${\kappa}B$, AP-1, STAT-1, and STAT-3 in CM-stimulated astrocytes.
The Tumor necrosis factor-α, (TNF-α), is involved in the pathogenesis of multiple sclerosis and contributes to the degeneration of oligodendrocytes as well as neurons. Nicotine has been found to have immunosuppressive and inflammation-suppressing effects. Astrocytes, the major glial cells in the CNS, are capable of producing TNF-α at both the mRNA and protein levels in response to interleukin-1 (IL-1) or TNF-α. Nicotine has been shown to influence glial cell functions. To order to explore the role of astrocytes in the production of TNF-α, astrocytes were pretreated with nicotine and are stimulated with IL-1β to determine their effects on TNF-α production. The results are as follows. Cytotoxic effects of nicotine on human fetal astrocytes were noted above 10 μg/ml of nicotine. The effect of IL-1β on TNF-α mRNA expression in primary cultured human fetal astrocytes was maximal at 2 h after IL- 1β(100 pg/ml) treatment. Human fetal astrocytes were pretreated with 0.1, 1, and 10 μg/ml of nicotine and then stimulated with IL-1β (100 pg/ml) for 2 h. The inhibitory effect of nicotine on expressions of TNF-α mRNA in human fetal astrocytes with pretreated 0.1 μg/ml of nicotine is first noted at 8 hr, and the inhibitory effect is maximal at 12 h. The inhibitory effect at 1 μg/ml of nicotine is inhibited maximal at 24 h. Nicotine at 0.1, 1 and 10 μg/ml concentrations significantly inhibits IL-1β-induced NF-κB activation. Collectively, this study indicates that nicotine might inhibit the expression of TNF-α in activated human fetal astrocytes.
The mechanisms of demyelination in Theiler's murine encephalomyelitis virus (TMEV)-induced chronic central nervous system(CNS) disease are still unclear and are probably multifactoral. This study was intended to culture spinal cord cells isolated from TMEV-induced demyelinating mice. By Percoll density centrifugation of enzymatically dissociated tissue, the cells were collected and then cultured on poly-L-lysine-coated plastic coverslips for 2 weeks. Oligodendrocytes, astrocytes and macrophages were identified using cell-type specific markers. Viral antigens were not present in oligodendrocytes and in astrocytes by double immunofluorescence. Affected mouse oligodendrocytes had less capacities of sheet formation and galactocerebroside immunoreactivity than those of control cell 3. These findings support the hypothesis that immune mediated mechanisms play an important role in the process of demyelination in this animal model.
Glial cells are receiving much attention since they have been recognized as important regulators of many aspects of brain function and disease. Recent evidence has revealed that two different glial cells, astrocytes and microglia, control synapse elimination under normal and pathological conditions via phagocytosis. Astrocytes use the MEGF10 and MERTK phagocytic pathways, and microglia use the classical complement pathway to recognize and eliminate unwanted synapses. Notably, glial phagocytosis also contributes to the clearance of disease-specific protein aggregates, such as ${\beta}$-amyloid, huntingtin, and ${\alpha}$-synuclein. Here we reivew recent findings showing that glial cells are active regulators in brain functions through phagocytosis and that changes in glial phagocytosis contribute to the pathogenesis of various neurodegenerative diseases. A better understanding of the cellular and molecular mechanisms of glial phagocytosis in healthy and diseased brains will greatly improve our current approach in treating these diseases.
I evaluated the protective effect of N-methyl-D-aspartate (NMDA)/glycine receptor antagonist, 7-chlorokinurenic acid (CKA) on cultured mouse astrocytes damaged by ischemia-like condition (ILC). The protective effect of CKA was assessed by cell viability, lactate dehydrogenase (LDH) activity, superoxide dismutase (SOD)-like activity and lipid peroxidation. To examine the effect of CKA on the cell apoptosis, the expression and the activity of caspase 3 were assessed by Western blotting. CKA increased the cell viability decreased by ILC. CKA also decreased the LDH activity and antioxidative effects such as SOD-like activity and inhibitory activity of lipid peroxidation. In addition, CKA suppressed the expression of caspase 3 associated with apoptosis, and increased the cell viability by the decrease of caspase 3 activity as like the caspase 3 inhibitor, Av-DVED-MED. From these results, these results suggest that ILS induces cell cytotoxicity in cultured astrocytes and CKA, NMDA/glycine receptor antagonist, is effective on the prevention of the cytotoxicity due to ILS by the antioxidative effect and the inhibition of apoptosis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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