Pseudomonas fluorescens strain Gpf01, isolated from ginseng rhizosphere showed antiviral activity against Cucumber mosaic virus, when tested in a local host of CMV, Chenopodium amaranticolor. Transposon mutant library of Gpf01 was prepared using pGS9::Tn5 and the mutant Gpf01-RS19 was found to loose antiviral production. We developed primers from the flanking region of Tn5 and found a cosmid clone pAV1123, harboring 1.2 kb antiviral compound producing (avcf01) locus. When a sub-clone pPH9, which carried 9.3 kb region of pAV1123, was introduced into antivirus deficient P. fluorescens wild type strain B16, it exhibited antiviral activity. Using Tn3-gus mutagenesis and complementation analysis, it was found that the genes related to antiviral activity production resided in a 9.3 kb HindIII-HindIII fragment of pAV1123, indicating that the plasmid carries an essential genes promoting antiviral activity.
Park, Hyoung-Joon;Han, Sang-Wook;Oh, Chang-Sik;Lee, Seung-Don;Ra, Dong-Soo;Lee, Suk-Ha;Heu, Sung-Gi
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.9
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pp.1500-1509
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2008
The hybridization patterns with the avrBs3 gene that is known to determine the recognition of host specificity were used to study the diversity of Xanthomonas axonopodis pv. glycines causing bacterial leaf pustule in soybean. A total of 155 strains were isolated from diverse tissues of soybean cultivars collected in Korea and were classified into six different type strains of OcsF, SL1017, SL1018, SL1045, SL1157, and SL2098 according to the patterns of avrBs3-homologous bands. When these type strains were inoculated on various cultivars, most of the Korean strains mildly induced disease symptoms on the resistant CNS1 cultivars. Unlike other type strains, strain SL2098, which appeared not to contain any avrBs3 homolog, induced only a few pustules on even highly susceptible cultivars. When a plasmid carrying the 3.7-kb avrBs3-homologous gene from strain SL1045 was introduced into SL2098, the transformant could not recover the pathogenicity in susceptible host plants. However, when avrBs3-homologous genes of strain SL1018 were mutated by transposon mutagenesis, one of the mutants in which a 5.2-kb chromosomal band homologous to avrBs3 was disrupted could not induce the hypersensitive response on resistant cultivars such as William82 or CNS2. Our results suggest that the avrBs3 homologs may play important roles in the pathogenicity of Xanthomonas axonopodis pv. glycines and the recognition of soybean cultivars.
Kim Jin-Woo;Kim Eun-Ha;Kang Yong-Sung;Choi Ok-Hee;Park Chang-Seuk;Hwang In-Gyu
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.3
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pp.450-456
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2006
Pseudomonas fluorescens MC07 is a growth-promoting rhizobacterium that suppresses mycelial growth in fungi such as Rhizoctonia solani, Pythium ultimum, Fusarium oxysporum, and Phytophthora capsici. To determine the role of the bacterium's antifungal activity in disease suppression, we screened 2,500 colonies generated by Tn5lacZ insertions, and isolated a mutant 157 that had lost antifungal activity. The EcoRI fragment carrying Tn5lacZ was cloned into pBluescript II SK(+) and used as a probe to isolate wild-type clones from a genomic library of the parent strain, MC07. Two overlapping cosmid clones, pEH4 and pEH5, that had hybridized with the mutant clone were isolated. pEH4 conferred antifungal activity to the heterologous host P.fluorescens strain 1855.344, whereas pEH5 did not. Through transposon mutagenesis of pEH4 and complementation analyses, we delineated the 14.7-kb DNA region that is responsible for the biosynthesis of an antifungal compound. DNA sequence analysis of the region identified 11 possible open reading frames (ORF), ORF1 through ORF11. A BLAST search of each putative protein implied that the proteins may be involved in an antifungal activity similar to polyketides.
