Anthrax caused by Bacillus anthracis is one of the most important zoonotic diseases. The bacterium produces several virulence factors. Of the factors, protective antigen (PA) of tripatite toxin has been identified as a central component in the pathogenesis of anthrax. However, precise roles of PA and other cellular components in the reaction with the target cells remain to be elucidated, especially in the initial stage of the disease. Three B anthracis antigens were prepared for investigation; PA, sonicated cellular antigens (S-Ag) and formalin-inactivaed whole cell antigens (W-Ag). PA was purified from culture supernatant of the bacterium using FPLC system with MonoQ. S-Ag and W-Ag were prepared by sonication and formalin inactivation of the cultured cells, respectively. Purity of the antigens was confirmed by SDS-PAGE and Western blot analysis. The roles of these antigens in the production of inflammatory mediators such as NO, IL-6 and $TNF{\alpha}$ from mouse peritoneal macrophages were investigated. PA alone did not induce the production of the inflammatory mediators while the other antigens, S-Ag and W-Ag, did in a dose and time dependent manner. These results suggested that in addition to major virulence factors, other cellular antigens are also involved in the initial stage of the disease by the induction of inflammatory mediators.
Park, Jeong Woo;Cho, Miyoung;Lee, Unn Hwa;Choi, Hye Sung
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.54
no.5
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pp.596-616
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2021
A global increase in fish consumption has led to a rapid expansion of aquaculture production, which has been linked to enhancing the spread of infectious diseases. Viral diseases can cause high mortality in many cultured fish species, posing a serious threat to the aquaculture industry. Infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV) is one of the primary threats to aquacultured salmonid species, causing huge economic losses. Since the first report in cultured sockeye salmon Oncorhynchus nerka during the 1950s in North America, IHNV has spread to other regions, including Europe, Asia, South America, and Africa by transportation of infected fish and eggs, causing disease and increasing mortality in a wide variety of salmonid species. Here, we review existing information relevant to IHNV: its phylogenetic characteristics, origin, infection history, virulence determinants, susceptible hosts, vectors, and vaccine development. This review also addresses a possible cross-species transmission of IHNV to a new host, olive flounder Paralichthys olivaceus, a cultured fish of economic importance in East Asian countries.
Oh, Young Taek;Lee, Kang-Mu;Bari, Wasimul;Kim, Hwa Young;Kim, Hye Jin;Yoon, Sang Sun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.3
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pp.627-636
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2016
The causative agent of pandemic cholera, Vibrio cholerae, infects the anaerobic environment of the human intestine. Production of cholera toxin (CT), a major virulence factor of V. cholerae, is highly induced during anaerobic respiration with trimethylamine N-oxide (TMAO) as an alternative electron acceptor. However, the molecular mechanism of TMAO-stimulated CT production is not fully understood. Herein, we reveal that CT production during anaerobic TMAO respiration is affected by glucose fermentation. When the seventh pandemic V. cholerae O1 strain N16961 was grown with TMAO and additional glucose, CT production was markedly reduced. Furthermore, an N16961 Δcrp mutant, devoid of cyclic AMP receptor protein (CRP), was defective in CT production during growth by anaerobic TMAO respiration, further suggesting a role of glucose metabolism in regulating TMAO-mediated CT production. TMAO reductase activity was noticeably decreased when grown together with glucose or by mutation of the crp gene. A CRP binding region was identified in the promoter region of the torD gene, which encodes a structural subunit of the TMAO reductase. Gel shift assays further confirmed the binding of purified CRP to the torD promoter sequence. Together, our results suggest that the bacterial ability to respire using TMAO is controlled by CRP, whose activity is dependent on glucose availability. Our results reveal a novel mechanism for the regulation of major virulence factor production by V. cholerae under anaerobic growth conditions.
A diverse range of stresses such as heat, cold, salt, ethanol, oxygen starvation or nutrient starvation induces same stress-responsive proteins. This general stress response enhances bacterial survival significantly. In Bacillus subtilis and closely related Gram-positive bacteria Listeria monocytogenes, the general stress response is controlled by the alternative transcription factor ${\sigma}^B$. The activity of ${\sigma}^B$ is regulated post-translationally by a signal transduction network that has been extensively studied in B. subtilis, and serve as a model for L. monocytogenes. The proposed model of L. monocytogenes signal transduction network is similar to that of B. subtilis, but the energy stress pathway is missing. More than 150 general stress proteins belong to ${\sigma}^B$ regulon of B. subtilis and L. monocytogenes. In both bacteria, ${\sigma}^B$ function is primarily important for resistance to diverse stresses. In addition, ${\sigma}^B$ function contributes to the control of important virulence genes in food-borne pathogen L. monocytogenes. Therefore, understanding of the general stress response is important not only for bacterial physiology, but also for pathogenicity.
