An immunosensor based on surface plasmon resonance (SPR) with a self-assembled protein G layer was developed for the detection of Escherichia coli O157:H7. A self-assembled protein C layer on a gold (Au) surface was fabricated by adsorbing the mixture of 11-mercaptoundecanoic acid (MUA) and hexanethiol at various molar ratios and by activating chemical binding between free amine (-$NH_2$) of protein G and 11-(MUA) using 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (EDAC) in series. The formation of a self-assembled protein G layer on an Au substrate and the binding of the antibody and antigen in series were confirmed by SPR spectroscopy. The surface morphology analyses of the self-assembled protein G layer on the Au substrate, monoclonal antibody (Mab) against E. coli O157:H7 which was immobilized on protein G, and bound E. coli O157:H7 extracts on Immobilized Mab against E. coii O157:H7 were performed by atomic force microscopy (AFM). The detection limit of the SPR-based immunosensor for E. coli O157:H7 was found to be about $10^4$ cells/ml.
Patterning of biological molecules was attempted on both gold and glass using fourth generation (G4) poly(amidoamine) (PAMAM) dendrimer as an interfacing layer between solid surfaces and biomolecules. As for the patterning of avidin and anti-biotin antibody on gold, PAMAM dendrimers representing amine functionalities were firstly printed onto the 11-mercaptoundecanoic acid SAM by microcontact printing, followed by biotinylation, and reacted with fluorescence-labeled avidin or anti-biotin antibody. Fluorescence microscopic analysis revealed that the patterns of avidin and anti-biotin antibody were well constructed with the resolution of < 2 ㎛. The PAMAM dendrimers were also printed onto aldehyde-activated slide glass and reacted directly with anti-BSA antibodies, which had been oxidized with sodium periodate. As a result, distinct patterns of the anti-BSA antibodies were also obtained with a comparable edge resolution to that of avidin patterns on gold. These results clearly show that PAMAM dendrimers can be adopted as an interfacing layer for the patterning of biological molecules on solid surfaces with micrometer resolution.
Selection methods of well labelled insulin fractions based on two different criteria were compared to establish an efficient low level RIA of insulin and to elucidate the correlation between the immunoreactivity and the charcoal-adsorptivity of the radioiodine labelled insulin. The results indicated that the selection of well labelled insulin fractions by means of a charcoal-adsorption test is inappropriate. Generally, the distribution of radioactivity antibody-bindability, and charcoal-adsorptivity of the labelled insulin was not consistent with each other. Thus. the selection should be carried out for every labelling batch to get the utmost assay reliability by antibody-bindability but not by charcoal-adsorptivity. By using the well selected labelled insulin fractions based on antibody-binding, a correct assay for a reference serum was possible, and by extending the incubation time upto 96 hrs, a sharp dose response curve could be obtained even in the range of below 5 $\mu$U/ml standard insulin doses.
Physiological changes of the murine hybridoma cell line $S3H5/\gamma{2bA2}$ during adaptation to RPMI 1640 medium with 1%(v/v) fetal bovine serum were characterized in terms of cell growth, antibody production, morphology, and metabolic quotients. Cells adapted to 1% serum medium in T-flasks became sensitive to shear induced by mechanical agitation and required at least 5% serum in the medium or spent medium for cell growth in spinner flasks, while cells adapted to 10% serum medium in T-flasks could grow in 1% serum medium in spinner flasks. Consequently, long-term adaptation to low serum media may not give the expected growth enhancement. After adaptation to 1% serum medium, changes in cell morphology were observed. The cells in 10% serum medium were uniform and circular, while cells in 1% medium were irregularly shaped. The DNA contents, which were measured by flow cytometry, were almost constant among the cells in the range of 1% to 10%. Further, no significant changes in energy metabolism and specific monoclonal antibody production rate were observed among these cells.
An immunochemical method has been develooped as the most sensitive tool for studying the expression of quinoproteins containing pyrroloquinoline qinone(PQQ) in E. coli. The PQQ was conjugated to bovine serum albumin (BSA), and the conjugant was purified by using a $KwikSep^{TM}$ dextran desalting column chromatography. The PQQ-BSA conjugant was immunized to rabbits, and the IgG fractions of the antisera were purified. The most sensitive antibody against PQQ-BSA conjugant recognized some nanogram quantity of the antigen on the blot, but had little cross reactivity with BSA. Using this batch of the antibody, all the immunochemical assays of quinoproteins in E. coli were preformed. Some six different PQQ-specfic spots were detected by Western blot analysis of the soluble proteins in E. coli were performed. Some six different PQQ-specific spots were detected by Western blot analysis of the soluble proteins in E. coli after two-dimensional gel electrophoresis. Their molecular weights on the blot were estimated to be about 100-, 90-, 72-, 58-, 52-, and 50kDa. Their pI values fell in the range from 4.8 to 5.5. These results stronly suggest that quinoproteins are present in E. coli, and that the protein moieties were covalently bound to PQQ.