Sequence type 410 (ST410) of Escherichia coli is an extraintestinal pathogen associated with multi drug resistance. In this study, we aimed to investigate the horizontal propagation pathway of a high-risk clone of E. coli ST410 that produces Klebsiella pneumoniae carbapenemase (KPC). blaKPC-encoding E. coli and K. pneumoniae isolates were evaluated, and complete sequencing and comparative analysis of blaKPC-encoding plasmids from E. coli and K. pneumoniae, antimicrobial susceptibility tests, polymerase chain reaction, multilocus sequence typing, and conjugal transfer of plasmids were performed. Whole-genome sequencing was performed for plasmids mediating KPC-2 production in E. coli and K. pneumoniae clinical isolates. Strains E. coli CPEc171209 and K. pneumoniae CPKp171210 were identified as ST410 and ST307, respectively. CPEc171209 harbored five plasmids belonging to serotype O8:H21, which is in the antimicrobial-resistant clade C4/H24. The CPKp171210 isolate harbored three plasmids. Both strains harbored various additional antimicrobial resistance genes. The IncX3 plasmid pECBHS_9_5 harbored blaKPC-2 within a truncated Tn4401a transposon, which also contains blaSHV-182 with duplicated conjugative elements. This plasmid displayed 100% identity with the IncX3 plasmid pKPBHS_10_3 from the K. pneumoniae CPKp171210 ST307 strain. The genes responsible for the conjugal transfer of the IncX3 plasmid included tra/trb clusters and pil genes coding the type IV pilus. ST410 can be transmitted between patients, posing an elevated risk in clinical settings. The emergence of a KPC-producing E. coli strain (ST410) is concerning because the blaKPC-2-bearing plasmids may carry treatment resistance across species barriers. Transgenic translocation occurs among carbapenem-resistant bacteria, which may spread rapidly via horizontal migration.
As a part of the host cell development for a amplified recombinant trp operon, $aroP^-$ mutation was introduced in a E. coli host strain. $aroP^-$ mutation was induced by transposon Tn10 and transduced into the E. coli host cell by bacteriophage P1Kc. The effect of $aroP^-$ mutation on the excretion of tryptophan in E. coli $trpR^{-ts}/ColE_1 -trp^+$ cells was investigated. Mutant lacking the general aromatic transport system was resistant to ${\beta}-2-thienylalanine\;(2{\times}10^{-4}\;M)$, p-fluorophenylalanine $(2{\times}10^{-4}M)$, or 5-methyltryptophan $(2{\times}10^{-4}\;M.)[^3H]-tryptophan$ uptake of the $aroP^-$ mutant strain was reduced considerably as compared with $aroP^+$ counterpart. The rate of $[^3H]-tryptophan$ uptake of the $aroP^-$ mutant strain treated with $NaN_3(3{\times}10^{-2}\;M)$ was much less affected than that of $aroP^+$ counterpart. The $aroP^-$ transductants increased the tryptophan excretion from E. coli $trpR^{-ts}/ColE_1 -trp^+$ four times more than $aroP^+$ counterpart.
For the gene tagging of Armoracia rusticana, maize controlling element Ac and Ds were introduced into A.rusticana via Agrobacterium-mediated transformation method. We established an efficient in via regeneration and transformation system for gene transfer in A. rusticana. The optimum in via regeneration condition has been obtained from leaf, petiole and root organs on modified MS medium supplemented with NAA 0.1 mg/L plus BA 1.0 mg/L for direct shooting and with free growth regulators for root induction for transformation, the leaf, petiole and root explants of A. rusticana were concultivated with Agrobacterium tumefaciens, LBA4404 which carries a binary vector pEND4K containing maize controlling element Ac or Ds, respectively: Selections were performed in the shoot induction medium supplemented with 100 mg/L kanamycin, and 500 mg/L carbenicillin transformation frequency showed about 8 to 10% in case of leaf disks. PCR md Southern blot analyses showed that the Ac and the Ds elements were integrated into the chromosome of donor plants.