Kim, Sung-Geun;Hong, Ji-Youn;Shin, Seung-Il;Moon, Ji-Hoi;Lee, Jin-Yong;Herr, Yeek
Journal of Periodontal and Implant Science
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v.46
no.1
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pp.35-45
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2016
Purpose: Porphyromonas gingivalis fimA is a virulence factor associated with periodontal diseases, but its role in the pathogenesis of peri-implantitis remains unclear. We aimed to evaluate the relationship between the condition of peri-implant tissue and the distribution of P. gingivalis fimA genotypes in Koreans using a new primer. Methods: A total of 248 plaque samples were taken from the peri-implant sulci of 184 subjects. The control group consisted of sound implants with a peri-implant probing depth (PD) of 5 mm or less with no bleeding on probing (BOP). Test group I consisted of implants with a peri-implant PD of 5 mm or less and BOP, and test group II consisted of implants with a peri-implant PD of more than 5 mm and BOP. DNA was extracted from each sample and analyzed a using a polymerase chain reaction (PCR) with P. gingivalis -specific primers, followed by an additional PCR assay to differentiate the fimA genotypes in P. gingivalis-positive subjects. Results: The Prevalence of P. gingivalis in each group did not significantly differ (P>0.05). The most predominant fimA genotype in all groups was type II. The prevalence of type Ib fimA was significantly greater in test group II than in the control group (P<0.05). Conclusions: The fimA type Ib genotype of P. gingivalis was found to play a critical role in the destruction of peri-implant tissue, suggesting that it may be a distinct risk factor for periimplantitis.
Kwon, Yoo Jin;Chun, Byung Hee;Jung, Hye Su;Chu, Jaeryang;Joung, Hyunchae;Park, Sung Yurb;Kim, Byoung Kook;Jeon, Che Ok
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.31
no.10
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pp.1420-1429
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2021
The safety of the probiotic strain Q180, which exerts postprandial lipid-lowering effects, was bioinformatically and phenotypically evaluated. The genome of strain Q180 was completely sequenced, and single circular chromosome of 3,197,263 bp without any plasmid was generated. Phylogenetic and related analyses using16S rRNA gene and whole-genome sequences revealed that strain Q180 is a member of Lactiplantibacillus (Lp., formerly Lactobacillus) plantarum. Antimicrobial resistance (AMR) genes were bioinformatically analyzed using all Lp. plantarum genomes available in GenBank, which showed that AMR genes are present differently depending on Lp. plantarum strains. Bioinformatic analysis demonstrated that some mobile genetic elements such as prophages and insertion sequences were identified in the genome of strain Q180, but because they did not contain harmful genes such as AMR genes and virulence factor (VF)- and toxin-related genes, it was suggested that there is no transferability of harmful genes. The minimum inhibition concentrations of seven tested antibiotics suggested by the European Food Safety Authority guidelines were slightly lower than or equal to the microbiological cut-off values for Lp. plantarum. Strain Q180 did not show hemolytic and gelatinase activities and biogenic amine-producing ability. Taken together, this study demonstrated the safety of strain Q180 in terms of absence of AMR genes and VF- and toxin-related genes as a probiotic strain.
Among the AAA+ proteases in bacteria, FtsH is a membrane-bound ATP-dependent metalloprotease, which is known to degrade many membrane proteins as well as some cytoplasmic proteins. In the intracellular pathogen Salmonella enterica serovar Typhimurium, FtsH is responsible for the proteolysis of several proteins including MgtC virulence factor and MgtA/MgtB Mg2+ transporters, the transcription of which is controlled by the PhoP/PhoQ two-component regulatory system. Given that PhoP response regulator itself is a cytoplasmic protein and also degraded by the cytoplasmic ClpAP protease, it seems unlikely that FtsH affects PhoP protein levels. Here we report an unexpected role of the FtsH protease protecting PhoP proteolysis from cytoplasmic ClpAP protease. In FtsH-depleted condition, PhoP protein levels decrease by ClpAP proteolysis, lowering protein levels of PhoP-controlled genes. This suggests that FtsH is required for normal activation of PhoP transcription factor. FtsH does not degrade PhoP protein but directly binds to PhoP, thus sequestering PhoP from ClpAP-mediated proteolysis. FtsH's protective effect on PhoP can be overcome by providing excess ClpP. Because PhoP is required for Salmonella's survival inside macrophages and mouse virulence, these data implicate that FtsH's sequestration of PhoP from ClpAP-mediated proteolysis is a mechanism ensuring the amount of PhoP protein during Salmonella infection.
