The present study was performed to compare the mitochondrial genomes between 2 Spirometra tapeworms, Spirometra erinaceieuropaei and Spirometra decipiens (Cestoidea: Diphyllobothriidae), which larval stages are important etiological agents of sparganosis in humans. For each species, the full mitochondrial genome was amplified in 8 overlapping fragments using total genomic DNA purified from a single worm as the template. The mitochondrial genomes were 13,643 bp (S. erinaceieuropaei) and 13,641 bp (S. decipiens) in length and contained 36 genes; 12 protein-coding genes, 2 ribosomal RNA (rRNA, small and large subunits), and 22 transfer RNAs (tRNAs). The 12 protein-coding genes constituted 10,083 bp (S. erinaceieuropaei) and 10,086 bp (S. decipiens) of their respective mitochondrial genomes. The tRNA genes, ranging in length from 56 to 70 bp, were identified based on putative secondary structures such as the typical cloverleaf shape. A total of 23 intergenic sequences, varying from 1 to 204 bp in size, were interspersed in S. erinaceieuropaei (total, 504 bp) and S. decipiens (total, 496 bp) mtDNA. The 12 protein-coding genes of S. erinaceieuropaei and S. decipiens differed by 12.4%, whereas the overall difference in mtDNA sequence between S. erinaceieuropaei and S. decipiens was 12.9%. Thus, from the standpoint of the mitochondrial genome, S. decipiens represents a valid species that can be distinguished from S. erinaceieuropaei.
Seung-Kyo Jeong;Dohyeong Gwon;Bae-Hyeon Lee;Jeong-Hwan Suh;Rahmatullah Jan;Jae-Ryoung Park;Taehun Ryu;Kyung-Min Kim
Journal of Life Science
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v.34
no.8
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pp.567-575
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2024
New breeding techniques (NBT) recognize specific DNA sequences and remove, modify, or insert DNA at a desired location, and can be used to treat genetic diseases in humans or to improve the traits of livestock or crops. In this study, we conducted a comparative analysis of various agricultural traits and assessed the safety of gene transferability in third-generation genome-editing rice (OsCKq1-G3) with T and G nucleotide insertions developed using the CRISPR/Cas9 SDN-1 method, in comparison to its parental line (Oryza sativa L., cv Ilmi). The analyzed traits included heading date, culm length, panicle length, tiller number, yield, germination rate, viviparous germination rate, shattering, after wintering seed viability, the presence of toxins and allergens. The target trait, heading date, exhibited a high significant difference of approximately 5 days. Culm length, panicle length, tiller number, yield showed no significant differences compared to the parental line. No T-DNA bands indicating gene transfer were detected. In the third generation of genome-edited rice, the T-DNA was confirmed to be eliminated as successive generations advanced through self-pollination. Through the analysis of germination rate, viviparous germination rate, shattering, and after wintering viability, we confirmed that the genome-editing rice has no potential for weediness. The ORF and amino acid sequences of the genome-editing rice did not reveal any toxins and allergens. The results of this study can be utilized as important data for the environmental risk assessment of genome-editing rice.
Previously, we reported that the osmolarity conditions in the satellite region were affected CpG DNA methylation status while Pre-1 sequence was not affected CpG DNA methylation in pNT blastocyst stage. This study was conducted to investigate the DNA methylation status of repeat sequences in pig nuclear transfer (pNT) embryos produced under different osmolarity culture conditions. Control group of pNT embryos was cultured in PZM-3 for six days. Other two treatment groups of pNT embryos were cultured in modified PZM-3 with 138 mM NaCl or 0.05 M sucrose (mPZM-3, 320 mOsmol) for two days, and then cultured in PZM-3 (270 mOsmol) for four days. The DNA methylation status of the Pre-1 sequences in blastocysts was characterized using a bisulfite-sequencing method. Intriguingly, in the present study, we found the unique DNA methylation at several non-CpG sequences at the Pre-1 sequences in all groups. The non-CpG methylation was hypermethylated in all three groups, including in vivo group (86.90% of PZM-3; 83.87% of NaCl; 84.82% of sucrose; 90.94% of in vivo embryos). To determine whether certain non-CpG methylated sites were preferentially methylated, we also investigated the methylation degree of CpA, CpT and CpC. Excepting in vivo group, preference of methylation was CpT>CpC>CpA in all three groups investigated. These results indicate that DNA methylation of Pre-1 sequences was hypermethylated in CpG as well as non-CpG site, regardless modification of osmolarity in a culture media.
