체세포핵이식을 이용하여 복제동물을 생산하고자하는 연구가 계속적으로 진행되고 있으며 현재까지 많은 성과를 거두고 있으나 복제동물의 성공률이 현저히 낮은 것은 잘 알려진 사실이다. 본 연구에서는 복제동물생산과 관련된 여러 가지 이유 중 정상태반과 체세포복제소의 태반사이의 차등발현 유전자를 발굴하기 위해서 각각의 태반에서 total RNA를 추출하였고 이를 20개의 arbitrary ACPs를 이용하여 정상과 체세포이식태반사이에서 차등발현되는 유전자를 조사한 결과 8개의 발현차이를 보이는 band를 확인할 수 있었고 이 유전자들의 염기서열을 이용하여 BLAST search한 결과 정상태반에서는 CTSZ, LOC509426 및 ELF1 유전자의 발현이 높았고 체세포이식태반에서는 TIMP2, PAG1B, PAG-21, LOC782894, SERPINB6 및 mKIAA2025 protein 유전자의 발현이 높아 총 9개의 차등발현 유전자를 확인할 수 있었다. 이 결과중 체세포핵이식태반에서 발현이 높은 유전자중 아직까지 기능이 밝혀지지 않은 mKIAA 2025 protein를 제외하고 5개의 유전자는 quantitative real-time PCR를 이용하여 유전자의 발현을 재확인하여 체세포핵이식태반에서 발현이 높음을 재확인하였다. 본 연구는 체세포핵이식태반에서 발현차이를 보이는 유전자들 중 극히 일부분만을 확인하였으나 앞으로 더 많은 유전자들과 상호관계를 확인한다면 체세포복제생산에서 태반내의 유전자 변화에 관한 기전을 밝히는데 도움이 될 것이라고 사료된다.
Stem cells are progenitor cells that are capable of self-renewal and differentiation into various cells. Especially, pluripotent stem cells (PSCs) have in vivo and in vitro differentiation capacity into three germ layers and can proliferate infinitely. The differentiation ability of PSCs can be applied for regenerative medicine and tissue engineering. In domestic animals, their PSCs have a potential for preclinical therapy as well as the production of transgenic animals and agricultural usage such as cultured meat. Among several domestic animals, a pig is considered as an ideal model for biomedical and agricultural purposes mentioned above. In this reason, studies for pig PSCs including embryonic stem cells (ESCs), embryonic germ cells (EGCs) and induced pluripotent stem cells (iPSCs) have been conducted for decades. Therefore, this review will discuss the history of PSCs derived from various origins and recent progress in pig PSC research field.
The National Bio Resource Project-Rat (NBRP-Rat) comprises the largest bank of laboratory rat (Rattus norvegicus) strains in the world. Its main focus is to develop infrastructure that will facilitate the systematic collection, preservation, and provision of rat strains. To breed effectively more than 180 rat strains in living stock, we establish the genetic control system in which a systematic set of genetic diagnoses and genetic monitoring are included. Genetic monitoring is performed by using 20 polymorphic markers. Monitoring is carried out when a living animal stock is re-established by using cryopreserved embryos or sperm or when a rat strain is first introduced to the NBRP-Rat by a depositor. Additional monitoring is then carried out on each strain every two years. Genetic diagnosis is performed largely by employing the Amp-FTA method. Protocols which detail how to perform a genetic diagnosis of 11 transgenes and 24 mutations have been made. Among the mutations, nine can be detected by simple gel electrophoresis of the PCR products, 11 by restriction enzyme treatment of the PCR products, and four by direct PCR product sequencing. Using this genetic control system, the NBRP-Rat can guarantee the genetic quality of its rat strains.
The random insertion of useful gene in genome has been a common method to produce transgenic animals. This method is inefficient for induction of high levels gene expression in transgenic animals. To improve this limit, we tried to develop the system which target the gene at the specific genomic region. Thus, in our experiment, the vector system to target the human thrombopoietin (TPO) gene was developed. Targeting vector including TPO, neo and DT genes was transfrcted into bovine embryonic fibroblasts (bEF) or bovine ear skin fibroblasts (bESF). First of all, we determined concentration of the geneticin (G418) for selection of transfected cell lines. Our results showed that 1200 and 900 $\mu\textrm{g}$/ml of G418 were the most proper for selection of transfscted bEF and bESF cells. In this study, lipofectamine was used as a transfection reagent. Thus, the proper ratio of DNA:lipofectamine for transfection was also required to elevate targeting efficiency in primary mammalian cells. Our result indicates that the most proper ratios of DNA:lipofectamine were 4:2 and 1:2 in bEF and bESF cells. According to the optimized these conditions, single colonies were picked following transfection and were analyzed by PCR. More than 90% of the single colonies have TPO gene. However, there were no colonies with targeted TPO at the specific genomic region. Therefore, further experiments to select the specifically targeted colonies and to find more efficient methods such as reducing selection time and shortening a size of TPO gene are required.
