Antimicrobial Peptides are natural antibiotics evolved by many plants, invertebrate, and vertebrate to defend against the microbial infection. Antimicrobial peptides show a broad-spectrum antimicrobial activity with little opportunity for the development of resistance since they target microbial membranes that distinguish microbes from enkaryotic cells. The oral cavity is constantly exposed to microbial challenges and antimicrobial peptides play an important role in managing the oral health. With the increase of resistant micro-organisms to conventional antibiotics, antimicrobial peptides are attracting interests as novel antibiotics. In this review, the characteristics of antimicrobial of antimicrobial peptides including the classification, mechanism of action, resistance, and expression in the oral cavity have been discussed in the prospects of application to oral disease.
Antimicrobial peptides are widely used in various organisms as a defense system against infection. The peptides are lethal towards bacteria and fungi, however have minimal toxicity in mammalian and plant cells. In this aspect, it is considered that antimicrobial peptides are new alternative materials for defensing against microbial infection. Here, we describe overall characteristics of antimicrobial peptides based on the mechanism of action, classification of the peptides, report detection/screening methods and chemical/biological production. It is expected that understanding of innate immune system based on antimicrobial peptides tends to develop novel natural antimicrobial agents, which might be applied for defensing pathogenic microorganisms resistant to conventional antibiotics.
Antimicrobial peptides/proteins are ancient and naturally-occurring antibiotics in innate immune responses in a variety of organisms. Additionally, these peptides have been recognized as important signaling molecules in regulation of both innate and adaptive immunity. During mycobacterial infection, antimicrobial peptides including cathelicidin, defensin, and hepcidin have antimicrobial activities against mycobacteria, making them promising candidates for future drug development. Additionally, antimicrobial peptides act as immunomodulators in infectious and inflammatory conditions. Multiple crucial functions of cathelicidins in antimycobacterial immune defense have been characterized not only in terms of direct killing of mycobacteria but also as innate immune regulators, i.e., in secretion of cytokines and chemokines, and mediating autophagy activation. Defensin families are also important during mycobacterial infection and contribute to antimycobacterial defense and inhibition of mycobacterial growth both in vitro and in vivo. Hepcidin, although its role in mycobacterial infection has not yet been characterized, exerts antimycobacterial effects in activated macrophages. The present review focuses on recent efforts to elucidate the roles of host defense peptides in innate immunity to mycobacteria.
Antimicrobial peptides exhibit high levels of antimicrobial activity against a broad range of spoilage and pathogenic microorganisms. Compared with bacteriocins produced by lactic acid bacteria, antimicrobial peptides from the genus Bacillus have been relatively less recognized despite their broad antimicrobial spectra. These peptides can be classified into two different groups based on whether they are ribosomally (bacteriocins) or nonribosomally (polymyxins and iturins) synthesized. Because of their broad spectra and high activity, antimicrobial peptides from Bacillus spp. may have great potential for applications in the food, agricultural, and pharmaceutical industries to prevent or control spoilage and pathogenic microorganisms. In this review, we introduce ribosomally synthesized antimicrobial peptides, the lantibiotic bacteriocins produced by members of Bacillus. In addition, the biosynthesis, genetic organization, mode of action, and regulation of subtilin, a well-investigated lantibiotic from Bacillus subtilis, are discussed.
Antimicrobial cyclic peptides derived from microbes bind stably with target sites, have a tolerance to hydrolysis by proteases, and a favorable degradability under field conditions, which make them an attractive proposition for use as agricultural fungicides. Antimicrobial cyclic peptides are classified according to the types of bonds within the ring structure; homodetic, heterodetic, and complex cyclic peptides, which in turn reflect diverse physicochemical features. Most antimicrobial cyclic peptides affect the integrity of the cell envelope. This is achieved through direct interaction with the cell membrane or disturbance of the cell wall and membrane component biosynthesis such as chitin, glucan, and sphingolipid. These are specific and selective targets providing reliable activity and safety for non-target organisms. Synthetic cyclic peptides produced through combinatorial chemistry offer an alternative approach to develop antimicrobials for agricultural uses. Those synthesized so far have been studied for antibacterial activity, however, the recent advancements in powerful technologies now promise to provide novel antimicrobial cyclic peptides that are yet to be discovered from natural resources.
In this study we designed and synthesized several heptapeptides that are enforced to form an amphipathic helix using all-hydrocarbon stapling system and evaluated their antimicrobial and hemolytic activities. The antimicrobial activity showed clear structure-activity relationships, confirming the importance of helicity and amphipathicity. Some stapled heptapeptides displayed a moderate antimicrobial activity along with a low hemolytic activity. To our best knowledge, although not highly potent, these stapled peptides represent the shortest helical amphipathic antimicrobial peptides reported to date. The preliminary data obtained in this work would serve as a good starting point for further developing short analogs of amphipathic helical antimicrobial peptides.
