Surface plasmon resonance has been used for a biospecific interaction analysis between two macromolecules in real time. Determination of an antibody that is capable of specifically interacting with the native form of antigen is very useful for many biological and medical applications. Twenty monoclonal antibodies against the $\alpha$ subunit of E. coli DNA polymerase III were screened for specifically recognizing the native form of protein using surface plasmon resonance. Only four monoclonal antibodies among them specifically recognized the native $\alpha$ protein, although all of the antibodies were able to specifically interact with the denatured $\alpha$ subunit. These antibodies failed to interfere with the interaction between the $\tau$ and $\alpha$ subunits that were required for dimerization of the two polymerases at the DNA replication fork. This real-time analysis using surface plasmon resonance provides an easy method to screen antibodies that are capable of binding to the native form of the antigen molecule and determine the biological interaction between the two molecules.
잠란 난령별 추출액을 항원으로 토끼의 항혈청을 만들고 이들 항원과 항체와의 사이에 생기는 반응에 의하여 항원성을 비교하였다. 그 결과는 아래와 같다. 1) 잠란내 난령별 조성물질은 토끼의 이정맥에 주입하였을 경우에 대부분의 잠란항원 A.B.D.G.H.J는 항체를 형성하였으나 그 일부의 항원 C.E.F.I에서는 항체 형성이 식별되지 않았다. 2) 잠란 잠령별 잠란내 조성물질은 생종인 대조 A구, B구와 대조 B구와 AKT 흑종 48시간구 D, 흑확잠 103과 잠 104에 있어서 G.H와 J는 서로 공통항원을 가지고 있었으나 그 일부 즉 AKT의 E.F 잠 104의 20시간구 I에서는 특이적인 항원항체반응을 인정할 수 없었으며 타 항체, D.E.F와의 사이에서는 비특이적인 항원항체반응을 인정할 수 있었다. 3) 각 난령별 잠란내에는 공통항원성 물질이 존재하는 것으로 사려되며 각 난령에 따른 특수항원성을 보기 위해서 흡습법에 의한 시험을 한 결과 B.D.G.J의 4개의 특이적인 항원을 인정할 수 있었다.
This research was conducted to develop a quick and sensitive method of detecting carbamate residues using the immobilization of antibody-antigen interactions with surface plasmon resonance (SPR). We have used commercialized surface plasmon resonance equipment (Biacore 3000). The antibody used for the immunoassay was specific for glutathione-s-transferase (GST) and the antigens included several carbamate pesticides (carbofuran, carbaryl, and benfuracarb). When antigens were applied to the protein GST, the detection limit was 2 ng/mL of carbamate pesticide. The fabricated protein GST maintained its activity for over 200 measurements. Thus we determined that the SPR biosensors could detect the specific reversible binding of a reactant in solution to a binding partner immobilized on the surface of the sensor and allow real-time detection and monitoring.
The tetradecameric peptide (K47-K60) near the NH$_2$-terminal region of epithelial-cell adhesion molecule (Ep-CAM) was chosen as antigenic site and a polyclonal antibody was generated, which could recognize Ep-CAM from the mouse colon tissue or the colon cancer cell, CT-26, in Western blot analysis. Then, the fluorescein isothiocyanate (FITC), a fluorescence dye, was conjugated with the affinity purified Ep-CAM antibody using thiocyanate and the amino groups of FITC and antibody, respectively. The molar ratio of FITC to antibody was estimated approximately 1.86 to 1.00 by measuring the optical densities at 492 nm and 280 nm. Ep-CAM antibody-FITC conjugate was then used for immunohistochemistry of the CT-26 cells. Judging from the shapes formed by fluorescence, the Ep-CAM antibody could delivered FITC to the surface of cells in which Ep-CAM was expressed. This result implies that Ep-CAM antibody could be also used for the tissue-specific delivery of the photosensitizer to the target protein via antigen-antibody interaction.
Lee Woo-Chang;Lim Sang-Soo;Choi Bum-Kyoo;Choi Jeong-Woo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제16권8호
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pp.1216-1221
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2006
A protein array was fabricated for a miniaturized immunoassay using microcontact printing ($\mu$CP). A polydimethylsiloxane (PDMS) stamp with a 5 $\mu$m$\times$5 /$\mu$m dimension was molded from a silicon master developed by photolithography. Under optimal fabrication conditions, including the baking, incubation, and exposure time, a silicon master was successfully fabricated with a definite aspect ratio. An antibody fragment was utilized as the ink for the $\mu$CP, and transferred to an Au substrate because of the Au-thiol (-SH) interaction. The immobilization and antibody-antigen interaction were investigated with fluorescence microscopy. When human serum albumin (HSA) was applied to the protein array fabricated with an antibody against HSA, the detection limit was 100 pg/ml of HSA when using a secondary antibody labeled with a fluorescence tag. The fabricated protein array maintained its activity for 14 days.