Two maize transposable elements, immobilized Ac (iAc) and Ds, have been introduced into the genome of a diploid potato clone (Solanum tuberosum Group Phureja clone 1.22). The iAc is a modified Ac that is supposed to be unable to transpose but is expected to trans-activate the transposition of a Ds that is unable to transpose by itself. When the leaf and stem explants of in vitro shoots of the clone 1.22 were inoculated with Agrobacterium tumefaciens strains harboring binary vectors containing the iAc and the Ds, calli were formed from the explants on media containing 50 mg/L of kanamycin, and shoots were regenerated from the calli. The regenerated shoots formed roots when cultured on media containing 100 mg/L of kanamycin, whereas untransformed shoots did not form roots on the same media. The PCR amplification of the DNA's from the transgenic plants confirmed that the iAc and the Ds elements were introduced into the potato genome of 1.22.
Marking biocontrol bacteria is an essential step to monitor bacterial behavior in natural environments before application in agricultural ecosystem. In this study, we presented the simple green fluorescent protein (GFP) reporter system driven by the promoter active in Bacillus species for tagging of the biocontrol bacteria. A constitutive promoter P43 from Bacillus subtilis was fused to an enhanced promoterless gfp gene by overlap extension PCR. The GFP expression was demonstrated by the high fluorescence intensity detected in B. subtilis and Escherichia coli transformed with the P43-gfp fusion construct, respectively. The GFP reporter system was further investigated in two bacterial biocontrol strains B. licheniformis and Pseudomonas fluorescens. When the reconstructed plasmid pWH34G was introduced into B. licheniformis, GFP level measured with the fluorescence intensity in B. licheniformis was almost equivalent to that in B. subtilis. However, GFP expression level was extremely low in other biocontrol bacteria P. fluorescens by transposon based stable insertion of the P43-gfp construct into the bacterial chromosome. This study provides information regarding to the efficient biomarker P43-gfp fusion construct for bio-control Bacillus species.
Kim, Suyeon;Huh, Sun Mi;Han, Hay Ju;Cho, Mi Hyun;Lee, Gang Sub;Kim, Beom Gi;Kwon, Taek Yun;Yoon, In Sun
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2017.06a
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pp.90-90
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2017
Regulation of seed dormancy is important in many grains to prevent pre-harvest sprouting. To identify and understand the gene related to seed dormancy regulation, we have screened for viviparous phenotypes of rice mutant lines generated by insertion of Ds transposon in a Korean Japonica cultivar (Dongjin) background. One of the mutants, which represented viviparous phenotype, was selected for further seed dormancy regulation studies and designated dor1. The dor1 mutant has single Ds insertion in the second exon of OsDor1 gene encoding glycine-rich protein. The seeds of dor1 mutant showed a higher germination potential and reduced abscisic acid (ABA) sensitivity compared to wild type Dongjin. Over-expression of Dor1 complements the viviparous phenotype of dor1 mutant, indicating that Dor1 function in seed dormancy regulation. Subcellular localization assay of Dor1-GFP fusion protein revealed that the OsDor1 protein mainly localized to membrane and the localization of OsDOR1 was influenced by presence of a giberelin (GA) receptor OsGID1. Further bimolecular fluorescence complementation (BiFC) analysis indicated that OsDOR1 interact with OsGID1. The combined results suggested that OsDOR1 regulates seed dormancy by interacting with OsGID1 in GA response. Additionally, expression of OsDOR1 partially complemented the cold sensitivity of Escherichia coli BX04 mutant lacking four cold shock proteins, indicating that OsDOR1 possessed RNA chaperone activity.
Piwi proteins and Piwi-interacting RNAs (piRNAs) have been implicated in transposon control in germline from Drosophila to mammals. To examine the profile of small RNA expression in human cancer cells and explore difference in small RNA transcriptome, small RNA libraries prepared from wildtype, HILI overexpressed and HILI knockdowned Hela cells were sequenced using Solexa technology. piRNAs and other repeat-associated small RNAs were observed in Hela cells. By using in situ hybridization, piR-49322 was localized in the nucleolus and around the periphery of nuclear membrane in Hela cells. Following the overexpression of HILI, the retrotransposon elements LINE1 was significantly repressed, while LINE1-associated small RNAs decreased in abundance. The present study demonstrated that HILI along with piRNAs plays a role in LINE1 suppression in Hela cancer cell line.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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