A positional scanning synthetic peptide combinatorial library (PS-SCL) was screened in order to identify antimicrobial peptides against the cariogenic oral bacteria, Streptococcus mutans. Activity against Streptococcus gordonii and Aggregatibacter actinomycetemcomitans was also examined. The library was comprised of six sub-libraries with the format $O_{(1-6)}XXXXX-NH_2$, where O represents one of 19 amino acids (excluding cysteine) and X represents equimolar mixture of these. Each sub-library was tested for antimicrobial activity against S. mutans and evaluated for antimicrobial activity against S. gordonii and A. actinomycetemcomitans. The effect of peptides was observed using transmission electron microscopy (TEM). Two semi-mixture peptides, RXXXXN-$NH_2$ (pep-1) and WXXXXN-$NH_2$ (pep-2), and one positioned peptide, RRRWRN-$NH_2$ (pep-3), were identified. Pep-1 and pep-2 showed significant antimicrobial activity against Gram positive bacteria (S. mutans and S. gordonii), but not against Gram negative bacteria (A. actinomycetemcomitans). However, pep-3 showed very low antimicrobial activity against all three bacteria. Pep-3 did not form an amphiphilic ${\alpha}$-helix, which is a required structure for most antimicrobial peptides. Pep-1 and pep-2 were able to disrupt the membrane of S. mutans. Small libraries of biochemically-constrained peptides can be used to generate antimicrobial peptides against S. mutans and other oral microbes. Peptides derived from such libraries may be candidate antimicrobial agents for the treatment of oral microorganisms.
Recently, marine organisms are emerging as a leading group for identifying and extracting novel bioactive substances. These substances are known to possess a potential regarding not only as a source of pharmaceutical products but also their beneficial effects on humans. Among the substances, antimicrobial peptides (AMPs) specifically have attracted considerable interest for possible use in the development of new antibiotics. AMPs are characterized by relatively short cationic peptides containing the ability to adopt a structure in which cationic or hydrophobic amino acids are spatially scattered. Although a few reports address novel marine organisms-derived AMPs, their antimicrobial mechanism(s) are still remain unknown. In this review, we summarized the peptides previously investigated, such as Pleurocidin, Urechistachykinins, Piscidins and Arenicin-1. These peptides exhibited significant antimicrobial activities against human microbial pathogens without remarkable hemolytic effects against human erythrocytes, and their mode of actions are based on permeabilization of the plasma membrane of the pathogen. Therefore, the study of antimicrobial peptides derived from marine organisms may prove to be useful in the design of future therapeutic antimicrobial drugs.
We have previously derived a novel antimicrobial peptide, LPcin-YK3(YK3), based on lactophoricin and have successfully studied and reported on the relationship between its structure and function. In this study, antimicrobial peptides with improved antimicrobial activity, less cytotoxicity, and shorter length were devised and characterized on the basis of YK3, and named YK5, YK8, and YK11. The peptide design was based on a variety of knowledge, and a total of nine analog peptides consisted of one to three amino acid substitutions and C-terminal deletions. In detail, tryptophan substitution improved the membrane perturbation, lysine substitution increased the net charge, and excessive amphipathicity decreased. The analog peptides were examined for structural characteristics through spectroscopic analytical techniques, and antimicrobial susceptibility tests were used to confirm their activity and safety. We expect that these studies will provide a platform for systematic engineering of new antibiotic peptides and generate libraries of various antibiotic peptides.
In a previous study, the antimicrobial peptides extracted from Lactobacillus plantarum UTNGt2 of wild-type fruits of Theobroma grandiflorum (Amazon) were characterized. This study aimed to investigate the antimicrobial mechanisms of peptides in vitro and its protective effect on fresh tomatoes. The addition of partially purified Gt2 peptides to the E. coli suspension cells at the exponential ($OD_{605}=0.7$) growth phase resulted in a decrease with 1.67 (log10) order of magnitude compared to the control without peptide. A marginal event (< 1 log10 difference) was recorded against Salmonella, while no effect was observed when combined with EDTA, suggesting that the presence of a chelating agent interfered with the antimicrobial activity. The Gt2 peptides disrupted the membrane of E. coli, causing the release of ${\beta}$-galactosidase and leakage of DNA/RNA molecules followed by cell death, revealing a bacteriolytic mode of action. The tomatoes fruits coated with Gt2 peptides showed growth inhibition of the artificially inoculated Salmonella cocktail, demonstrating their preservative potential.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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