최근 20여년 동안 Panax ginseng의 다양한 효과가 연구 되어져 왔다. Panax ginseng의 주요 활성 성분인 ginsenosides는 오직 인삼에서만 발견되어지는 saponin이다. 최근 들어 신경, 非신경 또는 복합적으로 분포된 세포에서 ginsenoside가 $Ca^2+$, $K^+$,$Na^+$,$Cl^-$ channel이나 ligand gated ionchannel (5-HT3, nicotinic acetylcholine, NMDA receptor)과 같은 다양한 ion channel을 조절하는증거들이 발표되고 있다. Ginsenoside는 voltage-dependent $Ca^2+$, $K^+$,$Na^+$ channel의 활성을 억제하는 반면 $Ca^2+$-activated $Cl^-$ channel이나 $Ca^2+$-activated $K^+$ channel의 활성은 증가 시키는 것으로 나타났다. 또한 흥분성 ligand-gated ion channel인 $5-HT_3$, nicotinic acetylcholine, NMDA receptor의 활성은 억제한다. 본 총설에서는 현재까지 알려진 ion channel 활성에 대한 ginsenoside의 조절작용과 이것으로 인해 어떻게 생물학적 효능과 연결이 되어있는지에 대하여 이야기하고자 한다.
Plasma membrane hyperpolarization associated with activation of $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channels plays an important role in sperm capacitation during fertilization. Although Slo3 (slowpoke homologue 3), together with the auxiliary ${\gamma}^2$-subunit, LRRC52 (leucine-rich-repeat-containing 52), is known to mediate the pH-sensitive, sperm-specific $K^+$ current KSper in mice, the molecular identity of this channel in human sperm remains controversial. In this study, we tested the classical $BK_{Ca}$ activators, NS1619 and LDD175, on human Slo3, heterologously expressed in HEK293 cells together with its functional interacting ${\gamma}^2$ subunit, hLRRC52. As previously reported, Slo3 $K^+$ current was unaffected by iberiotoxin or 4-aminopyridine, but was inhibited by ~50% by 20 mM TEA. Extracellular alkalinization potentiated hSlo3 $K^+$ current, and internal alkalinization and $Ca^{2+}$ elevation induced a leftward shift its activation voltage. NS1619, which acts intracellularly to modulate hSlo1 gating, attenuated hSlo3 $K^+$ currents, whereas LDD175 increased this current and induced membrane potential hyperpolarization. LDD175-induced potentiation was not associated with a change in the half-activation voltage at different intracellular pHs (pH 7.3 and pH 8.0) in the absence of intracellular $Ca^{2+}$. In contrast, elevation of intracellular $Ca^{2+}$ dramatically enhanced the LDD175-induced leftward shift in the half-activation potential of hSlo3. Therefore, the mechanism of action does not involve pH-dependent modulation of hSlo3 gating; instead, LDD175 may modulate $Ca^{2+}$-dependent activation of hSlo3. Thus, LDD175 potentially activates native KSper and may induce membrane hyperpolarization-associated hyperactivation in human sperm.
본 연구자를 위시한 많은 연구자에 의해 칼슘이 N형 칼슘통로의 비활성화를 촉진시킨다는 것이 보고되었다. 그러나 칼슘에 의한 비활성화 촉진 효과가 고전적인 칼슘의존성 기전에 의해 기인하는지는 아직 확실하지 않다. L형 칼슘통로의 칼슘의존성 비활성화기전을 밝히기 위하여 지금까지 사용해온 방법의 하나는 세포내, 외의 칼슘농도를 변화시켜보는 것이다. 그러므로 본 연구에서는 칼슘의존성 비활성화기전의 존재 여부를 알아보기 위하여 2가 양이온을 1가 양이온인 메틸아민($MA^+$)으로 치환하였다. 선행 연구를 통해 우리는 5초 동안의 긴 저분극 자극 시 바륨과 칼슘을 사용하여 얻은 전류에서 모두 빠른 성분(${\tau}{\sim}150ms$)과 느린 성분(${\tau}{\sim}2,500ms$)의 비활성화가 있음을 알 수 있었다. 본 연구에서 세포외 2가 양이온의 농도가 0이 되도록 하였을 때 빠른 비활성화가 소실된 반면 느린 비활성화에는 영향이 거의 없었다. 또한 바륨를 사용하였을 때보다 10 mV씩 과분극시킨 전압에서의 메틸암모늄 전류 데이터를 비교하여 보았을 때 느린 비활성화의 시정수가 서로 잘 일치하였으며 이 시정수는 막전압이 저분극될수록 감소하는 막전압의존성 비활성화의 특성을 보였다. 본 연구결과와 선행연구의 결과를 종합하여 볼 때 세포외 2가 양이온의 존재는 N형 칼슘통로의 빠른 비활성화가 일어나기 위하여 필수적인 조건이며 이러한 2가 양이온의존성 비활성화기전은 기존의 칼슘의존성 또는 막전압의존성 기전과 다르다는 가설을 제안한다.
