The aim of this study was to develop species-specific primer sets for kimchi Lactobacillus. Known gene sequences of Lactobacillus 16S rRNA were collected from the NCBI Gene bank, and 69 primer sets were designed using the homologous gene sequence. Six species of kimchi Lactobacilli were used as reference strains: Lactobacillus brevis KCTC3102, Lactobacillus farciminis KCTC3681, Lactobacillus fermentum KCTC3112, Lactobacillus hilgardii KCTC3500, Lactobacillus plantarum KCTC3099, and Lactobacillus sanfranciscensis KCTC3205. PCR amplification and gel electrophoresis were performed to identify the accuracy and specificity of the developed primer set. The results show that the primer set of 5'-aagcctgcgaaggcaag-3' & 5'-aggccaccggctttg-3', 5'-acatactatgcaaatctaagagattagacg-3' & 5'-actgagaatggctttaagagattagcttac-3' resulted in a specific PCR band on L. hilgardii, and primer set of 5'-ctaataccgcataacaactactttcacat-3' & 5'-aacttaataaaccgcctacattctctttac-3' on L. farciminis. The results indicate that the developed primer sets can provide a useful tool for the identification and differentiation of L. hilgardii and L. farciminis from other Lactobacillus species of kimchi.
Fusarium species, a large group of plant pathogens, potentially pose quarantine concerns worldwide. Here, we focus on the development of a method for detecting four Fusarium species in quarantined plants in Korea: F. solani f. sp. cucurbitae, F. stilboides, F. redolens, and F. semitectum var. majus. Species-specific primers were designed from the nucleotide sequences of either the translation elongation factor-1 alpha (TEF1) gene or RNA polymerase II subunit (RPB2) gene. Two different primer sets derived from TEF1, all specific to F. solani f. sp. cucurbitae, were able to differentiate the two races (1 and 2) of this species. A set of nested primers for each race was designed to confirm the PCR results. Similarly, two primer sets derived from RPB2 successfully amplified specific fragments from five F. stilboides isolates grouped within a single phylogenetic clade. A specific TEF1 primer set amplified a DNA fragment from only four of the 12 F. redolens strains examined, which were grouped within a single phylogenetic clade. All of the F. semitectum var. majus isolates could be specifically detected with a single RPB2 primer set. The specificity of the primer sets developed here was confirmed using a total of 130 Fusarium isolates.
Choi, Jin Su;Yang, Seul Gi;Song, Jeong Young;Kim, Hong Gi
Research in Plant Disease
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v.20
no.1
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pp.21-24
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2014
Clubroot caused by the obligate biotrophic protist Plasmodiophora brassicae Woronin is one of the most damaging diseases of Brassicaceae family. In this study, we developed species-specific primer sets for rapid and accurate detection of P. brassicae. The primer sets developed amplified a specific fragment only from P. brassicae DNA while they did not amplify a band from 10 other soilborne pathogens or from Kimchi cabbage. In sensitivity test, the species-specific primer set ITS1-1/ITS1-2 could work for approximately 10 spores/ml of genomic DNA showing more sensitivity and accuracy than previous methods. With quantitative real-time PCR test, the primer set detected less spores of P. brassicae than before, confirming that the species-specific primer set could be useful for rapid and accurate detection of P. brassicae.
Cylindrocarpon destructans is a soil-borne plant pathogenic fungus causing root rot on ginseng and trees. Rapid and exact detection of this pathogen was practiced on ginseng seedlings by nested PCR using speciesspecific primer set. The second round of PCR amplification by Dest 1 and Dest 4 primer set formed 400 bp of species-specific fragment of C. destructans from the product of first round of amplification by ITS 1 and ITS 4 primer set. In the PCR sensitivity test based on DNA density, nested PCR detected to the limit of one fg and it meant the nested PCR could detect up to a few spores of C. destructans. Also, nested PCR made it possible to detect the pathogen from ginseng seedlings infected by replantation on artificial infested soil. Our nested PCR results using species-specific primer set could be utilized for diagnosis of root rot disease in ginseng cultivation.
Harmful Cochlodinium polykrikoides is a notorious harmful algal bloom (HAB) species that is causing mass mortality of farmed fish along the Korean coast with increasing frequency. We analyzed the sequence of the large subunit (LSD) rDNA D1-D3 region of C. polykrikoides and conducted phylogenetic analyses using Bayesian inference of phylogeny and the maximum likelihood method. The molecular phylogeny showed that C. polykrikoides had the genetic relationship to Amphidinium and Gymnodinium species supported only by the relatively high posterior probabilities of Bayesian inference. Based on the LSU rDNA sequence data of diverse dinoflagellate taxa, we designed the C. polykrikoides-specific PCR primer set, CPOLY01 and CPOLY02 and developed PCR detection assays for its sensitive, accurate HAB monitoring. CPOLY01 and CPOLY02 specifically amplified C. polykrikoides and did not cross-react with any dinoflagellates tested in this study or environmental water samples. The effective annealing temperature $(T_{p})$ of CPOLY01 and CPOLY02 was $67^{\circ}C$. At this temperature, the conventional and nested PCR assays were sensitive over a wide range of C. polykrikoides cell numbers with detection limits of 0.05 and 0.0001 cells/reaction, respectively.
