This study was conducted to determine the effects of saturated long-chain fatty acids (LCFA) on cell proliferation and triacylglycerol (TAG) content, as well as mRNA expression of ${\alpha}s1$-casein (CSN1S1) and genes associated with lipid and protein synthesis in bovine mammary epithelial cells (BMECs). Primary cells were isolated from the mammary glands of Holstein dairy cows, and were passaged twice. Then cells were cultured with different levels of palmitate or stearate (0, 200, 300, 400, 500, and 600 ${\mu}M$) for 48 h and fetal bovine serum in the culture solution was replaced with fatty acid-free BSA (1 g/L). The results showed that cell proliferation tended to be increased quadratically with increasing addition of stearate. Treatments with palmitate or stearate induced an increase in TAG contents at 0 to 600 ${\mu}M$ in a concentration-dependent manner, and the addition of 600 ${\mu}M$ was less effective in improving TAG accumulation. The expression of acetyl-coenzyme A carboxylase alpha, fatty acid synthase and fatty acid-binding protein 3 was inhibited when palmitate or stearate were added in culture medium, whereas cluster of differentiation 36 and CSN1S1 mRNA abundance was increased in a concentration-dependent manner. The mRNA expressions of peroxisome proliferator-activated receptor gamma, mammalian target of rapamycin and signal transducer and activator of transcription 5 with palmitate or stearate had no significant differences relative to the control. These results implied that certain concentrations of saturated LCFA could stimulate cell proliferation and the accumulation of TAG, whereas a reduction may occur with the addition of an overdose of saturated LCFA. Saturated LCFA could up-regulate CSN1S1 mRNA abundance, but further studies are necessary to elucidate the mechanism for regulating milk fat and protein synthesis.
While the biosynthetic gene cluster encoding the pigmented antibiotic actinorhodin is present in the two closely related bacterial species, Streptomyces lividans and Streptomyces coelicolor, it normally is expressed only in S. coelicolor---generating the deep blue colonies responsible for the S. coelicolor name. However, multiple copies of the afsR2 gene, which activates actinorhodin synthesis, result in the ability of S. lividansto also synthesize large amounts of actinorhodin. Here we report that the phenotypic property that historicially distinguishes these two Streptomycesspecies is determined conditionally by the carbon source used for culture. Whereas growth on glucose repressed actinorhodin production in S. lividans, culture on solid media containing glycerol as the sole carbon source dramatically increased the expression of afsR2 mRNA---leading to extensive actinorhodin synthesis by S. lividansand obliterating its phenotypic distinction from S. coelicolor. afsR2 transcription under these conditions was developmentally regulated, rising sharply at the time of aerial mycelium formation and coinciding temporally with the onset of actinorhodin production. Our results, which identify media-dependent parallel pathways that regulate actinorhodin synthesis in S. lividans, demonstrate carbon source control of actinorhodin production through the regulation of afsR2 mRNA synthesis. The nucleotide sequences of afsR2 revealed two putative important domains; the domain containing direct repeats in the middle and the domain homologous to sigma factor sequence in the C-terminal end. In this work, we constructed various sized afsR2-derivatives and compared the actinorhodin stimulating effects in S. lividans TK21. The experimental data indicate that the domain homologous to sigma factor sequence in the C-terminal end of afsR2 plays a critical role as an antibiotic stimulating function. In addition, we also observed that the single copy integration of afsR2 regulatory gene into S. lividans TK21 chromosome significantly activates antibiotic overproduction.
Akabane disease is transmitted through mosquitoes in cattle, sheep and goats. It shows congenital abnormalities including encephalomyetitis, hydranencephaly, neurogenic arthrogryposis, and deformed neonatal calves. Akabane viruses, 93FMX and K-9 strain, were isolated from fetal matrix of aborted cow and blood of healthy cow, respectively. S gene sequences of 93FMX and K-9 showed 100% homology with that of OBE-1 strain isolated in Japan. Based upon our sequencing data, we synthesized specific primers for PCR diagnosis. Using these primers, we were able to amplify the S gene of Akabane virus not only from the culture fluid of Vero cells but also from the brain tissue of suckling mouse inoculated with, Akabane virus. These PCR products were confirmed by Southern blot hybridization. Not only the sensitivity of PCR test was high enough to detect the viruses of $10^{1.0}TCID_{50}/ml$, but also the time for diagnosis was significantly shorter than that of the virus isolation by tissue culture method. This method was also effective for the detection of Akabane virus in the cerebrum of fetus. RT-PCR method may be used for a useful diagnostic test of the clinical cases of Akabane disease.
