Organ growth is fundamental to animal development. One of major mechanisms for growth control is mediated by the conserved Hippo signaling pathway initially identified in Drosophila. The core of this pathway in Drosophila consists of a cascade of protein kinases Hippo and Warts that negatively regulate transcriptional coactivator Yorkie (Yki). Activation of Yki promotes cell survival and proliferation to induce organ growth. A key issue in Hippo signaling is to understand how core kinase cascade is activated. Activation of Hippo kinase cascade is regulated in the upstream by at least two transmembrane proteins Crumbs and Fat that act in parallel. These membrane proteins interact with additional factors such as FERM-domain proteins Expanded and Merlin to modulate subcellular localization and function of the Hippo kinase cascade. Hippo signaling is also influenced by cytoskeletal networks and cell tension in epithelia of developing organs. These upstream events in the regulation of Hippo signaling are only partially understood. This review focuses on our current understanding of some upstream processes involved in Hippo signaling in developing Drosophila organs.
Endocrine disruptors (EDs) are the chemicals that affect endocrine systems through activation or inhibition of steroid hormone response. It is necessary to have a good system to evaluate rapidly and accurately endocrine-disrupting activities of suspected chemicals and their degradation products. The key targets of EDs are nuclear hormone receptors, which bind to steroid hormones and regulate their gene transcription. We constructed a co-expression system of Gal4p DNA binding domain (DBD)- ligand binding domain of human estrogen receptor $\alpha$ or $\beta$, and Gal4p transactivation domain (TAD)-co-activator AIB-1, SRC-1 or TIF-2 in Saccharomyces cerevisiae with a chromosome-integrated lacZ reporter gene under the control of CYC1 promoter and Gal4p binding site (GAL4 upstream activating sequence, GAL4$_{UAS}$). Expression of this reporter gene was dependent on the presence of estrogen or EDs in the culture medium. We found that the two-hybrid system with combination of the hER$\beta$ LBD and co-activator SRC-1 was most effective in the xenoestrogen-dependent induction of reporter activity. The extent of transcriptional activation by those chemicals correlated with their estrogenic activities measured by other assay systems, indicating that this assay system is efficient and reliable for measuring estrogenic activity. The data in this research demonstrated that the yeast detection system using steroid hormone receptor and co-activator is a useful tool for identifying chemicals that interact with steroid receptors.s.
NF1 proteins are a family of DNA binding proteins which consist of two separate domains, N-terminal DNA binding domain and C-terminal transcription activation domain. The N-terminal 220 amino acids are highly conserved and are also known to mediate dimerization of NF1 proteins. The C-terminal regions of different type of NF1 proteins are heterogeneous and responsible for transcriptional activation. In this study, we tested the interaction between different domains of rat NF1-A protein by yeast two hybrid analysis and observed the interaction between C-terminal regions of NF1-A which do not contain the N-terminal dimerization domain. Our results showed that the C-terminal region of rat NF1-A between residues 231 and 509 strongly interacted not only with itself, but also with human NF1/CTF1 which is a different type of NF1. When the C-terminal region was divided into two fragments, one from residue 231 to 447 and the other from 448 to 509, the two fragments were able to interact with the C-terminal region of NF1-A significantly. This indicates that both fragments contain independent interaction domains. Analysis of the interactions with alanine substituted fragments showed that substitutions of the heptasequence, SPTSPTY of NF1-A, affected interaction between NF1 proteins. Our results strongly suggest that C-terminal regions may also be important for the formation of homo- and heterodimers in addition to the N-terminal dimerization domain. Also, the heptasequence motif may play some roles in dimer formation.