Yang, Hye Young;Kang, Kyung Jae;Chung, Julia Eunyoung;Shim, Hyunbo
Molecules and Cells
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v.27
no.2
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pp.225-235
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2009
Antibody phage display provides a powerful and efficient tool for the discovery and development of monoclonal antibodies for therapeutic and other applications. Antibody clones from synthetic libraries with optimized design features have several distinct advantages that include high stability, high levels of expression, and ease of downstream optimization and engineering. In this study, a fully synthetic human scFv library with six diversified CDRs was constructed by polymerase chain reaction assembly of overlapping oligonucleotides. In order to maximize the functional diversity of the library, a ${\beta}$-lactamase selection strategy was employed in which the assembled scFv gene repertoire was fused to the 5'-end of the ${\beta}$-lactamase gene, and in-frame scFv clones were enriched by carbenicillin selection. A final library with an estimated total diversity of $7.6{\times}10^9$, greater than 70% functional diversity, and diversification of all six CDRs was obtained after insertion of fully randomized CDR-H3 sequences into this proofread repertoire. The performance of the library was validated using a number of target antigens, against which multiple unique scFv sequences with dissociation constants in the nanomolar range were isolated.
Monoclonal antibodies with specific antigens have been widely used as targeted therapy for cancer. Hep88 mAb is a monoclonal antibody which shows specific binding with anti-cancer effects against the HepG2 cell line. However, its mechanisms of action are still not completely understood. We examined cell cycling and apoptosis by flow cytometry and mRNA expression of factors involved in apoptosis and paraptosis in Hep88 mAb-treated HepG2 cells by real-time PCR. The cell-cycle analysis demonstrated that growth-inhibitory activity was associated with G2/M cell cycle arrest. Hep88 mAb induced a significant increase in apoptotic cell populations in a dose- and time-dependent manner. The mRNA expression results also suggested that the process triggered by Hep88 mAb involved up-regulation of tumor suppressor p53, pro-apoptotic Bax, Cathepsin B, Caspase-3 and Caspase-9, with a decrease of anti-apoptotic Bcl-2 - thus confirming paraptosis and apoptosis programmed cell death. These findings represent new insights into the molecular mechanisms underlying the anti-cancer properties of Hep88 mAb in liver cancer cells.
The Transactions of The Korean Institute of Electrical Engineers
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v.65
no.4
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pp.628-634
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2016
This paper demonstrates a microfluidic electrochemical sensor for detecting endocrine disruptor such as estradiol at a very low concentration by using preconcentration technique. In addition, self-assembled monolayer(SAM) was also employed on the working electrode of the electrochemical sensor in order to increase the estradiol capture efficiency of the sensor. SAM treatment on the working electrode enhanced the specific binding between the surface of the working electrode and the estradiol antibody. The estradiol antibody was applied on the working electrode at different concentrations(10, 20, 50, 100, 200 pg/ml) for observing the concentration dependency. The measured electrochemical redox current changed with the amount of the bound estradiol on the Au working electrode surface and the sensor can detect all the target material when the immobilized antibody amount is more than the estradiol amount in the water. The elecrochemical estradiol sensor without SAM treatment showed a low current of 7.79 nA, while the sensor treated with SAM resulted in 339 nA at 200 pg/ml, which is more than 40 fold higher output current. When combining the preconcentration technique and the SAM-treated electrode, the measured current became more than 100 fold higher than that of the sensor without neither SAM treatment nor preconcentration technique. The combination of these two techniques can would enable the proposed microfluidic electrochemical sensor to detect a very low concentration endocrine disruptor.
Enrofloxacin is a fluoroquinolone antibiotic approved for the treatment of infections in animals. Because of the side effects to consumers of animal products, the maximum residue limits (MRLs) of enrofloxacin in animal tissues for consumption are regulated. In this study, a monoclonal antibody (mAb) against enrofloxacin was prepared and characterized for the development of a direct competitive enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). The obtained mAb, Enro44, was highly specific for enrofloxacin and had a 50% inhibition concentration ($IC_{50}$) of 1.99 ng/ml in a competitive ELISA, and the limit of detection (LOD) was 0.50 ng/ml. The cross-reactivity of the mAb with other quinolones and fluoroquinolones was lower than 0.01%. The subclass of the mAb Enro44 was identified as IgG1. The antigen (Ag)-captured direct competitive ELISA using the mAb Enro44 was tested on different spiked samples, including chicken muscle, cattle milk, and cattle urine, and the assay demonstrated recoveries of 82-112%, 80-125%, and 78-124%, respectively. Furthermore, the quantitation of enrofloxacin obtained from the ELISA and from high-performance liquid chromatography (HPLC) was in good agreement, with the linear regression coefficient between 0.933 and 1.056. The cDNAs encoding a heavy-chain Fd fragment (VH and CH1) and a light chain of the mAb Enro44 were cloned and sequenced. Taken together, the results obtained reveal a potential use of this mAb in an ELISA for the detection of enrofloxacin in food samples. The information of amino acid sequence of this mAb will be useful for further modification and production of the mAb in a bioreactor.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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