Lim, Michelle Chin Chia;Maubach, Gunter;Zhuo, Lang
Molecules and Cells
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제25권3호
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pp.376-384
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2008
The glial fibrillary acidic protein (GFAP) is traditionally used as a marker for astrocytes of the brain, and more recently for the hepatic stellate cells (HSCs) of the liver. Several GFAP splice variants have been previously reported in the astrocytes of the CNS and in the non-myelinating Schwann cells of the PNS. In this study, we investigate whether GFAP splice variants are present in the HSCs and their expression as a function of HSCs activation. Furthermore, the regulation of these transcripts upon treatment with interferon gamma ($IFN-{\gamma}$) will be explored. Using semi-quan-titative RT-PCR and real-time PCR, we examine the expression and regulation of GFAP splice variants in HSCs as well as their respective half-life. We discover that most of the GFAP splice variants ($GFAP{\alpha}$, ${\beta}$, ${\delta}$, ${\varepsilon}$ and $\kappa$) found in the neural system are also expressed in quiescent and culture-activated primary HSCs. Interestingly, $GFAP{\alpha}$ is the predominant form in quiescent and culture-activated primary HSCs, while $GFAP{\beta}$, predominates in the SV40-immortalized activated HSC-T6. $GFAP{\delta}$, ${\varepsilon}$ and ${\kappa}$ have similar half-lives of 10 hours, while $GFAP{\beta}$ has a half-life of 17 hours. Treatment of HSC-T6 with $IFN-{\gamma}$ results in a significant 1.29-fold up-regulation of $GFAP{\alpha}$ whereas the level of the other transcripts remains unchanged. In summary, $GFAP{\alpha}$, ${\beta}$, ${\delta}$, ${\varepsilon}$ and $\kappa$ are present in HSCs. They are differentially regulated on the transcription level, implying a role of the 5' and 3' untranslated regions.
FK506, a widely used immunosuppressant, is a 23-membered polyketide macrolide that is produced by several Streptomyces species. FK506 high-yielding strain Streptomyces sp. RM7011 was developed from the discovered Streptomyces sp. KCCM 11116P by random mutagenesis in our previous study. The results of transcript expression analysis showed that the transcription levels of tcsA, B, C, and D were increased in Streptomyces sp. RM7011 by 2.1-, 3.1-, 3.3-, and 4.1-fold, respectively, compared with Streptomyces sp. KCCM 11116P. The overexpression of tcsABCD g enes in Streptomyces sp. RM7011 gave rise to approximately 2.5-fold (238.1 μg/ml) increase in the level of FK506 production compared with that of Streptomyces sp. RM7011. When vinyl pentanoate was added into the culture broth of Streptomyces sp. RM7011, the level of FK506 production was approximately 2.2-fold (207.7 μg/ml) higher than that of the unsupplemented fermentation. Furthermore, supplementing the culture broth of Streptomyces sp. RM7011 expressing tcsABCD genes with vinyl pentanoate resulted in an additional 1.7-fold improvement in the FK506 titer (498.1 μg/ml) compared with that observed under non-supplemented condition. Overall, the level of FK506 production was increased approximately 5.2-fold by engineering the supply of allylmalonyl-CoA in the high-yielding strain Streptomyces sp. RM7011, using a combination of overexpressing tcsABCD genes and adding vinyl pentanoate, as compared with Streptomyces sp. RM7011 (95.3 μg/ml). Moreover, among the three precursors analyzed, pentanoate was the most effective precursor, supporting the highest titer of FK506 in the FK506 high-yielding strain Streptomyces sp. RM7011.
