1,4-Dioxane-degrading bacterial consortia were enriched from forest soil (FS) and activated sludge (AS) using a defined medium containing 1,4-dioxane as the sole carbon source. These two enrichments cultures appeared to have inducible tetrahydrofuran/dioxane and propane degradation enzymes. According to qPCR results on the 16S rRNA and soluble di-iron monooxygenase genes, the relative abundances of 1,4-dioxane-degrading bacteria to total bacteria in FS and AS were 29.4% and 57.8%, respectively. For FS, the cell growth yields (Y), maximum specific degradation rate ($V_{max}$), and half-saturation concentration ($K_m$) were 0.58 mg-protein/mg-dioxane, $0.037mg-dioxane/mg-protein{\cdot}h$, and 93.9 mg/l, respectively. For AS, Y, $V_{max}$, and $K_m$ were 0.34 mg-protein/mg-dioxane, $0.078mg-dioxane/mg-protein{\cdot}h$, and 181.3 mg/l, respectively. These kinetics data of FS and AS were similar to previously reported values. Based on bacterial community analysis on 16S rRNA gene sequences of the two enrichment cultures, the FS consortium was identified to contain 38.3% of Mycobacterium and 10.6% of Afipia, similar to previously reported literature. Meanwhile, 49.5% of the AS consortium belonged to the candidate division TM7, which has never been reported to be involved in 1,4-dioxane biodegradation. However, recent studies suggested that TM7 bacteria were associated with degradation of non-biodegradable and hazardous materials. Therefore, our results showed that previously unknown 1,4-dioxane-degrading bacteria might play an important role in enriched AS. Although the metabolic capability and ecophysiological significance of the predominant TM7 bacteria in AS enrichment culture remain unclear, our data reveal hidden characteristics of the TM7 phylum and provide a perspective for studying this previously uncultured phylotype.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.17
no.6
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pp.537-545
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2016
This research examined the oral environmental factors to identify the risk factors for oral bacteria detection. This study comprised of 60 office workers aged between 20 and 65 years, and was performed from January 15 to February 28, 2015. The study variables measured were the stimulated and unstimulated salivary flow rates, salivary buffering, saliva pH, dry mouth at the dorsum of the tongue and the sublingual region, halitosis, and the degree of tongue-coating as oral environmental factors. To identify the presence of oral bacteria, pathogens were detected by extracting the gDNA of the resting salivary flow rate. The risk of S.mutans detection was 15 times higher with smokers, 1.3~1.6 times higher when the resting or stimulated salivary flow rate was reduced by 1 mm. The risk of P.intermedia detection was 13 times higher in smokers, 4.3 times higher as the severity of oral dryness was lowered, and 4 times higher for adults with a tongue coating than those without. In addition, the risk of detecting TM7 was 5.5 times higher as sublingual dryness was decreased by 1mm. The oral bacterial count will be reduced considerably by smoking cessation education and habits that facilitate a salivary flow rate. Furthermore, adults with good and well-managed dental hygiene are anticipated to have less oral bacteria and fewer dental diseases.
A pilot-scale wastewater treatment plant combined with rotating biological contactor and tapered aeration reactors was operated with the wastewater discharged from a food factory for 5 months. The bacterial communities of this plant were investigated by terminal restriction fragment length polymorphism (T-RFLP) and phylogenetic analysis of 16S rRNA genes. In spite of high concentration of nitrogen and phosphorus as well as organic carbon, removal efficiency of chemical oxygen demand, total nitrogen, and total phosphorus was 98%, 93%, and 95%, respectively. Bacterial community at the initial operation stage was clearly distinguished from that of the stable operation stage. The most predominant phylum in the sample of stable stage was Bacteroidetes. Major population of operation period was Haliscomenobacter, Sphaerotilus, and candidate division TM7, which were classified as filamentous bacteria. However, sludge bulking caused by these bacteria was not observed. The population that has a close relationship with Haliscomenobacter increased during the stable operation stage, emerging as the most predominant group. These results suggest that the filamentous bacteria participated in nutrient removal when using rotating biological contactor and tapered aeration reactor.