In aquatic invertebrates, particularly marine gastropods, organotin compounds induce irreversible sexual abnormality in females, which is termed imposex, at very low concentrations. Organotin compounds are agonists for nuclear receptors such as RXRs and $PPAR{\gamma}$. However, the imposex phenomenon has not been reported to act as an antagonist on estrogen receptors in other species, including vertebrates and invertebrates. In order to gain insights into the antagonistic activity of organotin compounds on estrogen receptors (ERs), we examined the inhibitive effect of these compounds on estradiol-dependent ${\beta}$-galactosidase activity using the yeast two-hybrid detection system consisting of a combination of the human estrogen receptor ($hER{\beta}$) ligand-binding domain and the co-activator steroid receptor co-activator-1 (SRC1). Tributyltin-hydroxide (TBT-OH) and triphenyltin-chlorine (TPT-Cl) exhibited an inhibitive effect on $E_2$-dependent transcriptional activity, similar to antagonistic chemicals such as 4-hydroxytamoxifen (OHT) or ICI 182,780, at a very low concentration of $10^{-14}$ M TBT or $10^{-10}$ M TPT, respectively. The yeast growth and transcriptional activity with transcriptional factor GAL4 did not exhibit any effect at the tested concentration of TBT or TPT. Moreover, the yeast two-hybrid system using the interaction between p53 and the T antigen of SV40 large did not describe any effect at the tested concentration of OHT or ICI 182,780. However, the interaction between p53 and T antigen was inhibited at a TBT or TPT concentration of $10^{-9}$ M, respectively. These results indicate that TBT and TPT act as inhibitors of ER-dependent reporter gene transcriptional activation and of the interaction between $hER{\beta}$ LBD and the co-activator SRC1 in the yeast two-hybrid system. Consequently, our data could partly explain the occurrence of organotin compound-induced imposex on the endocrine system of mammals, including humans.
In this study, a novel member of BTB-kelch proteins, named KBTBD7, was cloned from a human embryonic heart cDNA library. The cDNA of KBTBD7 is 3,008 bp long and encodes a protein product of 684 amino acids (77.2 kD). This protein is highly conserved in evolution across different species. Western blot analysis indicates that a 77 kD protein specific for KBTBD7 is wildly expressed in all embryonic tissues examined. In COS-7 cells, KBTBD7 proteins are localized to the cytoplasm. KBTBD7 is a transcription activator when fused to GAL4 DNA-binding domain. Deletion analysis indicates that the BTB domain and kelch repeat motif are main regions for transcriptional activation. Overexpression of KBTBD7 in MCF-7 cells activates the transcriptional activities of activator protein-1 (AP-1) and serum response element (SRE), which can be relieved by siRNA. These results suggest that KBTBD7 proteins may act as a new transcriptional activator in mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling.
Embryonic genome activation (EGA) is the first major transition that occurs after fertilization, and entails a dramatic reprogramming of gene expression that is essential for continued development. Although it has been suggested that EGA in porcine embryos starts at the four-cell stage, recent evidence indicates that EGA may commence even earlier; however, the molecular details of EGA remain incompletely understood. The RNA polymerase II of eukaryotes transcribes mRNAs and most small nuclear RNAs. The largest subunit of RNA polymerase II can become phosphorylated in the C-terminal domain. The unphosphorylated form of the RNA polymerase II largest subunit C-terminal domain (IIa) plays a role in initiation of transcription, and the phosphorylated form (IIo) is required for transcriptional elongation and mRNA splicing. In the present study, we explored the nuclear translocation, nuclear localization, and phosphorylation dynamics of the RNA polymerase II C-terminal domain in immature pig oocytes, mature oocytes, two-, four-, and eight-cell embryos, and the morula and blastocyst. To this end, we used antibodies specific for the IIa and IIo forms of RNA polymerase II to stain the proteins. Unphosphorylated RNA polymerase II stained strongly in the nuclei of germinal vesicle oocytes, whereas the phosphorylated form of the enzyme was confined to the chromatin of prophase I oocytes. After fertilization, both unphosphorylated and phosphorylated RNA polymerase II began to accumulate in the nuclei of early stage one-cell embryos, and this pattern was maintained through to the blastocyst stage. The results suggest that both porcine oocytes and early embryos are transcriptionally competent, and that transcription of embryonic genes during the first three cell cycles parallels expression of phosphorylated RNA polymerase II.
