Moraxella sp. CK-1는 남조류 Anabaena cylindrica의 생장을 억제한다고 알려져 있다. Moraxella sp. CK-1의 세포외 autolysin의 분리는 다음과 같은 방법으로 분리를 시도하였다. 흡광도 660 nm에서 0.7~0.8이 되도록 BGC-11세포배양액에서 키우고, 원심분리로 균주인 Moraxella sp. CK-1를 제거한 뒤 세포배양액을 Amicon ultrafiltration으로 농축을 하였다. 농축한 세포배양액을 $(NH_{4})_{2}SO_{4}$ 로 0~20%, 20~40%, 40~60%, 60~80%로 분획하여 단백질을 14,000${\times}$g로 침전 시켰다. 침전된 단백질을 20 mM Tris-HC1, pH 8.0완충용액으로 현탁시킨 뒤, 동일 완충용액을 이용하여 투석을 하였다. $(NH_{4})_{2}SO_{4}$로 분획한 뒤 활성확인을 위해 Anabaena Cylindrica가 도포된 평판배지에서 활성을 확인한 결과, 40~60%, 60~80%에서 활성이 있음을 확인하였다. 이들을 각각 Mono-$Q^{TM}$ HR 5/5 (column volume 1 ml) column을 이용하여 FPLC에서 단백질을 분리하였다. $(NH_{4})_{2}SO_{4}$ 로 분획한 40~60%에서는 major peak 3개, 60~80% 분획에서는 2개의 major peak가 분리되었다. Mono-$Q^{TM}$ HR 5/5 column에서 분리되어 나온 major peak 5개를 투석한 뒤 Anabaena cylindrica lawn에서 활성을 확인하였으나 확인이 되지 않았다. PVDF membrane을 이용하여 transfer하여 40~60% 침전에서 17 kDa의 단백질을 얻어냈다. 이를 N-terminal amino acid sequence를 하여 serine pretense의 계열임을 확인하였다.
Mei Chow Yen;Ti Tey Beng;Ibrahim Mohammad Nordin;Ariff Arbakariya;Chuan Ling Tau
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제10권3호
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pp.280-283
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2005
The adsorption of a model protein bovine serum albumin (BSA) in expanded bed chromatography was undertaken by exploiting a commercially available expanded bed column (20 mm i.d.) from UpFront Chromatography and Streamline DEAE $(\rho=1.2g/cm^3)$ from Amersham Pharmacia Biotechnology. The influence of whole yeast cells on the adsorption capacity of column was explored by employing yeast cells in a concentration ranged of 0 to $15\%(w/v)$. Equilibrium isotherms for adsorption of BSA on Streamline DEAE were correlated by using Langmuir equation. The presence of yeast cells resulted in decreased of BSA binding capacity in both batch binding and expanded bed chromatography. Results indicated that the yeast cells act as competitor for proteins to bind to the sites on adsorbents.
Seo, Dong-Hyuk;Lee, Sang-Hoo;Park, Hey-Lin;Kwon, Tae-Jong;Jung, Seun-Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제12권3호
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pp.522-525
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2002
A very rapid and efficient separation technique for cellular rhizobial cyclosophoraoses was developed based on fractional precipitation and partition chromatography. Cyclosophoraoses are known to function in the osmotic regulation and root nodule formation of legumes during the nitrogen fixation process. Cyclosophoraoses are produced as unbranched cyclic (1longrightarrow12)-${\beta}$-D-glucans in Agrobacterium or Rhizobium species. Recent research has shown that cyclosophoraoses can form inclusion complexation with various unstable or insoluble guest chemicals, thereby implying great potential for industrial application. Typical separation of pure cellular cyclosophoraoses has been so far carried out by several time-consuming steps, including size exclusion, anion exchange, and desalting liquid chromatographies, with a relatively poor recovery. However, the proposed method demonstrated that the successive application of fractional ethanol precipitation and one step of silica gel-based flash column chromatography was enough to simultaneously purify neutral or anionic forms of cyclosophoraoses. This novel technique is very rapid and provides a high recovery.
The aim of this study was to introduce a simple method for isolation of ${\alpha}$-lactalbumin, ${\beta}$-lactoglobulin and bovine serum albumin from cow's milk, and peptides produced by enzymatic hydrolysis of ${\alpha}$-lactalbumin, ${\beta}$-lactoglobulin and bovine serum albumin with alcalase. Whey protein were precipitated from whey by ammonium sulfate and, ${\alpha}$-lactalbumin and ${\beta}$-lactoglobulin were isolated using Hi Prep 26/60 Sephacryl S-100 column gel filtration chromatography. Bovine serum albumin and ${\beta}$-lactoglobulin were isolated by Mono-Q 5/50 GL column anion exchange chromatography of the 50% Ammonium Sulfate-supernatant. Isolated whey proteins were hydrolyzed by proteolytic alcalase. Tricine SDS-PAGE and reverse-phase HPLC analyses revealed that almost hydrolyzed all the ${\alpha}$-lactalbumin, ${\beta}$-lactoglobulin and bovine serum albumin with alcalase. Molecular weight of various peptides derived from alcalase hydrolysate were small molecular weight than 3.5 kDa.
