To elucidate structure-function relationship of polysaccharide from Angelica gigas, the AGE-2c-I was purified by two successive chromatography steps. AGE-2c-I showed a potent anti-complementary activity in a dose-dependent manner. AGE-2c-I with a molecular weight of 140 kDa comprised four monosaccharides and 13 glycosyl linkages, and strongly reacted with ${\beta}$-glucosyl Yariv reagent. For the fine structure analysis of AGE-2c-I, it was sequentially digested by exo-arabinofuranosidase and endo-galactanase. The results indicated that AGE-2c-I was a typical RG-I polysaccharide with side chains such as highly branched ${\alpha}$-arabinan, ${\beta}$-($1{\rightarrow}4$)-galactan and arabino-${\beta}$-3,6-galactan. To characterize the active moiety of AGE-2c-I, the anti-complementary activities of AGE-2c-I and its subfractions were assayed. It was observed that the anti-complementary activity of AGE-2c-I was due to the entire structure that resembled RG-I. In addition, arabino-${\beta}$-3,6-galactan side chain (GN-I) in AGE-2c-I probably plays a crucial role in the anti-complementary activity, whereas ${\alpha}$-arabinan side chain (AFN-I) consisting of 5-linked Araf and 3,5-branched Araf partially contributes to the activity.
We developed a rapid isolation method for fractionation of polysaccharides with different characteristics, and optimized it for the polysaccharide mixture from Korean citrus peels. A crude polysaccharide mixture, citrus-peel-enzyme (CPE) fraction was isolated from the citrus peels digested with pectinase and ethanol precipitation. CPE was further fractionated with serially diluted ethanol solution (ethanol:deionized water=8:1, 4:1, 3:1, 2:1, 1.5:1, 1:1, and 0.5:1) to produce seven fractions labeled from CPE8 to CPE0.5. Fraction from CPE8 to CPE1 were mostly composed of 11 different sugars, including rhamnogalacturonan (RG) I and II, and the sugars contained arabino-${\beta}$-3,6-galactan moiety. However, CPE0.5 did not contain RG-II and arabino-${\beta}$-3,6-galactans. Treatment of macrophages with fractions CPE8-CPE1 led to a dose-dependent increase in interleukin-6 production (IL-6), while treatment with CPE1 and CPE0.5 fractions resulted in decreased levels of IL-6. These results indicate that this isolation method may be useful for the rapid fractionation of bioactive RGs from polysaccharide mixtures.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.45
no.1
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pp.52-60
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2016
The biological activity of polysaccharide is greatly influenced by polysaccharide structure and molecular distribution. Here, we developed a rapid and convenient isolation method for fractionating polysaccharides with different characteristics and optimized it using a polysaccharide mixture from Korean persimmon leaves. A crude polysaccharide mixture, persimmon leaves-enzyme (PLE) fraction, was isolated from persimmon leaves digested with pectinase and ethanol precipitation. The PLE fraction was further fractionated with a serially diluted ethanol solution (ethanol : deionized water=4:1, 2:1, 1.5:1, 1:1, and 0.5:1) to produce 10 subfractions (five precipitate fractions labeled from PLE-4 to PLE-0.5 and five supernatant fractions labeled from PLE-4S to PLE-0.5S). HPLC analysis indicated that PLE-4 and -2 consisted of diverse polysaccharides, whereas PLE-1.5, -1, and -0.5 contained high molecular weight (MW) polysaccharides. The fractions from PLE-4 to PLE-1 were mostly composed of 13 different characteristic sugars in rhamnogalacturonan (RG) I and II, and the sugars contained an arabino-${\beta}$-3,6-galactan moiety. However, PLE-0.5 did not contain RG-II or ${\beta}$-arabino-3,6-galactan. Treatment of macrophages with fractions PLE-1.5S and PLE-1S led to a $10{\mu}g/mL$ increase in interleukin (IL)-6 production, whereas treatment with PLE-4S and PLE-2S fractions composed of low MW polysaccharides resulted in reduced levels of IL-6. These results indicate that this isolation method may be useful for the rapid and convenient fractionation of bioactive RGs from polysaccharide mixtures with various properties.