Rph1 and Gisl are damage-responsive repressors involved in PHR1 expression. They have two $C_{2}$H/ sub 2/ zinc finger motifs as putative DNA binding domains and N-terminal conserved domain with unknown function. They are also found in the human retinoblastoma binding protein 2 and the mouse jumonji- encoded protein. The repressors are able to bind to A $G_{4}$ sequence within a 39-bp sequence called upstream repressing sequence of PHR1 promoter (UR $S_{PHR1}$) responsible for the damage-response of PHR1. We report here that Rph1 is predominantly localized in the nucleus as examined by fluorescence microscopic analysis with GFP-Rph1 fusion protein. On the basis of the fact that the A $G_{4}$ sequence that is recognized by Rph1 and Gisl is also recognized by Msn2 and Msn4 in a process of stress response, we a1so tried to examine the in vivo function of A $G_{4}$ and the role of Msn2 and Msn4 in PHR1 expression. Our results demonstrate that Msn2 and Msn4 are actually required for the basal transcription of PHR1 expression but not for its damage induction. When A $G_{4}$ sequence was inserted into the minimal promoter of the cyc1-LacZ reporter, the increased LacZ expression was observed indicating its involvement in transcriptional activation. The data suggest that the A $G_{4}$ is primarily required for basal transcriptional activation of PHR1 or CYC1 promoter through the possible involvement of Msn2 and Msn4. However, since the A $G_{4}$ is also involved in the repression of PHR1 via Rphl and Gisl, it is proposed that A $G_{4}$ functions as either URS or upstream activating sequence (UAS) depending on the promoter context.t.
Gene expression in HIV-1 is regulated by the promoters in 5' long-terminal repeat (LTR) element, which contain multiple DNA regulatory elements that serve as binding sites for cellular transcription factors. YY1 could repress HIV-1 gene expression and latent infection. Here, however, we observed that virus production can be increased by YY1 over-expression and decreased under YY1 depleted condition by siRNA treatment. To identify functional domain(s) of YY1 activation, we constructed a number of YY1 truncated mutants. Our data show that full-length YY1 enhances the viral transcription both through U3 and U3RU5 promoters. Moreover, the C-terminal region (296-414 residues) of YY1 is responsible for the transcriptional upregulation, which could be enhanced further in the presence of the viral Tat protein. The central domain of YY1 (155-295 residues) does not affect LTR activity but has a negative effect on HIV-1 gene expression. Taken together, our study shows that YY1 could act as a transcriptional activator in HIV-1 replication, at least in the early stages of infection.
Zinc finger transcription factor genes are a significant fraction of the genes in the vertebrate genome. Here we report the isolation and characterization of a human zinc finger-containing gene, ZNF435, from a fetal brain cDNA library. ZNF435 cDNA is 1290 base pairs in length and contains an open reading frame encoding 349 amino acids with four C2H2-type zinc fingers at its carboxyl terminus and a SCAN motif at its amino terminus. RT-PCR results showed that ZNF435 was expressed in all tested tissues. A ZNF435-GFP fusion protein was located in the nucleus and the four zinc fingers acted as nuclear localization signals (NLSs). ZNF435 was found to be capable of homo-association, and this effect was independent of its zinc fingers. Furthermore, ZNF435 proved to be a transcription repressor as its overexpression in AD293 cells inhibited the transcriptional activities of AP-1.
Kim, Hyunduk;Yang, Hayoung;Woo, Dong Kyun;Jang, Sung-Wuk;Shim, Sungbo
Biomedical Science Letters
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v.24
no.2
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pp.64-75
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2018
CCN3 (also known as NOV, Nephroblastoma overexpressed) proteins are involved in various pathologies during different developmental stages. We have previously shown that intracellular levels and normal extracellular secretion of CCN3 are important for neuronal differentiation. Furthermore, we demonstrated that a single amino acid in the CCN3 TSP-1 domain is important for extracellular secretion and that palmitoylation of CCN3 is required in this process. However, the effect of abnormal CCN3 accumulation on cells remains to be studied. Here, we found mutations in the TSP-1 domain of CCN3 that led to intracellular accumulation and abnormal aggregation of CCN3. It was observed that this mutation resulted in a phenomenon similar to neurodegeneration when overexpressed in the developing mouse cortex. This mutation also confirmed the activation of apoptotic gene expression in Neuro2a cells. In addition, we confirmed the in vivo transcriptional changes induced by this mutation using microarray analysis. We observed a significant increase in the expression of Anp32a, an apoptosis-related gene. Collectively, these results indicate that a single mutation in CCN3 can lead to abnormal cell death if it shows intracellular accumulation and abnormal aggregation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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