Lactic acid bacteria (LAB) are widely used for various food fermentation. With the recent advances in modern biotechnology, a variety of bio-products with the high economic values have been produced using microorganisms. For molecular cloning and expression studies on the gene of interest, E. coli has been widely used mainly because vector systems are fully developed. Most plasmid vectors currently used for E, coli carry antibiotic-resistant markers. As it is generally believed that the antibiotic resistance markers are potentially transferred to other bacteria, application of the plasmid vectors carrying antibiotic resistance genes as selection markers should be avoided, especially for human consump-tion. By contrast, as LAB have some desirable traits such that the they are GRAS(generally recognized as safe), able to secrete gene products out of cell, and their low protease activities, they are regarded as an ideal organism for the genetic manipulation, including cloning and expression of homologous and heterologous genes. However, the vec-tor systems established for LAB are stil insufficient to over-produce gene products, stably, limiting the use of these organisms for industrial applications. For a past decade, the two popular plasmid vectors, pAM$\beta$1 of Streptococcus faecalis and pGK12 theB. subtilis-E. coli shuttle vector derived from pWV01 of Lactococcus lactis ssp. cremoris wg 2, were most widely used to construct efficient chimeric vectors to be stably maintained in many industrial strains of LAB. Currently, non-antibiotic markers such as nisin resistance($Nis^{r}$ ) are explored for selecting recombi-nant clone. In addition, a gene encoding S-layer protein, slp/A, on bacterial cell wall was successfully recombined with the proper LAB vectors LAB vectors for excretion of the heterologous gene product from LAB Many food-grade host vec-tor systems were successfully developed, which allowed stable integration of multiple plasmid copies in the vec-mosome of LAB. More recently, an integration vector system based on the site-specific integration apparatus of temperate lactococcal bacteriophage, containing the integrase gene(int) and phage attachment site(attP), was pub-lished. In conclusion, when various vector system, which are maintain stably and expressed strongly in LAB, are developed, lost of such food products as enzymes, pharmaceuticals, bioactive food ingredients for human consump-tion would be produced at a full scale in LAB.
Temperate phages have been suggested to carry virulence factors and other lysogenic conversion genes that play important roles in pathogenicity. In this study, phage TEM123 in wild-type Staphylococcus aureus from food sources was analyzed with respect to its morphology, genome sequence, and antibiotic resistance conversion ability. Phage TEM123 from a mitomycin C-induced lysate of S. aureus was isolated from foods. Morphological analysis under a transmission electron microscope revealed that it belonged to the family Siphoviridae. The genome of phage TEM123 consisted of a double-stranded DNA of 43,786 bp with a G+C content of 34.06%. A bioinformatics analysis of the phage genome identified 43 putative open reading frames (ORFs). ORF1 encoded a protein that was nearly identical to the metallo-β-lactamase enzymes that degrade β-lactam antibiotics. After transduction to S. aureus with phage TEM123, the metallo-β-lactamase gene was confirmed in the transductant by PCR and sequencing analyses. In a β-lactam antibiotic susceptibility test, the transductant was more highly resistant to β-lactam antibiotics than S. aureus S133. Phage TEM123 might play a role in the transfer of β-lactam antibiotic resistance determinants in S. aureus. Therefore, we suggest that the prophage of S. aureus with its exotoxin is a risk factor for food safety in the food chain through lateral gene transfer.
Antibiotic resistance in animal isolates of enterococci is a public health concern, because of the risk of transmission of antibiotic-resistant strains or resistance genes to humans through the food chain. This study investigated phenotypic and genotypic resistances profile of tetracycline in 245 $Enterococcus$ isolates from bovine milk. A total of 245 enterococci were isolated from 950 milk samples. The predominant strain was $E.$$faecalis$ (n = 199, 81.2%) and $E.$$faecium$ (n = 25, 10.2%). $E.$$avium$ (n = 7, 2.9%), $E.$$durans$ (n = 6, 2.5%), $E.$$gallinarum$ (n = 4, 1.6%), and $E.$$raffinosus$ (n = 4, 1.6%) were also isolated. Of the 245 enterococcal isolates 76.3% (n = 187) displayed tetracycline resistance (${\geq}16{\mu}g/ml$). Of the 187 tetracycline-resistant isolates, 83.4% (n = 156), 16.1% (n = 30), and 26.7% (n = 50) possessed the genes $tet$(M), $tet$(L), $tet$(S) respectively. While 3.2% (n = 6) of the tetracycline-resistant isolates possessed all three genes $tet$(M) + $tet$(L) + $tet$(S), 8.6% (n = 16), 16.0% (n = 30), and 2.7% (n = 5) of them possessed two genes $tet$(M) + $tet$(L), $tet$(M) + $tet$(S), and $tet$(L) + $tet$(S) respectively. The tetracycline resistance pattern investigated in this study was attributable mainly to the presence of $tet$(M).
