Mongolian gerbil (Meriones unguiculatus) has been as an model animal for studing the neurological disease such as stroke and epilepsy because of the congenital incompleteries in Willis circle, as well as the investigation of water metabolism because of the long time-survival in the condition of water-deprived desert condition, compared with other species animal. Aquaporin 2 (AQP2) expressed at the surface of principal cells in collecting duct results from an equilibrium between the AQP2 in intracellular vesicles and the AQP2 on the plasma membrane. Aquaporin 4 (AQP4), which is expressed in cell in a wide range of organ, is also present in the collecting duct principal cells where this is abundant in the basolateral plasma membranes and represent potential exit pathways from the cell for water entering via AQP2. In this research, we divide 3 groups of which each group include the 5 animals. In the study of 7 or 14 days water restricted condition, we investigated the AQP2 and AQP4 by using a quantitative immunohistochemistry in the kidney. The results obtained in this study were summarized as followings. AQP2 is abundant in the apical plasma membrane and apical vesicles in the collecting duct principal cell and at rare abundance in connecting tubules. In the water-deprived Mongolian gerbil kidney, expression of AQP2 was continuosly increased in the cortical collecting duct and inner medullary collecting duct. This increase was both the apical region and cytoplasm. AQP4 is mainly expressed in the inner medulla, although some expression is also noted in the more proximal segment. In the water-deprived Mongolian gerbil kidney, AQP4 was also increased in the inner medullary collecting duct. Immunoactivity was increased in entire inner medullary collecting duct and newly detected in cytoplasm of principal cell. These findings suggest that increased levels of AQP2 and AQP4 in the cortical and inner medulalry collecting duct may play a important role for maintain fluid balance in the water-deprived kidney.
Whether there exists a sympathetic neural mechanism regulating the expression of aquaporin (AQP) water channels in the kidney was investigated. Male Sprague-Dawley rats were treated with reserpine (1 mg/kg, IP), and the expression of AQP1-4 proteins was determined in the kidney one day thereafter. Following the treatment with reserpine, the systolic blood pressure measured in a conscious state was significantly decreased in the experimental group compared with that in the control $(83{\pm}8\;vs\;124{\pm}6\;mmHg;\;n=6\;each,\;P<0.05)$. The expression of AQP2 proteins was decreased in the cortex, outer medulla, and inner medulla. The decrease of AQP2 proteins was in parallel in the membrane and the cytoplasmic fractions, suggesting a preserved AQP2 targeting. No significant changes were observed in the expression of AQP1, AQP3, or AQP4. Neither basal nor AVP-stimulated formation of cAMP was significantly altered. These results suggest that the sympathetic nervous system has a tonic stimulatory effect specifically on the expression of AQP2 water channels in the kidney.
The spermatozoa become mature in the epididymis which is divided into initial segment and caput, corpus, and cauda epididymis. The water movement across the epididymal epithelium is important for creating luminal microenvironment for sperm maturation. Aquaporins (Aqps) are water channel proteins, and expression of Aqps is regulated by androgens. The current research was focused to examine expressional regulation of Aqp1 and Aqp9 by an androgenic-anabolic steroid, nandrolone decanoate (ND). The ND at the low dose (2 mg/kg body weight/week) or high dose (10 mg) was subcutaneously administrated into male rats for 2 or 12 weeks. Transcript levels of Aqp1 and Aqp9 were determined by quantitative real-time polymerase chain reaction (PCR) analyses. In the initial segment, level of Aqp1 was decreased with 12 week-treatment, while Aqp9 level was decreased by the high dose treatment for 12 weeks. In the caput epididymis, Aqp9 expression was decreased by the low dose treatment. The 2 week-treatment resulted in an increase of Aqp1 level but a decrease of Aqp9 expression in the corpus epididymis. In the corpus epididymis, the 12 week-treatment at the low dose caused the reduction of Aqp1 and Aqp9 levels, but the high dose treatment resulted in an increase of Aqp1 expression and a decrease of Aqp9 level. In the cauda epididymis, Aqp1 expression was decreased by 2 and 12 week-treatments, while increases of Aqp9 levels was detected with the high dose treatment for 2 weeks and with 12 week-treatment. These findings indicate differential regulation of Aqp1 and Aqp9 expression among epididymal segments by ND.
