The glycoprotein of novirhabdoviruses is known to play a critical role in the determination of host specificity. Viral hemorrhagic septicemia viruses (VHSVs) in different genotypes have different glycoprotein sequences and show different preferences for specific cell lines. In this study, to know whether the glycoprotein is solely responsible for the host cell preference of VHSV, a recombinant VHSV expressing vesicular stomatitis virus (VSV) glycoprotein instead of VHSV IVa glycoprotein (rVHSV-VSV-G) was generated by reverse genetics and inoculated into several fish cell lines, then, cytopathic effect (CPE) and viral growth caused by rVHSV-VSV-G infection were compared with those caused by rVHSV-wild that was previously generated and has the same genomic sequence with wild-type VHSV except a few nucleotides. The plaque numbers of rVHSV-VSV-G were significantly higher in EPC, BF-2 and GF cells than those of rVHSV-wild. However, in HINAE cells (originated from olive flounder), rVHSV-VSV-G titer was significantly lower than rVHSV-wild titer, and both recombinant VHSVs were not grown well in CHSE-214 cells. Although statistical significances were detected in the titers between rVHSV-wild and rVHSV-VSV-G in several cell lines, the cell line-preference order of rVHSV-VSV-G was not different from that of rVHSV-wild. These results suggest that the replacement of VHSV glycoprotein may not completely change host cell preference, and other regions of VHSV might also involve in the determination of host cell preference.
Viral hemorrhagic septicemia (VHS) is one of the most serious viral diseases affecting farmed olive flounder (Paralichthys olivaceus) in Asian countries. VHS, caused by viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV), occurs in over 80 different cultured and wild fish species worldwide. Our previous study demonstrated that VHSV infection can be restricted by adjusting the water temperature to over 17℃ from the host optima. We confirmed that the effective VHSV immersion vaccine treatment was a tissue culture infection dose (TCID) of 105.5 TCID50/mL at 17℃. However, the safety of live VHSV immersion vaccines remains unclear. The objectives of this study were to 1) demonstrate the safety of the live VHSV immersion vaccine under co-habitant conditions and 2) estimate the pathogenicity of VHSV in live VHSV-vaccinated flounder at 10℃. No mortality was observed in olive flounder treated with the live VHSV immersion vaccine, and the vaccinated flounder challenged with VHSV did not transfer VHSV to naïve fish at 10℃ through cohabitation. VHSV titration was below the detection limit (< 1.3 log TCID50/mL) in live VHSV immersion vaccine-treated flounder challenged with VHSV at 10℃. This study demonstrated that flounder treated with the live VHSV immersion vaccine were resistant to VHSV infection, and the live vaccine was also safe for naïve fish even at a water temperature known to be VHS infectious.
본 연구에서는 넙치 유래 VHSV (genotype IVa)에 의한 무지개송어의 영향을 조사하기 위하여 다양한 조건에서 감염 실험을 실시하였다. 3개의 다른 로트의 담수 무지개송어 치어에 VHSV ($10^{6.3-7.3}TCID_{50}$/fish)를 복강 주사한 결과, 15% 이하의 누적 폐사율이 관찰되었다. 무지개송어 (in vivo)를 사용하여 VHSV를 계대 배양한 후 감염 실험을 실시한 결과, VHSV를 5회 계대 배양하여도 독력의 변화는 관찰되지 않았다. 해수에 사육 중인 송어 (성어)에 넙치 유래 VHSV ($10^{5.3}TCID_{50}$/fish와 $10^{6.3}TCID_{50}$/fish)를 복강 주사한 결과, 폐사어는 관찰되지 않았고, 어체 내에서도 VHSV는 검출되지 않았다. 이상의 결과, 해수 송어 (성어)에서는 넙치 유래 VHSV의 병원성이 확인되지 않았으나 담수 무지개송어 치어에서는 낮은 독력을 나타내었다.