연구배경 : 클라미디아 감염의 진단은 혈청검사로 이루어진다. 현재 표준 방법은 MIF(microimmunofluorescence)이나 이 방법은 주관적이고 시간이 많이 걸리는 단점이 있다. 최근을 SPR(surface plasmon resonance) 센서를 이용한 단백질 칩이 감염의 새로운 진단 방법으로 제시되고 있다. 클라미디아 감염의 진단을 위한 단백질 칩 개발을 위하여 금 칩 표면에 세균을 고정하고 클라미디아 균에 대한 항체와 표면 위 세균과의 반응을 SPR 센서를 이용하여 측정하고자 하였다. 방법 : 표면 항원으로 배양한 Chlamydophila pneumoniae LKK1의 EB를 정제하였다. 양전하를 띤 PDDA (polydiallyldimethylammonium chloride)를 이용하여 전하를 이용한 단백질 칩을 제작하였다. 클라미디아 균을 고정시킨 후에 atomic force microscopy를 이용하여 표면을 관찰하였다. 클라미디아 균에 대한 항체를 투여하고 나서 자체 제작한 SPR 센서를 이용하여 항원 항체 반응을 SPR 파장 변화로 측정하였다. 결과 : 양전하를 띤 PDDA 표면위에서 클라미디아 균이 고정되었음을 확인 하였다. 그리고, 항체를 투여한 후에 SPR 파장의 증가를 확인하였다. 파장 변화는 항원의 농도와 관련이 있었다. 결론 : 전하를 이용하여 클라미디아 폐렴균의 EB를 단백질 칩에 고정하였고, 단백질 칩 위에서의 항원 항체 반응을 확인하였다. 비정형 폐렴의 진단에 SPR 센서가 기여할 수 있을 것으로 사료되나, 실제 임상 시료에의 적용을 위해서는 좀더 연구가 필요할 것으로 사료된다.
We have detected deoxynivalenol(DON) using a metal-oxide-semiconductor field-effect-transistor(MOSFET)-based biosensor. The MOSFET-based biosensor is fabricated by a standard complementary metal-oxide-semiconductor(CMOS) process, and the biosensor's electrical characteristics were investigated. The output of the sensor was stabilized by employing a reference electrode that applies a fixed bias to the gate. Au which has a chemical affinity for thiol was used as the gate metal to immobilize a self-assembled monolayer(SAM) made of 16-mercaptohexadecanoic acid(MHDA). The SAM was used to immobilize anti-deoxynivalenol antibody. The carboxyl group of the SAM was bound to the anti- deoxynivalenol antibody. Anti-deoxynivalenol antibody and deoxynivalenol were bound by an antigen-antibody reaction. In this study, it is confirmed that the MOSFET-based biosensor can detect deoxynivalenol at concentrations as low as 0.1 ${\mu}g$/ml. The measurements were performed in phosphate buffered saline(PBS; pH 7.4) solution. To verify the interaction among the SAM, antibody, and antigen, surface plasmon resonance(SPR) measurements were performed.
The advent of the major histocompatibility complex (MHC) multimer technology has led to a breakthrough in the quantification and analysis of antigen-specific T cells. In particular, this technology has dramatically advanced the measurement and analysis of CD8 T cells and is being applied more widely. In addition, the scope of application of MHC multimer technology is gradually expanding to other T cells such as CD4 T cells, natural killer T cells, and mucosal-associated invariant T cells. MHC multimer technology acts by complementing the T-cell receptor-MHC/peptide complex affinity, which is relatively low compared to antigen-antibody affinity, through a multivalent interaction. The application of MHC multimer technology has expanded to include various functions such as quantification and analysis of antigen-specific T cells, cell sorting, depletion, stimulation to replace antigen-presenting cells, and single-cell classification through DNA barcodes. This review aims to provide the latest knowledge of MHC multimer technology, which is constantly evolving, broaden understanding of this technology, and promote its widespread use.
We performed a basic experiment for rapid, on-line, real-time measurement of HBsAg by using a surface plasmon resonance biosensor to quantify the recognition and interaction of biomolecules. We immobilized the anti-HBsAg polyclonal antibody to the dextran layer on a CM5 chip surface which was pre-activated by N-hydroxysuccinimide for amine coupling. The binding of the HBsAg to the immobilized antibody was measured by the mass increase detected by the change in the SPR signal. The binding characteristics between HBsAg and its antibody followed typical monolayer adsorption isotherm. When the entire immobilized antibody was interacted, there was no additional, non-specific binding observed, which suggested the biointeraction was very specific as expected and independent of the ligand density. No significant steric hindrance was observed at 17.6 nm/$mm^2$ immobilization density. The relationship between the HBsAg concentration in the sample solution and the antigen bound to the chip surface was linear up to ca. $40\mu\textrm{g}$/mL, which is much wider than that of the ELISA method. It appeared the antigen-antibody binding was increased as the immobilized ligand density increased, but verification is warranted. This study showed the potential of this biosensor-based method as a rapid, simple, multi-sample, on-line assay. Once properly validated, it can serve as a more powerful method for HBsAg quantification replacing the current ELISA method.
An electrochemical immunoassay based on osmium-hippuric acid (HA) conjugate films onto the electrode is presented for the detection of urinary HA. This is the first report on the use of the oxidative electropolymerization of 5-amino-1,10-phenanthroline (5-$NH_2$-phen) for immobilizing an antigen, osmium-conjugated HA. As a redox mediator, [Os(5-amino-1,10-phenanthroline)$_2$(4-aminomethylpyridine-HA)Cl]$^{+/2+}$ (Os-phen-HA) was successfully synthesized and electropolymerized onto the screen-printed carbon electrodes (SPCEs). The interaction between osmium-HA conjugate films and antibody-HA ($anti$-HA) was performed by cyclic voltammetry (CV) and differential pulse voltammetry (DPV). The electrical signals were linearly proportional to urinary HA in the range of 0.1-5.0 mg/mL, which is sufficient for use as an immunosensor using a cutoff concentration of 2.0 mg/mL in urine samples. The proposed electrochemical immunoassay method can be extended to various applications for detecting a wide range of different small antigens in the health care area.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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