Appropriate control of diet and water intake is important for maintaining normal blood pressure, fluid and electrolyte homeostasis in the body. It is relatively understood that the amount of sodium and potassium intake directly affects blood pressure and regulates ion transporters; Na and K channel functions in the kidney. However, little is known about whether diet and water intake regulates Aquaporin (AQP) function. AQPs, a family of aquaporin proteins with different types being expressed in different tissues, are important for water absorption by the cell. Water reabsorption is a passive process driven by osmotic gradient and water permeability is critical for this process. In most of the nephron, however, water reabsorption is unregulated and coupled to solute reabsorption, such as AQP1 mediated water absorption in the proximal tubule. AQP2 is the only water channel founded so far that can be regulated by hormones in the kidney. AQP2 expressed in the apical membrane of the principal cells in the collecting tubule can be regulated by vasopressin (antidiuretic hormone) controlling the final volume of urine excretion. When vasopressin binds to its receptor on the collecting duct cells, it stimulates the translocation of AQP2 to the membrane, leading to increased water absorption via this AQP2 water channel. However, some studies also indicated that the AQP2 is also been regulated by vasopressin independent mechanism. This review is focused on the regulation of AQP2 by diet and the amount of water intake on salt and water homeostasis.
Kim, Na Na;Choi, Young Jae;Lim, Sang-Gu;Kim, Bong-Seok;Choi, Cheol Young
Ocean and Polar Research
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v.38
no.2
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pp.103-113
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2016
This study aimed to examine the role of two aquaporin isoforms (AQP3 and AQP8) in response to the hyperosmotic challenge of transitioning from freshwater (FW) to seawater (SW) during parr and smoltification (smolt) using the rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. We examined the changes in the expression of AQPs mRNAs in the gills and intestine of the parr and smolt stages of rainbow trout transferred from FW to SW using quantitative real-time PCR in an osmotically changing environment [FW, SW, and recombinant AQP3 (rAQP3) injection at two dosage rates]. Correspondingly, AQPs were greater during smoltification than during parr stages in the rainbow trout. Plasma osmolality and gill $Na^+/K^+$-ATPase activity increased when the fish were exposed to SW, but these parameters decreased when the fish were exposed to SW following treatment with rAQP3 during the transition to seawater. Our results suggest that AQPs play an important role in water absorbing mechanisms associated with multiple AQP isoforms in a hyperosmotic environment.
Water transport in highly-permeable membranes is facilitated by some specialized pathways, which are called aquaporins (AQP). AQP1 (AQP-CHIP) is the first recognized aquaporin identified from red cells and renal proximal tubules. Up until now 4 other aquaporin homologs have been reported. Each aquaporin has its unique tissue distribution and regulatory mechanims. To elucidate molecular mechanisms for their transcription regulation and tissue-specific expression isolation of aquaporin genes is required. To clone promoters of the AQP family mouse genomic library was screened by the 1st exon-specific probe of AQP4, and 5 different plaques were positively hybridized. Phage DNAs were purified and characterized by restriction mapping and sequencing. One of them is the mouse AQP-CD gene. The gene was consisted of 4 exons and the exon-intron boundaries of mouse AQP-CD gene were identified at identical positions in other related genes. The 5'-flanking region of AQP-CD gene contains one classic TATA box, a GATA consensus sequence, an E-box and a cyclic AMP-responsive element. The cloning of the mouse AQP-CD gene, of which product is expressed in the collecting duct and is responsible for antidiuresis by vasopressin, will contribute to understand the molecular mechanisms of tissue-specific expression and regulation of AQP-CD gene under various conditions.