In our previous study (Soh and Park, 2001), we proposed that the inwardly rectifying current-voltage (I-V) relationship of small-conductance $Ca^{2+}$-activated $K^{+}$ channels (S $K_{Ca}$ channels) is the result of voltage-dependent blockade of $K^{+}$ currents by intracellular divalent cations. We expressed a cloned S $K_{Ca}$ channel, rSK2, in Xenopus oocytes and further characterized the nature of the divalent cation-binding site by electrophysiological means.(omitted)
Inactivation of N-type calcium current has been reported to be both voltage dependent and Ca$\^$2+/ dependent. We have investigated the effects of Ba$\^$2+/ and Ca$\^$2+/ on N-channel inactivation in rat superior cervical ganglion neurons using the whole cell configuration of patch clamp technique. Inactivation was larger in Ca$\^$2+/ than in Ba$\^$2+/ even with 20 mM BAPTA.(omitted)
Park, Jin-Bong;Kim, Hee-Jeong;Cho, Myung-Haing;Lee, Hang;Park, Hong-Ki;Lee, Mun-Han;Ryu, Pan-Dong
The Korean Journal of Physiology
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제29권1호
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pp.13-27
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1995
single $K^{+}$ channels of skeletal muscle from the rat and frog were into planar lipid bilayers and their properties were studied. Fusion was induced by an osmotic gradient. Of the four types of $K^{+}$ channels recorded, the two most frequently observed were a voltage and $Ca^{2+}-activated$$K^{+}$ channel and a $K^{+}$ channel with a prominent conductance substate. The first $K^{+}$ channel was identified as the large $Ca^{2+}-activated$$K^{+}$ (BK) channel because the open-state probability was increased with depolarization (e-fold change per $10.6{\pm}3.5$ mV, n=8) and internal $Ca^{2+}$ (half-activation at $16.7{\pm}3.8$ mV, n=8, pCa 4) and its conductance was large ($247{\pm}4.9$ pS, n=24 in 0.1 M KCI). Lifetime distributions of open- and closed-states could be fitted with single exponentials of several milliseconds. The mean open- and closed-lifetimes were linearly dependent on the intracellular $[Ca^{2+}]$ and $1/[Ca^{2+}]$, respectively. The second $K^{+}$ channel showed a conductance substate at $30{\sim}60%$ of the open state. Its current-voltage relation was linear in the range of $-80\;{\sim}\;+80\;mV$. The slope conductance of the substate and open-state were 40 and 144 pS in 0.2 M KCl, respectively. The channel was highly selective for $K^{+}$ over Cl. The open-state probability was weakly voltage-dependent (e-fold change per 35 mV. The lifetime distributions of open- and closed-states were fitted with two exponentials and the major gating occurred slowly at several hundred milliseconds. Based on the above results, we think the second type of $K^{+}$ channel is the sarcoplasmic reticulum $K^{+}$ (SRK) channel. In addition, both types of channel were also incorporated into the lipids extracted from the skeletal muscle. The channel properties recorded in the bilayers termed from synthetic and extracted lipids were qualitatively similar. Our data indicate that BK and SRK channels are rich in the skeletal muscle and their properties and regulation could be effectively studied in planar lipid bilayer.