As one of the most complex human-associated microbial habitats, the oral cavity harbors hundreds of bacteria. Halitosis is a prevalent oral condition that is typically caused by bacteria. The aim of this study was to analyze the microbial communities and predict functional profiles in supragingival plaque from healthy individuals and those with halitosis. Ten preschool children were enrolled in this study; five with halitosis and five without. Supragingival plaque was isolated from each participant and 16S rRNA gene pyrosequencing was used to identify the microbes present. Samples were primarily composed of Actinobacteria, Bacteroidetes, Proteobacteria, Firmicutes, Fusobacteria, and Candidate phylum TM7. The ${\alpha}$ and ${\beta}$ diversity indices did not differ between healthy and halitosis subjects. Fifteen operational taxonomic units (OTUs) were identified with significantly different relative abundances between healthy and halitosis plaques, and included the phylotypes of Prevotella sp., Leptotrichia sp., Actinomyces sp., Porphyromonas sp., Selenomonas sp., Selenomonas noxia, and Capnocytophaga ochracea. We suggest that these OTUs are candidate halitosis-associated pathogens. Functional profiles were predicted using PICRUSt, and nine level-3 KEGG Orthology groups were significantly different. Hub modules of co-occurrence networks implied that microbes in halitosis dental plaque were more highly conserved than microbes of healthy individuals' plaque. Collectively, our data provide a background for the oral microbiota associated with halitosis from supragingival plaque, and help explain the etiology of halitosis.
Quan Zhe-Xue;Rhee Sung-Keun;Bae Jin-Woo;Baek Jong-Hwan;Park Yong-Ha;Lee Sung-Taik
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.2
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pp.232-239
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2006
The microbial activity and bacterial community structure of activated sludge reactors, which treated free cyanide (FC), zinc-complexed cyanide (ZC), or nickel-complexed cyanide (NC), were studied. The three reactors (designated as re-FC, re-ZC, and re-NC) were operated for 50 days with a stepwise decrease of hydraulic retention time. In the re-FC and re-ZC reactors, FC or ZC was almost completely removed, whereas approximately 80-87% of NC was removed in re-NC. This result might be attributed to the high toxicity of nickel released after degradation of NC. In the batch test, the sludges taken from re-FC and re-ZC completely degraded FC, ZC, and NC, whereas the sludge from re-NC degraded only NC. Although re-FC and re-ZC showed similar properties in regard to cyanide degradation, denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) analysis of the 16S rRNA gene of the bacterial communities in the three reactors showed that bacterial community was specifically acclimated to each reactor. We found several bacterial sequences in DGGE bands that showed high similarity to known cyanide-degrading bacteria such as Klebsiella spp., Acidovorax spp., and Achromobacter xylosoxidans. Flocforming microorganism might also be one of the major microorganisms, since many sequences related to Zoogloea, Microbacterium, and phylum TM7 were detected in all the reactors.
Kim, Dong Hyeon;Kim, Myung Hoo;Kim, Sang Bum;Ha, Seung Min;Son, Jun Kyu;Lee, Ji Hwan;Hur, Tai Young;Lee, Jae Yeong;Park, Ji Hoo;Choi, Hee Chul;Lee, Hyun Jeong;Park, Beom Young;Ki, Kwang Seok;Kim, Eun Tae
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.39
no.4
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pp.227-234
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2019
This study was performed to investigate the effect of heat-stressed environment on rumen microbial diversity in Holstein cows. Rectal temperature and respiration rate were measured and rumen fluid was collected under normal environment (NE; Temperature humidity index (THI)=64.6) and heat-stressed environment (HE; THI=87.2) from 10 Holstein cows (60±17.7 months, 717±64.4 kg) fed on the basis of dairy feeding management in National Institute of Animal Science. The rumen bacteria diversity was analyzed by using the Illumina HiSeqTM 4000 platform. The rectal temperature and respiratory rate were increased by 1.5℃ and 53 breaths/min in HE compared to that in NE, respectively. In this study, HE exposure induced significant changes of ruminal microbe. At phylum level, Fibrobacteres were increased in HE. At genus level, Ruminococcaceae bacterium P7 and YAD3003, Butyrivibrio sp. AE2032, Erysipelotrichaceae bacterium NK3D112, Bifidobacterium pseudolongum, Lachnospiraceae bacterium FE2018, XBB2008, and AC2029, Eubacterium celulosolvens, Clostridium hathewayi, and Butyrivibrio hungatei were decreased in HE, while Choristoneura murinana nucleopolyhedrovirus, Calothrix parasitica, Nostoc sp. KVJ20, Anabaena sp. ATCC 33047, Fibrobacter sp. UWB13 and sp. UWB5, Lachnospiraceae bacterium G41, and Xanthomonas arboricola were increased in HE. In conclusion, HE might have an effect to change the rumen microbial community in Holstein cows.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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