Purpose: Previous reports have shown that hyperglycemia-induced inhibition of transient receptor potential vanilloid sub type 4 (TRPV4), a transient receptor potential ion channel, affects the severity of hearing impairment (HI). In this study, we explored the role of TRPV4 in HI using HEI-OC1 cells exposed to high glucose (HG). Materials and Methods: HEI-OC1 cells were cultured in a HG environment (25 mM D-glucose) for 48 hours, and qRT-PCR and Western blotting were used to analyze the expression of TRPV4 at the mRNA and protein level. TRPV4 agonist (GSK1016790A) or antagonist (HC-067047) in cultured HEI-OC1 cells was used to obtain abnormal TRPV4 expression. Functional TRPV4 activity was assessed in cultured HEI-OC1 cells using the MTT assay and a cell death detection ELISA. Results: TRPV4 agonists exerted protective effects against HG-induced HI, as evidenced by increased MTT levels and inhibition of apoptosis in HEI-OC1 cells. TRPV4 overexpression significantly increased protein levels of phosphorylated p38 mitogen-activated protein kinase (p-p38 MAPK), while TRPV4 antagonists had the opposite effect. Our results indicated that TRPV4 is a hyperglycemia-related factor that can inhibit cell proliferation and promote cell apoptosis by activating the MAPK signaling pathway in HEI-OC1 cells. Conclusion: Our results show that the overexpression of TRPV4 can attenuate cell death in HEI-OC1 cells exposed to HG.
Activation of transient receptor potential vanilloid 1 (TRPV1), a calcium permeable channel expressed in primary sensory neurons, induces the release of glutamate from their central and peripheral afferents during normal acute and pathological pain. However, little information is available regarding the glutamate release mechanism associated with TRPV1 activation in primary sensory neurons. To address this issue, we investigated the expression of vesicular glutamate transporter (VGLUT) in TRPV1-immunopositive (+) neurons in the rat trigeminal ganglion (TG) under normal and complete Freund's adjuvant (CFA)-induced inflammatory pain conditions using behavioral testing as well as double immunofluorescence staining with antisera against TRPV1 and VGLUT1 or VGLUT2. TRPV1 was primarily expressed in small and medium-sized TG neurons. TRPV1+ neurons constituted approximately 27% of all TG neurons. Among all TRPV1+ neurons, the proportion of TRPV1+ neurons coexpressing VGLUT1 (VGLUT1+/TRPV1+ neurons) and VGLUT2 (VGLUT2+/TRPV1+ neurons) was 0.4% ± 0.2% and 22.4% ± 2.8%, respectively. The proportion of TRPV1+ and VGLUT2+ neurons was higher in the CFA group than in the control group (TRPV1+ neurons: 31.5% ± 2.5% vs. 26.5% ± 1.2%, VGLUT2+ neurons: 31.8% ± 1.1% vs. 24.6% ± 1.5%, p < 0.05), whereas the proportion of VGLUT1+, VGLUT1+/TRPV1+, and VGLUT2+/TRPV1+ neurons did not differ significantly between the CFA and control groups. These findings together suggest that VGLUT2, a major isoform of VGLUTs, is involved in TRPV1 activation-associated glutamate release during normal acute and inflammatory pain.
Kim, Kyung-Soo;Shin, Dong-Hoon;Nam, Joo-Hyun;Park, Kyung-Sun;Zhang, Yin-Hua;Kim, Woo-Kyung;Kim, Sung-Joon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.14
no.6
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pp.419-425
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2010
Mast cells are activated by specific allergens and also by various nonspecific stimuli, which might induce physical urticaria. This study investigated the functional expression of temperature sensitive transient receptor potential vanilloid (TRPV) subfamily in the human mast cell line (HMC-1) using whole-cell patch clamp techniques. The temperature of perfusate was raised from room temperature (RT, $23{\sim}25^{\circ}C$) to a moderately high temperature (MHT, $37{\sim}39^{\circ}C$) to activate TRPV3/4, a high temperature (HT, $44{\sim}46^{\circ}C$) to activate TRPV1, or a very high temperature (VHT, $53{\sim}55^{\circ}C$) to activate TRPV2. The membrane conductance of HMC-1 was increased by MHT and HT in about 50% (21 of 40) of the tested cells, and the I/V curves showed weak outward rectification. VHT-induced current was 10-fold larger than those induced by MHT and HT. The application of the TRPV 4 activator $3{\alpha}$-phorbol 12,13-didecanoate ($4{\alpha}$ PDD, $1\;{\mu}M$) induced weakly outward rectifying currents similar to those induced by MHT. However, the TRPV3 agonist camphor or TRPV1 agonist capsaicin had no effect. RT-PCR analysis of HMC-1 demonstrated the expression of TRPV4 as well as potent expression of TRPV2. The $[Ca^{2+}]_c$ of HMC-1 cells was also increased by MHT or by $4{\alpha}$ PDD. In summary, our present study indicates that HMC-1 cells express $Ca^{2+}$-permeable TRPV4 channels in addition to the previously reported expression of TRPV2 with a higher threshold of activating temperature.