해수 환경 중의 VHSV 분포 조사를 위하여, 2003년 2월에서 5월까지 동해 및 남해안 인근 해역에 서식하는 자연산 해수 어류를 채집하였다. 바이러스 분리용 시료는 9종의 해수 어류로서 42개의 시료를 분석하였다. 각 시료의 조직여과액을 Epithelioma papulosum cyprini (EPC) cells에 접종한 결과, 고등어 Scomber japonicus와 숭어 Mugil cephalus에서 바이러스가 분리되었으며 이들 바이러스는 RT-PCR법을 이용하여 VHSV로 동정할 수 있었다. 고등어에서 VHSV가 검출되었다는 기보고는 있지만, 숭어에 대해서는 본 연구에서 처음으로 VHSV를 분리하였다. 자연산 어류에서 유래된 세 개의 VHSV isolates에 대한 glycoprotein gene을 분석한 결과, 이들 바이러스는 양식 넙치에서 질병을 유발하는 VHSV isolates와 유사하며 모두 genogroup I (American type)에 속하는 것으로 밝혀졌다.
본 연구에서는 넙치(Paralichthys olivaceus)로부터 분리한 바이러스성출혈성패혈증바이러스(viral hemorrhagic septicemia virus, VHSV, genotype IVa)에 대한 단클론 항체(monoclonal antibody, MAb)를 개발하였다. VHSV에 대한 항체를 생산하는 총 5개의 hybridoma clone을 생산하였다. 4개의 MAbs (2C10, 18H4, 23H6, 30B7)는 glycoprotein을 인식하였고, MAb 15E10은 nucleocapsid protein을 인식하였다. 5개의 MAbs는 western blot 상에서 VHSV에 감염된 세포와 넙치시료에 반응하였으나, 정상 세포와 넙치시료에는 반응하지 않았다. 또한 ELISA상에서 VHSV에만 반응하였고 6종의 어류바이러스(IHNV, HIRRV, SVCV, IPNV, MABV, NNV)에는 반응하지 않았다. 이상의 결과, 본 연구에서 제작된 MAbs는 VHSV에만 특이적으로 반응하는 것이 확인되어 VHSV를 검사하는데 사용될 수 있을 것으로 사료된다.
바이러스성 출혈성 패혈증을 일으키는 VHSV는 국내의 넙치양식에 심각한 피해를 주고 있다. 본 연구에서는 우리나라에서 분리한 8종의 VHSV 분리주들의 glycoprotein (G)의 염기서열을 분석하여 Korean VHSV 분리주들과 기보고된 일본 및 중국의 분리주들을 계통발생학적으로 비교하여 G-protein의 8 부위(G34, C528, A755, T834, T951, T1147, T1221, T1336)에서 국내 VHSV 분리주들의 특이적인 서열을 확인하였고, 전 세계적으로 분리된 VHSV의 분리주들과의 비교결과 8 부위 중 3 부위 (A755, T834, T1221)의 국내VHSV 분리주 특이적 염기서열들을 확인하였다. 또한 중국 유래 VHSV 분리주의 특이적 염기서열 11 부위 (C498, C545, C548, C642, G648, T678, A738, C804, C834, G851, C1139)와 일본 유래 VHSV 분리주의 특이적 염기서열 1부위 (C179)를 확인하였다. 이상의 연구결과는 국내 특이적인 염기서열을 확보하여, 구역화된 수산생물 질병의 예찰, 모니터링 및 질병 관리에 유용하게 사용될 것으로 사료된다.
바이러스성 출혈성 패혈증 바이러스(VHSV)는 넙치를 포함한 어류 양식의 막대한 피해를 일으키는 바이러스 병원체이며, VHSV가 생성하는 6개의 바이러스 단백질들 중에서 NV 단백질이 병원성에 관여하는 것으로 알려져 있다. VHSV-감염 넙치를 이용한 전사체 마이크로 어레이의 선행 분석 결과에 의하면 VHSV 감염이 해당과정 효소들의 mRNA 발현을 억제함으로써 넙치 세포에서 ATP 생성을 감소시켰음을 알 수 있었다. 이들 결과를 토대로, 본 연구에서는 VHSV NV 단백질이 해당과정 효소인 glucokinase의 발현에 미치는 영향을 검토하였다. 본 연구의 결과에 의하면, NV 단백질은 넙치 세포에서 glucokinase의 mRNA 발현을 감소시켰으며, 새롭게 동정한 glucokinase의 유전자 프로모터의 활성 실험결과, NV 단백질이 glucokinase의 프로모터 활성을 저해함을 알 수 있었다. 이와 같은 작용 결과들로 인하여 VHSV NV 단백질의 발현이 세포 내로의 포도당 흡수 또한 감소시켰다. 이러한 결과들은 VHSV NV 단백질이 유전자 발현의 전사 수준에서 음성적으로 해당과정의 효소 발현을 조절함을 의미하며, 결국 세포 내 에너지의 결핍으로 넙치의 폐사로 이어질 가능성을 보여주는 것이다.