Lee, Sue Jung;In, Gyo;Han, Sung-Tai;Lee, Mi-Hyang;Lee, Jong-Won;Shin, Kwang-Soon
Journal of Ginseng Research
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v.44
no.4
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pp.570-579
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2020
Background: Many researchers reported that the various immune activities of red ginseng are due to acid polysaccharides. But, the exact structural characteristics of the acidic polysaccharide in red ginseng have not been fully elucidated. Therefore, we isolated the acidic polysaccharide from red ginseng and characterized the structural property of the active moiety of this polysaccharide, which contributes to the immunostimulatory activity of red ginseng. Methods: A polysaccharide (RGP-AP-I) was purified from red ginseng via size-exclusion chromatography using Sephadex G-100. Immunostimulatary activity of RGP-AP-I was investigated via anti-complementory and macrophage stimulatory activity. The structure of RGP-AP-I was characterized by HPLC, sugar composition, β-glucosyl Yariv reagent and methylation analysis. Results: Peritoneal macrophages stimulated using RGP-AP-I significantly augmented the production of various cytokines such as interleukin (IL)-6, IL-12, and tumor necrosis factor (TNF)-α. The primary structure of RGP-AP-I was elucidated by assessing its sugar composition and methylation analysis. RGP-AP-I is a 96 kDa acidic polysaccharide, and comprises nine different monosaccharides, which mainly include sugars such as rhamnose (Rha, 9.5%), galacturonic acid (GalA, 18.4%), galactose (Gal, 30.4%), and arabinose (Ara, 35.0%). RGP-AP-I exhibited an considerable reaction with the β-glucosyl Yariv reagent, revealing the presence of arabino-β-3,6-galactan. Methylation analysis indicated that RGP-AP-I comprises 21 different glycosyl linkages, such as 3-, 4-, 6- and 3,6-linked Galp; 5-linked Araf; 2,4-linked Rhap; and 4-linked GalAp, which are characteristics of rhamnogalacturonan I (RG-I). Conclusion: we assumed that the immunostimulatory activity of RGP-AP-I may be due to the RG-I structure, which comprises a main chain with a repeating linkage unit, [→2)-Rhap-(1→4)-GalAp-(1→] and three groups of side chains such as (1→5)-linked arabinan, (1→4)-linked galactan, and arabino-β-3,6-galactan, which branch at the C(O)4 positions of Rha residues in the main chain of RGP-AP-I.
In this study, we examined the immunostimulating characteristics of a hot water extract (RCW) and crude polysaccharides (RCP) of red cabbage. RCW and RCP did not show any cytotoxicity in B16BL6 cells and macrophages. Although the sugar compositions of RCW and RCP were similar, the uronic acid content of RCP was higher than that of RCW RCP significantly increased the production of various cytokines and NO, whereas RCW did not affect the production of cytokines and NO. In an ex vivo assay of natural killer (NK) cell activity, intravenous (i.v.) administration of RCP significantly augmented NK cytotoxicity against Yac-1 tumor cells at 3 days after RCP treatment. In an experimental lung metastasis model using B16BL6 melanoma cells, i.v. administration of RCP at a dose of $1,000{\mu}g$ per mouse significantly inhibited 47.3% of lung metastasis. These results suggest that crude polysaccharide isolated from red cabbage is a promising food ingredient for the prevention of tumor metastasis.
In this study, polysaccharides were isolated from Korean persimmon vinegar to characterize the polysaccharides existing as soluble forms within traditional Korean fermented beverages, and their immuno-stimulating activities were examined. Three successive chromatographies were used to purify the main polysaccharide in the persimmon vinegar, PV-1b-I, to homogeneity from the crude polysaccharide (PV-0). The molecular mass of PV-1b-I was estimated as 110 kDa and it contained significant proportions of mannose (46.8%), galactose (28.5%) and arabinose (19.1%). PV-1b-I strongly reacted with ${\beta}$-glucosyl Yariv reagent, suggesting the presence of an arabino-3,6-galactan moiety. PV-1b-I also induced high levels of macrophage activation and mitogenicity on murine splenocytes in vitro. The intravenous administration of PV-1b-I significantly augmented NK cytotoxicity against YAC-1 tumor cells. PV-1b-I also showed potent anticomplementary activity in a dose-dependent manner. Finally, C3 activation products were identified by crossed immunoelectrophoresis using anti-human C3 and the anti-complementary activity of PV-1b-I under $Ca^{2+}$-free conditions, suggesting that this PV-1b-I causes complementary activations via both alternative and classical pathways. From these results, one can conclude that Korean persimmon vinegar contains select polysaccharides in addition to healthy components, and these polysaccharides appear to provide immuno-stimulating activities beneficial to human health.
Tomato (Lycopersicon esculentum) is widely known for its beneficial effects on human health. To investigate the beneficial effects of polysaccharides from cherry tomato, cherry tomato polysaccharides (CTP) were prepared, the component sugars were analyzed, and the immunomodulatory activities in RAW 264.7 macrophages were assessed. CTP mainly contained arabinose (Ara) and galactose (Gal), suggesting that CTP might be enriched with an arabinogalactan (AG) moiety. The Ara and Gal present in CTP are likely components of AG-II (35.4%), namely $arabino-{\beta}-(3,6)-galactan$. To investigate the immunomodulatory activity of CTP, cytokine levels and iNOS2, COX-2, and $NF-{\kappa}B$ protein levels were analyzed, and $NF-{\kappa}B$ nuclear translocation and phagocytosis were observed by immunofluorescence. CTP significantly increased the levels of $TNF-{\alpha}$, MCP-1, and IL-6. CTP also increased iNOS2 and COX-2 expression as well as $NF-{\kappa}B$ nuclear translocation in RAW 264.7 cells. CTP significantly stimulated phagocytosis activity. These results showed that CTP stimulates macrophage activity, which can boost the innate immune response. CTP with high AG-II content could be used as a prebiotic to strengthen immunity.