형질전환 동물의 유선에서 특이적으로 인간 TPO가 발현되도록 고안된 pBT-L 외래유전자가 삽입되어 한 계통으로 확립된 형질전환 생쥐에서 이 유전자가 장기 세대까지 안정적으로 전이되고, 또한 발현 수준도 지속적으로 유지되는지를 조사 하였다 이를 위해 제 5세대의 수컷 pBT-L 형질전환 생쥐를 실험에 공시하였고, 제 10세대까지의 전이율과 인간 TPO의 발현수준을 분석하였다. 제 8세대 생쥐의 계대 번식에 의한 자손 중 51.3$\pm$18.98%가 형질전환 생쥐로 판명되었다. 또한 제9세대에서 외래 유전자의 전이율은 43.8$\pm$18.98%이었고, 제 10세대에서는 71.4$\pm$26.98%의 전이율을 나타내었다. 이러한 결과로 pBT-L 형질전환 생쥐는 그 외래유전자의 유전적 손상이 없이 장기 세대까지 안정적으로 전이되는 것으로 판단된다. 제 9세대외 10세대의 3마리의 암컷 형질전환 생쥐로 부터 유즙내 인간 TPO의 발현 수준을 분석하였을때, 그 농도는 모두 평균 1.1 mg/ml의 수준에서 측정되었다. 이러한 수준은 제 2세대의 것과 유사한 결과로 pBT-L 형질전환 생쥐에서 인간 TPO 유전자의 발현은 최소한 10세대까지 지속적으로 유지된다는 것을 알 수 있었고, 더 긴 장기 세대까지도 발현 수준이 유지될 것으로 추정된다. 이러한 연구결과는 계통으로 확립된 형질전환동물에 부여된 새로운 유전형질은 장기 세대까지 유전될 수 있음을 보여주는 것이다.
본 연구에서는 SV40 Tag을 마우스 albumin 유전자의 promoter/enhancer 조절 하에 발현하도록 설계된 재조합 유전자를 마우스 1세포기 수정란에 미세 주입하여 형질 전환마우스를 제작하고 이들의 인체 간암 모델로써의 적합성을 조사하였다. 형질 전환이 확인된 총 11개체의 founder 생쥐들 중 4개체가 간암을 일으켰고, 두 개체는 신장암을, 한 개체는 피부 및 뇌에서 종양을 각각 일으켰다. 이들로부터 외래 유전자를 계대 유전하는 3가계를 얻었다(#1-2, #1-6, #1-11). 이들 가계의 자소들에서 8주령(#1-2, #1-6)혹은 10주령(#1-11)시부터 간암이 반복적으로 발생되었으며, #1-11 founder개체에서 폐로 암세포가 전이된 것 외에는 다른 조직에서의 형태학적 변이가 발견되지 않았다. 간암 발생은 조직학적 변화에 따라 3단계로 나눌 수 있었다. 즉, 출생에서 3주령까지는 간세포의 과량증식을 보이나 세포핵의 이상은 관찰되지 않았으며, 4주령부터 7주령(#1-2, #1-6) 혹은 9주령(#1-11)까지는 diffuse liver cell dysplasia를 나타내지만 tumor nodule은 발견되지 않았고, 그 이후에는 liver dysplasia를 배경으로 간암이 발생하였다. 본 연구에서 작출한 간암 모델 마우스는 인체 간암과 일부 유사한 소견을 보였는바 인체 간암 기전 연구를 위한 유용한 동물 모델로 이용할 수 있을 것으로 생각된다.
The exogenous gene transfer by intracytoplasmic sperm injection (ICSI) procedure has been recently used to produce transgenic mice and pigs. Sperm-mediated DNA transfer has the potential to markedly simplify the generation of transgenic animals. This method may serve as an alternative to the pronucleus injection of DNA for the production of transgenic pigs. Therefore, in this study, we investigated the expression of transgene after co-injection of spermatozoon or sperm head with green fluorescent protein (GFP) gene into in vitro matured porcine oocytes. Spermatozoon and sperm head, that was obtained by sonication, were treated with 0.03% Triton X-100 to remove the membrane. They were preincubated with linearized pEGFP-N1 for 1 min, and then embryos cultured NCSU23 medium for 2.5 days after co-injected of sperm and DNA. We monitored expression of GFP in embryos under epifluorescent microscope. The remove of sperm membrane did not alter the developmental competence of embryos after ICSI. At 7 days following injection, the rates of blastocysts following injection of intact sperm (15.0%), and of sperm with disrupted membrane (14.2%) were higher than that following IVF (10.0%). Porcine oocytes injected with sperm which co-cultured with DNA concentration of 1, 0.1, and 0.01 ng were 60, 65.7 and 75% and 18.5, 37.4 and 22.2% for rates of cleavage and GFP expression, respectively. In vitro matured porcine oocytes injected with sperm and isolated sperm head resulted in 69 and 59.7% of cleavage rates, respectively The rates of embryo GFP expressed did not significantly different between sperm (20.4%) and sperm head (20.0%) injection. The transgenic embryos with the clusters of positive blastomeres were observed under fluorescent microscope. Most of embryos expressed GFP gene showed mosaicism. They showed GFP expression at 1/4, 2/4 and 3/4 of blastomeres at the 4-cell stage. Among these 4-cell embryos, the expression rate of 1/4 blastomere group (54.6%) was higher than the other groups (15.3-30.7%). These results indicate that membrane disrupted sperm could attach with exogenous DNA, and that this procedure may be useful to introduce foreign gene into porcine oocytes. Therefore, our data suggest that the ICSI car be a useful tool to efficiently produce transgenic pig as well as other mammals.