Mouse monoclonal antibodies (MAbs) were produced by using viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV, genotype IVa) as an immunogen, isolated from diseased olive flounder (Paralichthys olivaceus). Four hybridoma clones secreting MAbs against VHSV were established. The MAbs were recognized the nucleoprotein (MAb 4), phosphoprotein (MAb 1) and matrix protein (MAbs 2 and 3) of VHSV by western blot analysis. Among them, the MAbs 1 and 4 strongly reacted with the VHSV-infected FHM cells, but not normal FHM cells. In enzyme linked immunosorbent assay, the four MAbs reacted with the VHSV, but not different six fish viruses (infectious hematopoietic necrosis virus, hirame rhabdovirus, spring viraemia of carp virus, infectious pancreatic necrosis virus, marine birnavirus and nervous necrosis virus). These results indicate that the MAbs are useful for diagnosis of VHSV infection.
An enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) with two Novirhabdovirus antigens (viral hemorrhagic septicemia virus, VHSV and infectious hematopoietic necrosis virus, IHNV) was used to detect specific antibodies against VHSV from olive flounder (Paralichthys olivaceus) sera. In ELISA plates with VHSV culture supernatants (VHSV-Ag plate), optical density (OD) values for sera from olive flounder with VHS history (VHS sera) ranged from 0.64±0.36, and those of sera from fish without VHS history (non-VHS sera) ranged from 0.26±0.26. In IHNV-Ag plate, the OD values (0.43±0.28) for VHS sera were quite low compared to those in VHSV-Ag plates, while the OD values for non-VHS sera were almost similar. When the OD values for each serum were calculated by subtracting the OD values in the IHNV-Ag plate from those in the VHSV-Ag plate, the corrected OD values were significantly different between VHS sera and non-VHS sera. The results were completely in line with fish histories of VHS epizootics. It was considered that the corrected OD values may represent the true values recognized by VHSV-specific antibodies.
Ho, Diem Tho;Kim, Nameun;Yun, Dongbin;Kim, Ki-Hong;Kim, Jae-Ok;Jang, Gwang Il;Kim, Do-Hyung
Fisheries and Aquatic Sciences
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제25권6호
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pp.320-326
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2022
Most of the emerging diseases that threaten humans are caused by RNA viruses which are extremely mutable during evolution. The fish RNA virus, viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) can infect a broad range of aquatic animal hosts, but the transmissibility of VHSV to mammals has not been thoroughly investigated. Therefore, our study aimed to investigate the potential adverse effects of VHSV in mammals. Briefly, the survival of VHSV was determined using only minimum essential media (MEM-2) and mammalian SNU-1411 and hepa-1c1c7s cells at 15℃ and 37℃. Mice (Mus musculus, 27.3 ± 1.9 g) were intravenously injected with VHSV (2.37E+05 TCID50·mice-1) in triplicate. Clinical signs and survival rates were examined at 14 days post-challenge, and infection was confirmed in the surviving mice. The 50% tissue culture infective dose (TCID50) and polymerase chain reaction analysis were used to determine viral titers and the infection rate, respectively. The titer of VHSV suspended in MEM-2 at 15℃ was reduced by only one log after 8 days, whereas the virus maintained at 37℃ was inactivated 8 days post-inoculation (dpi). There were no recognizable cytopathic effects in either SNU-1411 or hepa-1c1c7s cells inoculated with VHSV at 15℃ and 37℃. VHSV in those cell lines at 37℃ was rapidly decreased and eventually inactivated at 12 dpi, whereas virus at 15℃ remained at low concentrations without replication. In vivo experiment showed that there were no signs of disease, mortality, or infection in VHSV-infected mice. The results of this study indicate that it is highly unlikely that VHSV can infect mammals including humans.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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