One of the major allergenic proteins in common buckwheat (Fagopyrum elculentum) was found to be a BW10KD. In this work, allergenic BW10KD genomic DNAs from the native common buckwheat 'Pyeongchang' and Tartarian buckwheat 'Clfa47' were cloned by polymerase chain reaction (PCR), and their nucleotide sequences were determined. In addition, a novel PCR assay targeting the allergenic BW10KD gene was developed to detect and differentiate both buckwheat species in food. The nucleotide sequences of the BW10KD genomic DNA from 'Pyeongchang' and 'Clfa47' were 94% identical. Base differences in the nucleotide sequences of the BW10KD genes are probably useful as a molecular marker for species-specific identification. The 'Pyeongchang'-specific primer set 154PF/400PR and the 'Clfa47'-specific primer set 154DF/253DR generated 247 and 100 bp fragments in singleplex PCR, respectively. A duplex PCR assay with 2 species-specific primer sets simultaneously differentiated the 'Pyeongchang' and 'Clfa47' in a single reaction. The PCR assay also successfully allowed for the rapid detection of buckwheat ingredients in foods.
Kim, Young-Hwan;Win, Nang Kyu;Back, Chang-Gi;Yea, Mi-Chi;Yim, Kyu-Ock;Jung, Hee-Young
The Plant Pathology Journal
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v.27
no.4
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pp.367-371
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2011
Multiplex PCR assays were developed for the simultaneous detection of ten important Korean quarantine phytoplasmas. The species-specific primers were designed based on ribosomal protein, putative preprotein translocase Y, immunodominant protein, elongation factor TU, chaperonin protein and the 16S rRNA genes of 'Candidatus (Ca.) Phytoplasma' species. Three main primer sets were prepared from ten designed primer pairs to limit nonspecific amplification as much as possible. The multiplex PCR assay using the three primer sets successfully amplified the correct conserved genes for each 'Ca. Phytoplasma' species. In addition, ten important 'Ca. Phytoplasma' species could be easily determined by recognizing band patterns specific for each phytoplasma species from three primer sets. Moreover, a high sensitivity of multiplex PCR for each primer set was observed for samples containing a low DNA concentration (10 ng/${\mu}l$). This study provides the useful multiplex PCR assay as a convenient method to detect the presence of ten important quarantine phytoplasmas in Korea.
The soybean cyst nematode, Heterodera glycines, is a major plant-parasitic nematode that has caused important economic losses to Korea's soybean production. Four species of cyst nematodes, H. schachtii, H. glycines, H. trifolii, and H. sojae, all belong to schachtii group are coexist in field soil in Korea. The rapid identification of the nematode is crucial for preventing crop damage and in decision making for controlling this nematode. This study aimed to develop a species-specific primer set for quantitative PCR (qPCR) assay of H. glycines. The specific primer set (HGF1 and HGR1) for H. glycines was designed based on the cytochrome c oxidase subunit I (COI) sequence of mitochondrial DNA. After optimization, it is possible to identify the H. glycines using a qPCR assay with DNA extracted from a single cyst and single second-stage juvenile (J2). The specificity was confirmed by the absence of SYBR fluorescent signals of three other Heterodera species. A serial dilution of DNA extracted from a single cyst was obtained for the sensitivity test. The result showed that the standard curve of the test had a highly significant linearity between DNA concentration and Ct value (R2 = 0.996, slope = -3.49) and that the detection limit concentration of DNA of the primer set was 10 pg of DNA per reaction. Our findings suggested that H. glycines could be distinguished from H. sojae and other Heterodera species when a qPCR assay is used with a specific primer set.
Bacillus anthracis is a gram-positive spore-forming bacterium that causes the disease anthrax. In order to develop a DNA marker specific for Bacillus anthracis and to discriminate this species from Bacillus cereus group, we applied the randomly amplified polymorphic DNA (RAPD)-PCR technique to a collection of 29 strains of the genus Bacillus, including 22 species of the B. cereus group. A 709-bp RAPD marker (KHT5) specific for B. anthracis was obtained from B. anthracis BAK. The PCR product of internal primer set from the KHT5 fragment distinguished B. anthracis from the other species of the B. cereus group.
Botrytis cinerea, gray mold pathogen, causes serious losses in greenhouse tomato crop. In this study, a primer set was developed for identification and specific PCR detection of B. cinerea from tomato plants. The primer pair (BTF1/BTR1) was designed from polymorphic sequence region in pyruvate carboxylase gene (pyc) of B. cinerea. A PCR product (112 bp) was amplified on genomic DNA of 13 B. cinerea isolates from 10 different host plants, but not on those from 6 other Botrytis spp., 4 Botryotinia spp., 5 Sclerotinia spp. and 16 other genus of phytopathogenic fungi. The sensitivity limit of the primer set was 2 pg of genomic DNA of B. cinerea, approximately. The PCR assay using species-specific primer set was specifically able to detect the pathogen on naturally infected tomato plants and artificially infected plants. These results suggest that the sensitivity and specificity of this primer set can be applied in a rapid and accurate diagnosis of tomato disease caused by B. cinerea.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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