Airborne bacteria from hog farms may have detrimental impacts on human health, particularly in terms of antibiotic resistance and pathogen zoonosis. Despite human health risks, very little is known about the composition and diversity of airborne bacteria from hog farms and hog-related spray fields. We used pyrosequencing analysis of 16S rRNA genes to compare airborne bacterial communities in a North Carolina hog farm and lagoon spray field. In addition, we isolated and identified antibiotic-resistant bacteria from both air samples. Based on 16S rRNA gene pyrosequence analysis, Actinobacteria, Bacteroidetes, Firmicutes, and Proteobacteria were the dominant phyla in airborne bacterial communities from both hog farm and spray field sites. Within the Firmicutes genera, Clostridium spp. were more abundant in the hog farm, whereas Staphylococcus spp. were higher in the spray field. The presence of opportunitic pathogens, including several Staphylococcus species and Propionibacterium acnes, was detected in both bioaerosol communities based on phylogenetic analysis. The isolation and identification of antibiotic-resistant bacteria from air samples also showed similar results with dominance of Actinobacteria and Proteobacteria in both hog farm and spray field air. Thus, the existence of opportunistic pathogens and antibiotic resistant bacteria in airborne communities evidences potential health risks to farmers and other residents from swine bioaerosol exposure.
Vibrio vulnificus, the most fatal waterborne and foodborne pathogens of 50% fatality rate in the world, is common in seawater and occurs particularly in warmer months. In this study, we investigated the toxin genes using reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR), antibiotic resistance status using Vitek, and genetic characteristics using pulsed-field gel electrophoresis (PFGE) of different V. vulnificus strains isolated from the Jeju Island seawater, distribution fishery products, and fish tanks. We examined a total of 487 samples and isolated a total of 46 strains (including overlapping strains) of V. vulnificus, 44 strains from seawater and 1 strain each from fishery products and fish tank. We detected toxin gene vvhA in all 46 strains and rtxA, viu in 8 strains (17.4%) and 9 strains (19.6%) strains, respectively. Antibiotic resistance tests indicated 100% resistance to cefoxitin antibiotics. The PFGE analysis of the 46 strains identified a total of 6 types showed 100% homology and the degree of similarity was 81.3-98.0%; however, there were no similarity between the regions and samples. These results indicate that V. vulnificus isolated from the seawater, fishery products, and fish tanks should be continuously monitored as cases of food poisoning caused by V. vulnificus with toxin genes have been reported in Jeju Island.
In this study, toxin gene and antibiotic resistance of food poisoning strains isolated from indoor air in the cafeteria were analyzed to prevent food poisoning. Staphylococcus aureus (16 strains) and Bacillus cereus (37 strains) isolated from indoor air in child care center were tested. The toxin genes of S. aureus and B. cereus were detected by PCR assay. The antimicrobial susceptibility test followed the disc diffusion method described by the Clinical and Laboratory Standard Institute. The seg and sei toxin genes were detected in 11 of 16 S. aureus strains (68.6%). The nheA and nheB toxin genes were detected in 37 B. cereus strains. In this study, a total of 12 toxin gene patterns of B. cereus were found, among which the nheA-nheB-nheC toxin gene was found to be the most frequent pattern. The result of the antimicrobial susceptibility test of S. aureus revealed 93.8% and 87.5% resistance to ampicillin and penicillin antibiotics, but methicillin resistance S. aureus and vancomycin resistance S. aureus were not detected. All 37 B. cereus tested in this study were resistant to ampicillin and penicillin antibiotics. Based on the result of this study, it was judged that regular ventilation and air quality management were necessary to prevent food poisoning caused by S. aureus and B. cereus contaminated in the indoor air of child care centers.