Streptomyces scabiei producing phytotoxin called thaxtomin, which cause scab disease on economically important crops such as potato. For molecular genetics study of S. scabiei an effective transformation method was established based on conjugal transfer from Escherichia coli ET12567 (pUZ8002) using a phiC31-derived integration vector, pSET152, containing oriT and attP fragments. The high frequency was obtained on MS medium containing 50 mM $MgCl_2$. In addition, the sequence and location of the chromosomal integration attB site of S. scabiei was identified for the first time in the strains producing thaxtomin by the southern blot analysis of exconjugants and the sequencing of plasmid containing DNA flanking the insertion sites from exconjugant chromosome. Similar to the case of Streptomyces species, a single phiC31 attB site of S. scabiei is present within an ORF encoding a pirin-homolog.
Kim, Myung-Jick;Chung, Ho-Young;Cho, Kyu-Ho;Jeon, Gi-Jun;Kim, Jin-Hyung
Journal of Embryo Transfer
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v.23
no.3
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pp.197-201
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2008
In order to provide information of genetic variants for Haptoglobin (Hp) gene, which may be related to weight traits in pig, a total of 235 animals from National Institute of Animal Science (NIAS) were screened with 3 primers. The primer sequences were selected using the porcine cDNA sequences based on NM_214000, and the exon boundaries were estimated. Genetic variants were observed using direct sequencing analysis, and there were 9 SNPs detected at nucleotide positions 503 (A/G), 509 (A/G), 709 (C/T), 734 (C/A), 742 (G/A), 769 (A/G), 840 (C/T), 876 (C/T) and 882 (C/A). All the SNPs were located in coding regions, and mutations caused amino acid changes at nucleotide positions 503, 509, 734, 742 and 769. Allele frequencies of SNPs were estimated for all segments. The SNPs at nucleotide position 509 (p<0.0001) and 734 (p<0.05) were significantly associated with average daily gain, but no significance was observed with other SNPs. From the results, the identified SNPs may be a useful candidate marker for the porcine weight gain traits.
Baculovirus transfer and expression vectors with Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus (HcNPV) were constructed. An initial transfer vector, pHcEV, constructed using HcNPV was previously reported (Park et al. 1993. J. Kor. Soc. Viral. 23: 141-151). Herein, the size of the vector was properly reduced, and a functionally perfect vector was constructed and named pHcEV-IV (6.7 kb). The vector has a 2.2-kb HcNPV DNA sequence in the 5'-flanking region of the vector's polyhedrin gene promoter. The 1.8-kb HcNPV DNA sequence, poly A signal sequence, T3 primer sequence, and 13 multicloning site sequences, in order, were ligated in front of the translation start codon of the polyhedrin gene. The cloning indicating marker lacZ gene was inserted into the pHcEV-IV, named pHcEV-IV-lacZ, and transferred into the wild-type virus. Recombinant expression virus, lacZ-HcNPV, was constructed by replacing the lacZ gene in the pHcEV-IV-lacZ with the polyhedrin gene of the wild-type virus. The recombinant virus was isolated from blue plaques that produce $\beta$-galactosidase without polyhedra. The lacZ gene insertion was confirmed by Southern hybridization analysis. The expression of the lacZ gene in Spodoptera frugiperda cells infected with the lacZ-HcNPV was examined by SDS-PAGE and colorimetric assay. One 116-kDa LacZ protein band appeared on the PAGE. The production rate of the $\beta$-galactosidase was approximately 50 international units (IU) per min per ml between 2 to 5 days postinfection (p.i.). The highest activity occurred at five days p.i. was 170 IU/min/$m\ell$. The enzyme activity first appeared about 20 h p.i. as measured by colorimetric assay.