There is evidence that noradrenaline enhances spontaneous contractions dose-dependently in guinea-pig antral circular muscle. To investigate the mechanism of this excitatory action, slow waves and membrane currents were recorded using conventional microelectrode techniques in muscle strips and the whole cell patch clamp technique in isolated gastric myocytes. On recording slow waves, noradrenaline $(10^{-5}\;M)$ induced the hyperpolarization of the membrane potential, although the shape of the slow waves became tall and steep. Also, spike potentiaIs occurred at the peaks of slow waves. These changes were completely reversed by administration of phentolamine $(10^{-5}\;M),\;an\;{\alpha}-adrenoceptor$ blocker. Noradrenaline-induced hyperpolarization was blocked by apamin $(10^{-7}\;M)$, a blocker of a class of $Ca^{2+}\;-dependent\;K^+$ channels. To investigate the mechanisms for these effects, we performed whole cell patch clamp experiments. Norndrenaline increased voltage-dependent $Ca^{2+}$ currents in the whole range of test potentials. Noradrenaline also increased $Ca^{2+}\;-dependent\;K^+$\;currents, and this effects was abolished by apamin. These results suggest that the increase in amplitude and the generation of spike potentials on slow waves was caused by the activation of voltage-dependent $Ca^{2+}$ channel via adrenoceptors, and hyperpolarization of the membrane potential was mediated by activation of apamin-sensitive $Ca^{2+}\;-dependent\;K^+\;channels$.
Adrenal chromaffin cells secrete catecholamine in response to acetylcholine. The secretory response has absolute requirement for extracellular calcium, indication that $Ca^{2+}$ influx through voltage dependent $Ca^{2+}$ channel (VDCC) is the primary trigger of the secretion cascade. Although the existence of various types of $Ca^{2+}$ channels has been explored using patch clamp technique in adrenal chromaffin cells, the contribution of different types of $Ca^{2+}$ channels to catecholamine secretion remains to be established. To investigate the quantative contribution of different types of $Ca^{2+}$ channels to cate-cholamine secretion, $Ca^{2+}$ current($I_{Ca}$) and the resultant membrane capacitance increment($\Delta{C}_{m}$) were simultaneoulsy measured. Software based phasor detector technique was used to monitor $\Delta{C}_{m}$. After blockade of L type VDCC with nicardipine (1$\mu$M), $I_{ca}$ was blocked to 43.85$\pm$6.72%(mean$\pm$SEM) of control and the resultant ㅿC$_{m}$ was reduced ot 30.10$\pm$16.44% of control. In the presence of nicardipine and $\omega$-conotoxin in GVIA(l$\mu$M), an N type VDCC antagonist, $I_{ca}$ was blocked to 11.62$\pm$2.96% of control and the resultant $\Delta{C}_{m}$ was reduced to 26.13$\pm$8.25% of control. Finally, in the presence of L, N, and P type $Ca^{2\pm}$ channel antagonists(nicardipine, $\omega$-Conotoxin GVIA, and $\omega$-agatoxin IVA, respectively), $I_{ca}$ and resultant $\Delta{C}_{m}$ were almost completely blocked. From the observation of parallel effects of $Ca^{2+}$ channel antagonists on $I_{ca}$ and $\Delta{C}_{m}$, it was concluded that L, N, and also P type $Ca^{2+}$ channels served and $Ca^{2+}$ source for exocytosis and no difference was observed in their efficiency to evoke exocytosis amost L, N, and P type $Ca^{2+}$ channels.
Although the $Ca^{2+}-activated\;K^+\;(I_{K,Ca})$ channel is known to play an important role in the maintenance of resting membrane potential, the regulation of the channel in physiological condition is not completely understood in vascular myocytes. In this study, we investigated the role of cytoplasmic $Mg^{2+}$ on the regulation of $I_{K,Ca}$ channel in pulmonary arterial myocytes of the rabbit using the inside-out patch clamp technique. $Mg^{2+}$ increased open probability (Po), but decreased the magnitude of single channel current. $Mg^{2+}-induced$ block of unitary current showed strong voltage dependence but increase of Po by $Mg^{2+}$ was not dependent on the membrane potential. The apparent effect of $Mg^{2+}$ might, thus, depend on the proportion between opposite effects on the Po and on the conductance of $I_{K,Ca}$ channel. In low concentration of cytoplasmic $Ca^{2+},\;Mg^{2+}$ increased $I_{K,Ca}$ by mainly enhancement of Po. However, at very high concentration of cytoplasmic $Ca^{2+},$ such as pCa 5.5, $Mg^{2+}$ decreased $I_{K,Ca}$ through the inhibition of unitary current. Moreover, $Mg^{2+}$ could activate the channel even in the absence of $Ca^{2+}.\;Mg^{2+}$ might, therefore, partly contribute to the opening of $I_{K,Ca}$ channel in resting membrane potential. This phenomenon might explain why $I_{K,Ca}$ contributes to the resting membrane potential where membrane potential and concentration of free $Ca^{2+}$ are very low.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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