Cloning technology continues to capture widespread attention by the international news media and biomedical and agricultural industries. The future uses of this technology could potentially contribute to major advances in biomedical and agricultural sciences. Cloned transgenic dairy cattle possessing milk promoters directing transgenes will produce pharmaceutical proteins in their milk faster, more efficiently and less expensively than transgenic cattle created using microinjection techniques. Additionally, cloned transgenic fetuses and animals may become a source of cells, tissue and organs for xenotransplantation. Lastly, but maybe most importantly, enhanced production traits and disease resistance may be realized in animal agriculture by utilizing these new technologies. The recent advances in the cattle cloning technology are important but there are still major obstacles preventing widespread commercial use of this technology. The type of donor nucleus, recipient cytoplasm, and cloning procedures used will impact the potential number of clones produced and the uses of the technology. In addition, the new advances in cloning methodology have not improved the relatively low pregnancy rates or reduced the incidence of health problems observed in cloned offspring. These problems may require novel techniques to decipher their cause and new methods of preventing and/or diagnosing them in the preimplantation embryo. The commercial potential is enormous for cloning technology; however, little has been done to improve the efficiencies of the procedure. Improving procedural efficiencies is a critical developmental milestone especially for potential uses of cloning technology in animal agriculture.
Shim, Sang Woo;Kim, Young Ha;Lee, Hoon Taek;Shim, Hosup
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제21권3호
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pp.358-363
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2008
The intracytoplasmic sperm injection (ICSI) procedure has recently been utilized to produce transgenic animals and may serve as an alternative to the conventional pronuclear microinjection in species such as pigs whose ooplasm is opaque and pronuclei are often invisible. In this study, the effects of sperm membrane disruption and electrical activation of oocytes on in vitro development and expression of transgene green fluorescent protein (GFP) in ICSI embryos were tested to refine this recently developed procedure. Prior to ICSI, sperm heads were treated with Triton X-100+NaCl or Triton X-100+NaCl+NaOH, to disrupt membrane to be permeable to exogenous DNA, and incubated with linearized pEGFP-N1 vector. To induce activation of oocytes, a single DC pulse of 1.3 kV/cm was applied to oocytes for $30{\mu}sec$. After ICSI was performed with the aid of a micromanipulator, in vitro development of embryos and GFP expression were monitored. The chemical treatment to disrupt sperm membrane did not affect the developmental competence of embryos. 40 to 60% of oocytes were cleaved after injection of sperm heads with disrupted membrane, whereas 48.6% (34/70) were cleaved without chemical treatment. Regardless of electrical stimulation to induce activation, oocytes were cleaved after ICSI, reflecting that, despite sperm membrane disruption, the perinuclear soluble sperm factor known to mediate oocyte activation remained intact. After development to the 4-cell stage, 11.8 (2/17, Triton X-100+NaCl+NaOH) to 58.8% (10/17, Triton X-100+NaCl) of embryos expressed GFP. The expression of GFP beyond the stage of embryonic genome activation (4-cell stage in the pig) indicates that the exogenous DNA might have been integrated into the porcine genome. When sperm heads were co-incubated with exogenous DNA following the treatment of Triton X-100+NaCl, GFP expression was observed in high percentage (58.8%) of embryos, suggesting that transgenic pigs may efficiently be produced using ICSI.
The pronuclear injection of metallothionein-human growth hormone (MT-hGH) gene into rabbit zygotes was performed to establish in vitro developmental system and to detect the presence of the injected gene by nested PCR. Mature female New Zealand White rabbits were superovulated by eGG and hCG treatments. The rabbits were mated and the zygotes were collected from the oviducts 18-22 h after hCG injection by flushing with D-PBS. Two to three picoliters of MT-hGH gene was microinjected into male pronuclei. The foreign gene-injected zygotes were cultured in TCM-199 or RD mediurn containing 10% FCS with a monolayer of rabbit oviductal epithelial cefls in a 5% $CO_2$ incubator. The presence of injected DNA in rabbit embryos or blastomeres at different developmental stages .vas detected by a nested PCR analysis. The results are summarized as follows ; 1.The developmental rate of the MT-hGH gene-injected zygotes to blastocyst was significantly higher in TCM-199 medium (68.1%) than in RD medium (42.9%). 2.The gene injection into pronuclei at 18 or 22 hours post hCG treatment during pronuclear stage did not much affect on the in vitro development of the rabbit embryos. 3.The rate of gene-positive embryos detected by the nested PCR analysis was significantly decreased when they developed to blastocysts. The results indicate that the screening of transgene in rabbit embryos by nested PCR analysis could be a prornisible method for the preselection of transgenic embryos. Furthermore, the preselection of transgenic embryos would greatly reduce hoth the cost and effort of production of transgenic animals.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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