Background: Rheumatoid arthritis (RA) is a chronic inflammatory disease characterized by synovial hyperplasia and joint destruction. The synovial fibroblasts express cell adhesion molecules and have a role in adhesive interation with inflammatory cells in synovial tissue. It has been suggested that hypoxic conditioins are thought to exist in arthritic joints, and several studies indicate that reactive oxygen species (ROS) produced in hypoxic condition can initiate events that lead to pro-adhesive changes via increased expression of adhesion molecules. So, this study wsa designed to examine whether antioxidant can inhibit hypoxia-induced expression of ICAM-1 in cultured human synovial fibroblasts. Methods: Synovial fibroblasts were isolated from synovial tissue in patients with RA and cultured at hypoxic condition. Antioxidant, PDTC (pyrrolidine dithiocarbamate) were pre-treated for an hour before the hypoxic culture and synovial fibroblasts were harvested at 0, 6, 12, 24, 48 hours time points. Cell surface ICAM-1 expression in synovial fibroblasts was examined by the flow cytometric analysis. To analyse the expression of ICAM-1 mRNA, reverse-transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR) was performed. The levels of cytokines in culture supernatants were measured by ELISA, and activation of NF-${\kappa}B$ was analysed by electrophoretic mobility shift assay. The adhesive reaction between synovial fibroblasts and lymphocytes was assayed by measurement of fluorescent intensity of BCECF-AM in lymphocytes. Results: Hypoxic stimuli up-regulated the ICAM-1 expression as well as the adhesive interaction of human synvial fibroblasts to lymphocytes in a time-dependent manner, and PDTC inhibited hpyoxia-induced ICAM-1 expression and cell-cell interaction. PDTC also inhibited the hypoxia-induced activation of intracellular transcription factor, NF-${\kappa}B$. PDTC decreased the amount of hypoxia-induced production of IL-$1{\beta}$ and TNF-${\alpha}$. Conclusion: These studies demonstrate that PDTC inhibit the hypoxia-induced expression of the adhesion molecule, ICAM-1 and activation of NF-${\kappa}B$ in cultured human synovial fibroblasts.
The high-level expression of a human single chain urokinase-type plasminogen activator (scu-PA) was achieved by employing a methotrexate (MTX)-dependent gene amplification system in Chinese hamster ovary (CHO) cells. By cotransfecting and coamplifying a scu-PA expression plasmid and dihydrofolate reductase (DHFR) minigene, several scu-PA expressing CHO cell lines were selected and gene-amplified. These recombinant cell lines, NGpUKs, secreted a completely processed scu-PA of 54 kD and up to 60mg/L was accumulated in the culture medium when they were adapted to an optimal MTX concentration. Over 95% of the scu-PA expressed was secreted in the culture medium and identified having the proper function of a plasminogen activator when activated by plasmin. Based on a genomic Southern analysis, a representative subclone, MGpUK-5, exhibited MTX-dependent scu-PA gene amplification, plus the initial single-copy gene of scu-PA eventually turned into about 150 copies of the amplified gene of scu-PA after gradual adaptation to 2.0$\mu$M of MTX. Meanwhile, the transcripts kof the scu-PA gene increased, although -early saturation of transcription was identified at 0.1$\mu$M of MTX. The scu-PA production by the MGpUK-5 subclone also increased relative to the gene amplification and increased transcripts, however, the relationship was not linearly proportional. Accordingly, since the MGpUK cell lines expressed elevated levels of enzymatically active scu-PA, these cell lines could be applied to the largescale production of scu-PA.