The transient receptor potential vanilloid 4 (TRPV4) cation channel, a member of the TRP vanilloid subfamily, is expressed in a broad range of tissues. Nitric oxide (NO) as a gaseous signal mediator shows a variety of important biological effects. In many instances, NO has been shown to exhibit its activities via a protein S-nitrosylation mechanism in order to regulate its protein functions. With functional assays via site-directed mutagenesis, we demonstrate herein that NO induces the S-nitrosylation of TRPV4 $Ca^{2+}$ channel on the $Cys^{853}$ residue, and the S-nitrosylation of $Cys^{853}$ reduced its channel sensitivity to 4-${\alpha}$ phorbol 12,13-didecanoate and the interaction between TRPV4 and calmodulin. A patch clamp experiment and $Ca^{2+}$ image analysis show that the S-nitrosylation of $Cys^{853}$ modulates the TRPV4 channel as an inhibitor. Thus, our data suggest a novel regulatory mechanism of TRPV4 via NO-mediated S-nitrosylation on its $Cys^{853}$ residue.
Siregar, Adrian S.;Nyiramana, Marie Merci;Kim, Eun-Jin;Shin, Eui-Jung;Kim, Chang-Woon;Lee, Dong Kun;Hong, Seong-Geun;Han, Jaehee;Kang, Dawon
Journal of Animal Reproduction and Biotechnology
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v.34
no.4
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pp.311-317
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2019
Reproductive potential decreases with age. A decrease in male fertility is due to a combination of morphological and molecular alterations in the testes. Transient receptor potential vanilloid receptor-1 (TRPV1) is associated with aging and lifespan, and its activation causes apoptotic cell death in various cell types. However, the effect of TRPV1 on testicular apoptosis in aged mice has not yet been reported. TRPV1 knockout (KO) mice had a longer lifespan than that of wild-type (WT) mice. Lifespan was increased by 11.8% in male TRPV1 KO mice compared to that in WT mice. TRPV1 KO males lived approximately 100 days longer than WT males on average, and the maximum lifespan was markedly extended in TRPV1 KO mice compared with that in WT mice. The TRPV1 expression levels were highly increased in the testes of older mice. TRPV1 was expressed in the entire testes region of the old mice. In addition, old TRPV1 KO mice had lower testicular apoptosis than that of WT mice. Our results show that TRPV1 induces testicular apoptosis and suggest that TRPV1 may be associated with testicular aging.
With the consensus sequence information of the serum glucocorticoid-induced protein kinase-1 (SGK1) phosphorylation site {R-X-R-X-X-(S/T)$\Phi$; where $\Phi$ is any hydrophobic amino acid}, we noticed that the transient receptor potential vanilloid 4 (TRPV4) cation channel, a member of the TRP vanilloid subfamily, harbors the putative SGK1 phosphorylation site (on its Ser 824). We have demonstrated that TRPV4 is an SGK1 authentic substrate protein, with the phosphorylation on the Ser 824 of TRPV4 by SGK1. Further, using TRPV4 mutants (S824A and S824D), we noted that the modification of the Ser 824 activates its $Ca^{2+}$ entry, and sensitizes the TRPV4 channel to 4-$\alpha$-phorbol 12,13-didecanoate (4-${\alpha}PDD$) or heat, simultaneously enhancing its active state. Additionally, we determined that the modification of the Ser 824 controls both its plasma membrane localization and its protein interactions with calmodulin. Thus, we have proposed herein that phosphorylation on the Ser 824 of TRPV4 is one of the control points for the regulation of its functions.