Bone marrow cell proliferating arabinogalactan-like polysaccharide (ALR-3IIa-1-1) has been purified from rhizomes of Atractylodes lancea DC. In order to characterize the essential structure of ALR-3IIa-1-1 for expression of the activity, sequential enzymatic digestion using ego-$\alpha$-L-arabinofurasidase (AFase) and ego-$\beta$-D-(1longrightarrow3)-galactanase (GNase) was employed. After ALR-3IIa-1-1 was digested with the AFase, the GNase digestion cleaved only 10% and 23% of 3-linked and 3,6-branched galactose, respectively, from arabinose-trimmed ALR-3IIa-1-1 (AT-ALR-3IIa-1-1), and gave small amounts of intermediate size (AT-G-2) and shorter oligosaccharides (AT-G-3) fractions in addition to a large amount of the GNase resistant fraction (AT-G-1). When AT-G-1 was redigested gradually with the AFase and GNase, it released trace amounts of oligosaccharides in addition to a large amount of the resistant fraction. When the final enzyme-resistant fraction from AT-G-1 was digested simultaneously with both AFase and GNase, the resistant fraction was significantly degraded into two long fragments (3AT-3G-1 and 2). The mixture of digestion products from the first GNase digestion of AT-ALR-3IIa-1-1 showed a significantly decreased bone marrow cell proliferation activity to about 30% of the activity of ALR-3IIa-1-1, but the GNase resistant fraction (AT-7-1) still had significant activity. Although the second gradual enzymatic digestion of AT-G-1 showed a marginal decrease in activity, the resulting fragments (3AT-3G-1 and 2) by the final simultaneous enzymatic digestion lost most of the activity. Component sugar, methylation and FAB-MS analyses indicated that the digestion products (AT-G-21 AT-G-31 2AT-2G-2 and 2AT-2G-3) released from AT-ALR-3IIa-1-1 by the sequential enzymatic digestion contained galactose-containing oligosaccharides mainly comprising 6-linked galactose, that some of which were partially arabinosylated, and these oligosaccharides were attached to $\beta$-D-(1longrightarrow3)-galactan backbone in its non-reducing terminal side as side chains.
Yang, Su Jin;Lee, Si Young;Lee, Hannah;Park, Yeong Chul;Choi, Seon Kang;Yu, Chang Yeon;Chung, Ill Min;Lim, Jung Dae
Korean Journal of Medicinal Crop Science
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v.24
no.5
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pp.408-419
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2016
Background: In recent years, adjuvants have received increasing attention owing to the development of purified subunit and synthetic vaccines which are poor immunogens and require additional adjuvants to evoke an immune response. Therefore, immunologic adjuvants have been developed and tested. Plant polysaccharides have been recognized as effective biological response modifiers with low toxicity. Methods and Results: In this study, the polysaccharide from the aboveground part of Astragalus membranaceus Bunge containing immunomodulating arabino-3,6-galactan was evaluated for its hemolytic activity and adjuvant potential in the specific cellular and humoral immune responses to ovalbumin. The polysaccharide from the aboveground part of Astragalus membranaceus Bunge was co-immunized with the purified Vi capsular polysaccharide of Salmonella typhi vaccine in mice. The polysaccharide from the aboveground part of Astragalus membranaceus Bunge did not induce any hemolytic activity or side effects at doses up to $500{\mu}g/m{\ell}$. The concanavalin A-, lipopolysaccharide-, and ovalbumin-induced splenocyte proliferation and serum ovalbumin-specific IgG, IgG1 and IgG2b antibody titers in immunized mice were significantly enhanced by AMA. Pharmacological data revealed that the polysaccharide from the aboveground part of Astragalus membranaceus Bunge increased antigen-specific antibody levels in immunized mice. The polysaccharide from the aboveground part of Astragalus membranaceus Bunge-adjuvanted purified Vi capsular polysaccharide of Salmonella typhi vaccine improved the proliferation of splenocytes and macrophages as well as stimulated cytokine production. Conclusions: These results suggest that the polysaccharide from the aboveground part of Astragalus membranaceus Bunge-adjuvanted vaccines enhanced humoral and cellular immunity and that the polysaccharide from the aboveground part of Astragalus membranaceus Bunge is a safe and efficacious adjuvant candidate suitable for use in prophylactic and therapeutic vaccines.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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