사상성 모델 진균인 Aspergillus nidulans에 존재하는 forkhead 유전자들의 구조와 기능을 체계적으로 연구하기 위해 유전체 분석을 통해 forkhead 도메인을 가지고 있는 6개의 forkhead 유전자를 발견하였다. 이들 중 4개의 유전자들은 다른 진균에서 발견되는 forkhead 유전자들과 전반적인 유사성이 있었으나, 2개의 유전자들은 다른 종에서는 보존되어있지 않은 A. nidulans 특이적인 유전자들이었다. A. nidulans 특이적 forkhead 유전자들 중 하나인 fkhF(AN8949.2) 유전자는 염색체 7번에 위치하고 있고, ORF는 2,337 bp로 구성되어 있으며 778개의 아미노산을 암호화하고 있는 것으로 추정되었다. 예상되는 FkhF 단백질의 N-말단 부위에 보존된 forkhead 도메인을 가지고 있었으며, 이 유전자의 기능을 분석하기 위해 유전자제거 돌연변이 균주를 제조하였다. fkhF 유전자 결손돌연변이주는 유성분화 유도 조건 등을 포함한 여러 고체배지 배양 조건에서 유성분화에는 영향을 미치지 않았으나 무성포자병(conidiophore)의 생성 밀도와 성숙도에 영향을 주는 것으로 관찰되었고, 야생형과 달리 진탕배양시에 무성포자병을 형성함이 관찰되었다. 이는 fkhF 유전자가 A. nidulans의 부적절한 무성분화를 억제하고 정상적인 무성포자 성숙과정에 관여하는 유전자라는 것을 보여준다.
Objectives: The aim of this study was to investigate the expression of 7 different sirtuin genes (SIRT1-SIRT7) in human dental pulp cells (HDPCs), and to determine the role of SIRTs in the odontoblastic differentiation potential of HDPCs. Materials and Methods: HDPCs were isolated from freshly extracted third molar teeth of healthy patients and cultulred in odontoblastic differentiation inducing media. Osteocalcin (OCN) and dentin sialophosphoprotein (DSPP) expression was analyzed to evaluate the odontoblastic differentiation of HDPCs by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR), while alizarin red staining was used for the mineralization assay. To investigate the expression of SIRTs during odontoblastic differentiation of HDPCs, real time PCR was also performed with RT-PCR. Results: During the culture of HDPCs in the differentiation inducing media, OCN, and DSPP mRNA expressions were increased. Mineralized nodule formation was also increased in the 14 days culture. All seven SIRT genes were expressed during the odontogenic induction period. SIRT4 expression was increased in a time-dependent manner. Conclusions: Our study identified the expression of seven different SIRT genes in HDPCs, and revealed that SIRT4 could exert an influence on the odontoblast differentiation process. Further studies are needed to determine the effects of other SIRTs on the odontogenic potential of HDPCs.
We investigated the effect of transforming growth factor beta 1 ($TGF-{\beta}1$) on equine hyaluronan synthase 2 (HAS2) gene expression and hyaluronan (HA) synthesis in culture models of articular chondrocytes. Equine chondrocytes were treated with $TGF-{\beta}1$ at different concentrations and times in monolayer cultures. In three-dimensional cultures, chondrocyte-seeded gelatin scaffolds were cultured in chondrogenic media containing 10 ng/mL of $TGF-{\beta}1$. The amounts of HA in conditioned media and in scaffolds were determined by enzyme-linked immunosorbent assays. HAS2 mRNA expression was analyzed by semi-quantitative reverse transcription polymerase chain reaction. The uronic acid content and DNA content of the scaffolds were measured by using colorimetric and Hoechst 33258 assays, respectively. Cell proliferation was evaluated by using the alamarBlue assay. Scanning electron microscopy (SEM), histology, and immunohistochemistry were used for microscopic analysis of the samples. The upregulation of HAS2 mRNA levels by $TGF-{\beta}1$ stimulation was dose and time dependent. $TGF-{\beta}1$ was shown to enhance HA and uronic acid content in the scaffolds. Cell proliferation and DNA content were significantly lower in $TGF-{\beta}1$ treatments. SEM and histological results revealed the formation of a cartilaginous-like extracellular matrix in the $TGF-{\beta}1$-treated scaffolds. Together, our results suggest that $TGF-{\beta}1$ has a stimulatory effect on equine chondrocytes, enhancing HA synthesis and promoting cartilage matrix generation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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