Oxidative stress-induced melanocyte apoptosis is linked to the immune system and plays a critical role in the pathogenesis of vitiligo. Aquaporin-3 (AQP3), which is downregulated in vitiligo keratinocytes, regulates intracellular H2O2 accumulation. However, the role of AQP3 in oxidative stress is uncertain in vitiligo. This study investigated the effect of downregulated AQP3 on oxidative stress in vitiligo using lesional and non-lesional skin specimen sets from vitiligo patients and primary cultured adult normal human epidermal keratinocytes, with or without downregulation and overexpression of AQP3 in the presence or absence of H2O2 treatment. The levels of nuclear factor E2-related factor 2 (NRF2) and/or its main target, NAD(P)H quinone dehydrogenase 1 (NQO-1), were lower in the lesional keratinocytes and cultured keratinocytes with AQP3 knockdown, but were increased in keratinocytes upon AQP3 overexpression. Ratios of NRF2 nuclear translocation and NQO-1 expression levels were further reduced in AQP3-knockdown keratinocytes following H2O2 treatment. The conditioned media from AQP3-knockdown keratinocytes treated with H2O2 contained higher concentrations of reactive oxygen species (ROS). Moreover, the number of viable melanocytes was reduced when the conditioned media were added to the culture media. Overall, AQP3 downregulation in the keratinocytes of patients with vitiligo can induce oxidative stress in neighboring melanocytes, leading to melanocyte death.
Objective : To elucidate the role of aquaporin-4[AQP4] in cerebral edema formation, we studied the expression and subcellular localization of AQP4 in astrocytes after focal cerebral ischemia. Methods : Cerebral ischemia were induced by permanent middle cerebral artery[MCA] occlusion in rats and estimated by the discoloration after triphenyltetrazolium chloride[TTC] immersion. Change of AQP4 expression were evaluated using western blot. Localization of AQP4 was assessed by confocal microscopy and its interaction with ${\alpha}-syntrophin$ was analyzed by immunoprecipitation. Results : After right MCA occlusion, the size of infarct and number of apoptotic cells increased with time. The ratio of GluR1/GluR2 expression also increased during ischemia. The polarized localization of AQP4 in the endfeet of astrocytes contacting with ventricles, vessels and pia mater was changed into the diffuse distribution in cytoplasm. The interactions of AQP4 and Kir with ${\alpha}-syntrophin$, an adaptor of dystrophin complex, were disrupted by cerebral ischemia. Conclusion : The deranged spatial buffering function of astrocytes due to mislocalized AQP4/Kir4.1 channel as well as increased assembly of $Ca^{2+}$ permeable AMPA receptors might contribute to the development of edema formation and the excitotoxic neuronal cell death during ischemia.
Aquaporin 1 (AQP1) is expressed in most microvasculature endothelial cells and forms water channels that play major roles in a variety of physiologic processes. This study aimed to delineate the transcriptional regulation of AQP1 by Mef2c in endothelial cells. Mef2c cooperated with Sp1 to activate human AQP1 transcription by binding to its proximal promoter in human umbilical cord vein endothelial cells (HUVEC). Over-expression of Mef2c, Sp1, or Mef2c/Sp1 increased HUVEC migration and tube-forming ability, which can be abolished AQP1 knockdown. These data indicate that AQP1 is a direct target of Mef2c in regulating angiogenesis and vasculogenesis of endothelial cells.
Adaptive development of early stage embryo is well established and recently it is explored that the mammalian embryos also have adaptive ability to the stressful environment. However, the mechanisms are largely unknown. In this study, to evaluate the possible role of aquaporin in early embryo developmental adaptation, the expression of aquaporin (AQP) 5 gene which is detected during early development were examined by the environmental condition. To compare expression patterns between in vivo and in vitro, we conducted quantitative RT-PCR and analyzed localization of the AQP5 by whole mount immunofluorescence. At in vivo condition, Aqp5 expressed in oocyte and in all the stages of preimplantation embryo. It showed peak at 2-cell stage and decreased continuously until morula stage. At in vitro condition, Aqp5 expression pattern was similar with in vivo embryos. It expressed both at embryonic genome activation phase and second mid-preimplantation gene activation phase, but the fold changes were modified between in vivo embryos and in vitro embryos. During in vivo development, AQP5 was mainly localized in apical membrane of blastomeres of 4-cell and 8-cell stage embryos, and then it was localized in cytoplasm. However, the main localization area of AQP5 was dramatically shifted after 8-cell stage from cytoplasm to nucleus by in vitro development. Those results explore the modification of Aqp5 expression levels and location of its final products by in vitro culture. It suggests that expression of Aqp5 and the roles of AQP5 in homeostasis can be modulated by in vitro culture, and that early stage embryos can develop successfully by themselves adapting to their condition through modulation of the specific gene expression and localization.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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