When protoplasts from auxotrophie mutant of Trkhoderma koningii CUT121(Lys-, Met-) were mixed with isolated nuclei of wild type T. koningii ATCC 261 13 and treated with PEG solution, protrophic colonies were produced with frequency of more than 30 percent. One of segregants from prototrophic colonies showed increased xylanase activity and other polysaccharide-hydrolyzing activities comparable to those of wild type strain. Through measurement of DNA contents, induced segregation, and analysis of isozyme patterns, it was revealed that the prototrophic colonies were transformants resulted from exchange of genetic materials between the two kinds of nuclei used. These results suggest that nuclei transfer technique is more efficient than conventional protoplast fusion technique for strain improvement of Trichoderma species.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.143.3-144
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2003
A Korean isolate of Pepper mild mottle virus (PMMoV-Kr) was isolated from a diseased pepper crop in Chunchon, Korea. The isolate was biologically purified on Nicoticaa tabacum cv. Xanthi-nc by successive single local transfer steps, and propagated on N. tabacum cv. Samsun. PMMoV-Kr could systemically infect on N. glauca, N. benthmiana, N. occidentalis and Lycopersicon esculentum, which is typical of known isolates of PMMoV. PMMoV-Kr belongs to the pathotype P1,2 based on pepper-tobamoviral indicator experiments; Capsicn chinone harboring L3 gene revealed resistant (necrotic local lesion on inoculated leaf, HR) whereas L+, L1 and L2 pepper plants expressed susceptible reactions of mosaic systemic symptoms for the isolate. To confirm the pathology and delineate symptom determinant of the isolate, full-length cDNAs of PMMoV-Kr were amplified by RT-PCR with a primer set corresponding to the 5'- and 3'-ends of PMMoV. The RT-PCR molecules amplified from genome RNA of the isolate was cloned into the pUC18 vector. Full-length cDNA clones constructed under the control of the T7 RNA promoter could be successfully transcribed to produce in vitro transcript RNA. Infectivity of the capped transcripts and its progeny virus was verified by Western blot and RT-PCR analyses.
For the taxonomic evaluaition, 15 strains of the genus Pectobacterium and Erwinia were analyzed for 16S-23S rDNA intergenic spacer regions (ISRs). These species contained two types of ISRs, large and small ISRs. Large ISRs were on the range of 474-569 bp size, and coding transfer $\textrm{RNA}^{11e}$($\textrm{tRNA}^{11e}$) and $\textrm{tRNA}^{Ala}$. Small ISRs were 354-459 bp in length and coding $\textrm{tRNA}^{Glu}$. The sequence variations of two ISRs among species and strains were very high as compared with 16S rRNA gene sequences. By phylogenetic trees on the basis of two ISRs, Pectobacterium ere differentiated into P. carotovorum-P. cactiaidum group and P. chrysanthemi group. However, the taxonomic position of E. cypripedii and E. rhapontici, which were not clear on taxonomic delineation between Pectobacterium and Erwinia, were not clearly resolved on the basis of ISRs.
The 16S-23S rRNA intergenic spacer regions (ISRs) were sequenced and analyzed to design specific primer for identification of Pectobacterium chrysanthemi. Two types ISRs, large and small ISRs, were identified from three strains (ATCC 11663, KACC 10163 and KACC 10165) of P. chrysanthemi and Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum ATCC 15713.Large ISRs contained transfer RNA-Ile(tRNA$^{Ile}$)and tRNA$^{Ala}$, and small ISRs contained tRNA$^{Glu}$. Size of the small ISRs of P. chrysanthemi ranged on 354-356 bp, while it was 451 bp in small ISR of P. carotovorum subsp. carotovorum ATCC 15713. From hypervariable region of small ISRs, species-specific primer for P. chrysanthemi with 20 bp length (CHPG) was designed from hypervariable region of small ISRs, which was used as forward promer to detect P. chrysanthemi strains with R23-1R produced PCR product of about 260bp size (CHSF) only from P. chrysanthemi strains, not from other Pectobacterium spp. and Erwinia spp. Direct PCR from bacterial cell without extracting DNA successfully amplified a specific fragment, CHSF, from P. chrysanthemi ATCC 11663. The limit of PCR detection was 1${\pm}10^2$ cfu/ml.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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