Lee, Min Ho;Woo, Hyun Jun;Park, Min;Moon, Cheol;Eom, Yong-Bin;Kim, Sa-Hyun;Kim, Jong-Bae
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.44
no.2
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pp.218-226
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2016
Helicobacter pylori primarily colonizes the human stomach. Infection by this bacterium is associated with various gastric diseases, including inflammation, peptic ulcer, and gastric cancer. Although there are antibiotic regimens for the eradication of H. pylori, the resistance of this species against antibiotics has been continuously increasing. The natural compound plumbagin has been reported as an antimicrobial and anticancer molecule. In this study, we analyzed the inhibitory effect of plumbagin on H. pylori strain ATCC 49503 as well as the expression of various molecules associated with H. pylori growth or virulence by immunoblotting and reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) analyses. We demonstrated the minimal inhibitory concentration of plumbagin on H. pylori through the agar dilution and broth dilution methods. Furthermore, we investigated the effect of plumbagin treatment on the expression of the RNA polymerase subunits and various virulence factors of H. pylori. Plumbagin treatment decreased the expression of RNA polymerase subunit alpha (rpoA), which is closely associated with bacterial survival. Moreover, the mRNA and protein levels of the major CagA and VacA toxins were decreased in plumbagintreated H. pylori cells. Likewise, the expression levels of urease subunit alpha (ureA) and an adhesin (alpA) were decreased by plumbagin treatment. Collectively, these results suggest that plumbagin may inhibit the growth, colonization, and pathogenesis of H. pylori by the mechanism demonstrated in this study.
We characterized the proteomes of murine N2a cells following infection with three rabies virus (RV) strains, characterized by distinct virulence phenotypes (i.e., virulent BD06, fixed CVS-11, and attenuated SRV9 strains), and identified 35 changes to protein expression using two-dimensional gel electrophoresis in whole-cell lysates. The annotated functions of these proteins are involved in various cytoskeletal, signal transduction, stress response, and metabolic processes. Specifically, a-enolase, prx-4, vimentin, cytokine-induced apoptosis inhibitor 1 (CIAPIN1) and prx-6 were significantly up-regulated, whereas Trx like-1 and galectin-1 were down-regulated following infection of N2a cells with all three rabies virus strains. However, comparing expressions of all 35 proteins affected between BD06-, CVS-11-, and SRV9-infected cells, specific changes in expression were also observed. The up-regulation of vimentin, CIAPIN1, prx-4, and 14-3-3 ${\theta}/{\delta}$, and down-regulation of NDPK-B and HSP-1 with CVS and SRV9 infection were ${\geq}2$ times greater than with BD06. Meanwhile, Zfp12 protein, splicing factor, and arginine/serine-rich 1 were unaltered in the cells infected with BD06 and CVS-11, but were up-regulated in the group infected with SRV9. The proteomic alterations described here may suggest that these changes to protein expression correlate with the rabies virus' adaptability and virulence in N2a cells, and hence provides new clues as to the response of N2a host cells to rabies virus infections, and may also aid in uncovering new pathways in these cells that are involved in rabies infections. Further characterization of the functions of the affected proteins may contribute to our understanding of the mechanisms of RV infection and pathogenesis.
The PI-oduction of virulence factors such as cholera toxin, heinolysin and hemagglutinin in V cliolerae non-01 and non-0139 were examined. Among 65 strains isolated from environmental and clinical blood sources, 29 (14.6%) strains produced hemolysin only, 35(53.9%) sh.ains produced both hemolysin and hemagglutinin. From one 037 slrain isolated from environmenl, cholera toxin, ctx gene, hemolysin, and hemagglutinin were detected. All of the strains isolated from clinical and environmental sources showed hemolytic activity against human 0 group e~ythrocytes. In inhibition patterns of heinagglotination, 5 of 18 clinical strains (27.8%) were inhibited by less than 1% mannose and galactose, while, among the 47 environmental isolates. hose paltems by less than 1% mannose and galactose 55.4% wel-e inhibited. Thel-ehre, exohamagglutinin positive rate was high in clinical blood isolates but in environnlental sources, the rate was almost similar lo ihe rate or endohemagglutinin positive. These results indicaled that V cholerae non-01 and non-0139 produced various virnlence factors such as cholera toxin, hemolysin, and hemagglutinin but not a single factor. Further studies are need for epidemiological or bacteriological shtdies of V cholerae 037 isolated from environment.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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