Temperature signaling can be initiated by members of transient receptor potential (thermo-TRP) channels. Hot and cold substances applied to teeth usually elicit pain sensation. Since odontoblasts constitute a well-defined layer between the pulp and the mineralized dentin, being first to encounter thermal stimulation from oral cavity, they may be involved in sensory transduction process, in addition to their primary function as formation of dentin. We investigated whether thermo-TRP channels are expressed in a odontoblast cell line, MDPC-23. The expressions of thermo-TRP channels were examined using reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR), immunohistochemistry, fluorometric calcium imaging. Analysis of RT-PCR revealed mRNA expression of TRPV1, TRPV2, TRPV4 and TRPM8, but no TRPV3, TRPA1. Immunohistochemical approach failed to detect TRPV1 expression. Whereas the application of 4-phorbol-12,13-didecanoate($10\;{\mu}M$, a TRPV4 agonist), menthol(1 mM, a TRPM8 agonist) and icilin($10\;{\mu}M$, a TRPM8 agonist) produced the enhancement of intracellular calcium concentration, capsaicin($1\;{\mu}M$, a TRPV1 agonist) did not. Our results suggest that subfamily of thermo-TRP channels expressed in odontoblasts may serve as thermal or mechanical transducer in teeth.
Repeated morphine administration induces tolerance to its analgesic effects. A previous study reported that repeated morphine treatment activates transient receptor potential vanilloid type 1 (TRPV1) expression in the sciatic nerve, dorsal root ganglion, and spinal cord, contributing to morphine tolerance. In the present study, we analyzed TRPV1 expression and binding sites in supraspinal pain pathways in morphine-tolerant mice. The TRPV1 mRNA levels and binding sites were remarkably increased in the cortex and thalamus of these animals. Our data provide additional insights into the effects of morphine on TRPV1 in the brain and suggest that changes in the expression of, and binding to TRPV1 in the brain are involved in morphine tolerance.
Objective: Transient receptor potential vanilloid subfamily type 1 (TRPV1), a most specific marker of the nociceptive primary afferent, is expressed in peptidergic and non-peptidergic primary afferents innervating skin and viscera. However, its expression in sensory fibers to skeletal muscle is not well known. In this study, we studied the neurochemical characteristics of TRPV1-positive primary afferents to skeletal muscles. Methods: Sprague-Dawley rats were injected with total $20{\mu}l$ of 1% fast blue (FB) into the gastrocnemius and erector spinae muscle and animals were perfused 4 days after injection. FB-positive cells were traced in the L4-L5 (for gastrocnemius muscle) and L2-L4 (for erector spinae muscle) dorsal root ganglia. The neurochemical characteristics of the muscle afferents were studied with multiple immunofluorescence with TRPV1, calcitonin gene-related peptide (CGRP) and $P2X_3$. To identify spinal neurons responding to noxious stimulus to the skeletal muscle, 10% acetic acids were injected into the gastrocnemius and erector spinae muscles and expression of phospho extracellular signal-regulated kinase (pERK) in spinal cords were identified with immunohistochemical method. Results: TRPVl was expressed in about 49% of muscle afferents traced from gastrocnemius and 40% of erector spinae. Sixty-five to 60% of TRPV1-positive muscles afferents also expressed CGRP. In contrast, expression of $P2X_3$ immnoreaction in TRPV1-positive muscle afferents were about 20%. TRPV1-positive primary afferents were contacted with spinal neurons expressing pERK after injection of acetic acid into the muscles. Conclusion: It is consequently suggested that nociception from skeletal muscles are mediated by TRPV1-positive primary afferents and majority of them are also peptidergic.
Transient receptor potential vanilloid subtype 1 (TRPV1) was originally found in sensory neurons. Recently, it has been reported that TRPV1 is expressed in salivary gland epithelial cells (SGEC). However, the physiological role of TRPV1 in salivary secretion remains to be elucidated. We found that TRPV1 is expressed in mouse and human submandibular glands (SMG) and HSG cells, originated from human submandibular gland ducts at both mRNA and protein levels. However, capsaicin (CAP), TRPV1 agonist, had little effect on intracellular free calcium concentration ($[Ca^{2+}]_i$) in these cells, although carbachol consistently increased $[Ca^{2+}]_i$. Exposure of cells to high temperature (> $43^{\circ}C$) or acidic bath solution (pH5.4) did not increase $[Ca^{2+}]_i$, either. We further examined the role of TRPV1 in salivary secretion using TRPV1 knock-out mice. There was no significant difference in the pilocarpine (PILO)-induced salivary flow rate between wild-type and TRPV1 knock-out mice. Saliva flow rate also showed insignificant change in the mice treated with PILO plus CAP compared with that in mice treated with PILO alone. Taken together, our results suggest that although TRPV1 is expressed in SGEC, it appears not to play any direct roles in saliva secretion via transcellular pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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