Small size antibiotic resistance plasmids having molecular weights less than 10 Mdal were isolated and characterized from ten clinically isolated multiple resistant Staphylococcus aureus. Agarose gel electrophoresis profiles and antibiotic resistance patterns divided these strains into four groups. Strain 2-23-6, the representative strain of a group of five strains conferred two plasmids of molecular weights $1.6{\times}10^6\;dal\;and\;2.0{\times}10^6$ dal. The small plasmid (pSBK 112) specified macrolides, lincosamides and streptogramin type B (MLS) resistance gene which are expressed constitutively. Lage plasmid (pSBK 125) specified chloramphenicol resistance gene which is inducible. Strain 10-5 conferred a $3.0{\times}10^6$ dal plasmid (pSBK 141) which carry an inducible ampicillin resistance gene and strain P-H-2 conferred and $1.6{\times}10^6$ dal plasmid (pSBK 190) which carry a constitutive MLS resistance gene. Strain D-H-1 conferred four plasmids of molecular weights $0.8{\times}10^6$ dal (pSBK 201), $1.6{\times}10^6$ dal (pSBK 202), $2.5{\times}10^6$ dal (pSBK 203), and $1.2{\times}10^7$ dal (pDBK 204), respectively. Among those four plasmids, only pSBK 203 specified chloramphenicol resistance gene. Curing of constitutive MLS resistance using acriding orange or ethidium bromide in 2-23-6 and P-H-2 strains produced 'inducible' MLS resistance strains which are less resistant to MLS than the wild type strains, suggesting that there are two resistance genes in both strains; one is constitutive and the other is inducible.
Park, Hyun-jung;Yoon, Jang Won;Heo, Eun-Jeong;Ko, Eun-Kyoung;Kim, Ki-Yeon;Kim, Young-Jo;Yoon, Hyang-Jin;Wee, Sung-Hwan;Park, Yong Ho;Moon, Jin San
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.9
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pp.1460-1466
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2015
In this study, the prevalence of Shiga toxin-producing Escherichia coli (STEC) was investigated among raw meat or meat products from slaughterhouses and retail markets in South Korea, and their potential for antibiotic resistance and virulence was further analyzed. A total of 912 raw meats, including beef, pork, and chicken, were collected from 2008 to 2009. E. coli strains were frequently isolated in chicken meats (176/233, 75.9%), beef (102/217, 42.3%), and pork (109/235, 39.2%). Putative STEC isolates were further categorized, based on the presence or absence of the Shiga toxin (stx) genes, followed by standard O-serotyping. Polymerase chain reaction assays were used to detect the previously defined virulence genes in STEC, including Shiga toxins 1 and Shiga toxin 2 (stx1 and 2), enterohemolysin (ehxA), intimin (eaeA), STEC autoagglutination adhesion (saa), and subtilase cytotoxin (subAB). All carried both stx1 and eae genes, but none of them had the stx2, saa, or subAB genes. Six (50.0%) STEC isolates possessed the ehxA gene, which is known to be encoded by the 60-megadalton virulence plasmid. Our antibiogram profiling demonstrated that some STEC strains, particularly pork and chicken isolates, displayed a multiple drug-resistance phenotype. RPLA analysis revealed that all the stx1-positive STEC isolates produced Stx1 only at the undetectable level. Altogether, these results imply that the locus of enterocyte and effacement (LEE)-positive strains STEC are predominant among raw meats or meat products from slaughterhouses or retail markets in Korea.
This study investigated the genetic determinants of plasmid-mediated antibiotic resistance (PMAR) to quinolones and tetracycline in 106 Aeromonas strains isolated from eel (Anguilla japonica, 70 strains) and ornamental fish (36 strains) in Korea. Quinolones and tetracycline resistance phenotypes were found to be widely distributed throughout the both fish groups. However, the prevalence of qnr and tet genes was higher in ornamental fish strains than in eel strains (42.9% vs. 86.1% for qnr and 51.4% vs. 69.4% for tet). In addition, the profiling of the present genetic determinants revealed the dominance of qnrS, tetA, tetE and tetE+qnrS genes for eel strains but of tetA+qnrS qnrS and tetE+qnrS genes for ornamental fish strains. These results indicate that aquaculture and related industries could be a major threat to public health due to the possible spread of PMAR.
Eun-yeong Kim;Chae-Young Kim;Ji-Yu Im;Jung-Beom Kim
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.39
no.3
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pp.266-272
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2024
This study assessed the contamination level of food poisoning bacteria on handles of food service equipment in childcare centers to prevent food poisoning and analyzed toxin genes and antibiotic resistance of isolated strains. The isolates used in this study were collected from 101 childcare centers in Jeollanam-do. Four strains of Bacillus cereus and two strains of Staphylococcus aureus were isolated on the handles of food service equipment (refrigerators and freezers). The toxin genes of B. cereus were detected as nheA, nheB, nheC, entFM, and cytK. No toxin genes of S. aureus were detected. B. cereus showed resistance to β-lactam antibiotics, such as ampicillin and cefepime. S. aureus also showed resistance to antibiotics such as ampicillin and cefepime. Therefore, microbial safety and hygiene management, such as periodic sterilization of handles, should be strengthened to prevent food poisoning caused by cross-contamination of food service equipment handles in childcare centers.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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