The effect of Sodium Butyrate (NaBu) on the N-linked oligosaccharide structure of Erythropoietin (EPO) was investigated. Recombinant human EPO was produced by CHO cells grown in an $MEM{\alpha}$ medium with or without 5 mM NaBu, and purified from the culture supernatants using a heparin-sepharose affinity column and immunoaffinity column. The N-linked oligosaccharides were released enzymatically and isolated by paper chromatography. The isolated oligosaccharides were then labeled with a fluorescent dye, 2-aminobenzamide, and analyzed with MonoQ anion exchange chromatography and GlycosepN amide chromatography for the assignment of a GU (glucose unit) vague. A glycan analysis by HPLC showed that the most significant characteristic effect of NaBu was a reduction in the proportion of glycans with Sri-and tetrasialylated oligodaccharides from $21.30\%$ (tri-) and $14.86\%$ (tetra-) in the control cultures (without NaBu) to $8.72\%$ (tri-) and $1.25\%$ (tetra-) in the NaBu-treated cultures, respectively. It was also found that the proportion of asialo-glycan increased from $12.54\%\;to\;23.6\%$ when treated with NaBu.
Human leptin is identified as a 16kDa (146 amino acids) protein secreted from adipocytes which influences body weight homeostasis. In order to produce active leptin, the human obese gene coding for leptin was expressed in Bacillus subtilis WB600 strain which is deficient in six extracellular proteases. The recombinant leptin was produced in a culture supernatant, and in a culture supernatant, it was contained as high as 48% for total proteins. After simple purification steps, which consisted of ammonium sulfate precipitation and anion-exchange column chromatography, 2.3 mg of leptin with a purity greater than 95% was obtained from the 0.51 culture with the recovery yield of 38.3%. The purified leptin showed the correct folding structure with one disulfied bond.
Methylotrophic actinomycetes No. 155 produced an aminoglycoside antibiotics(AG)-resistant inhibitor. We have previously reported that the inhibitor shows strong inhibition to sisomicin-resistant strain. In order to understand the functions of inhibitor and sisomicin-resistance, characterizations and purification of inhibitor were investigated. Strain No. 155 was tentatively identified as Nocardiopsis sp. based on morphological and some physiological characteristics. In the antimicrobial activity test, the addition of inhibitor to sisomicin showed a reduction effect of MIC on the test strains such as Gram(+), Gram(-) bacteria and yeasts. The combination of the inhibitor and various antibiotics revealed synergistic against E. coli K-12 and B. subtilis PCI 219. The induced intracellular proteins from sisomicin-resistant strain exhibited the sisomicin inactivation by invitro test. And the induced intracellular proteins were inactivated by addition of the inhibitor. The inhibitor compound was purified by anion exchange chromatography(Dowex-1) and HPLC using Asahipak ES-502C column. The purified inhibitor compound was detected in a single peak(above 98.5% purity) through the HPLC analysis.
Iron is an essential nutrient for most organisms, which supplied to them in a protein-iron complex known as ferritin. Ferritins are multimeric proteins those are consisted of spherical shell of 24 subunits defining a cavity of about 8nm in diameter. Soluble form of ferritin was separated from disrupted cells, followed by silica powder adsorption. Ferritin was recovered from silica-poweder by distiiled water, which was applied to DEAE anion exchage chromatography. Collected fractions from the DEAE column were assayed to gain the amount and the purity of ferritin by using GF-HPLC.
Juvenile hormone binding protein was identified in the hemolymph of fifth instar larvae and purified using column chromatography. Hemolymph was mixed with [3H] JH-III and electrophoresed on 691 NON-SDS gel, indicating that radioactivity peak appears at Rf value of 0.55. Gel filtration showed two radioactivity peaks equivalent to bound and free [3H]JH-III, respectively. JHBP was purified from hemolymph through gel filtration (Sephadex G-100), anion exchange chromatosraphv (DEAE Sepharose CL-6B), chromatofocusing chromatographv (PBE 94) and preparative electrophoresis.
A continuous potential pulse is applied to a silver-working electrode on a pulsed amperometric detector (PAD) for detection of free cyanide and sulfide. The moving phase is 0.1 M sodium hydroxide, 0.5 M sodium acetate and 5% (v/v) ethylenediamine mixture, and the flow rate is 0.7 mL/min. Optimized pulse conditions include a -200 mV (vs. Ag/AgCl reference electrode) detection potential(Ed) for 60 msec and 50 mV cleaning potential (Ec) for 120 msec. The silver working electrode surface is not poisoned by cyanide or sulfide, and the PAD maintains long-term stability without loss of sensitivity and reproducibility at these pulse conditions. The detection limit of cyanide and sulfide separated by ion chromatography using an anion exchange column is 0.1 ppm and 0.05 ppm, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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