The microorganism was isolated from the night soil treatment plant for the removal of sulfur compounds. The growth conditions of the sulfur-oxidizing bacteria were investigated and the isolate characterized as Thiobacillus noveilus SRM. The optimal pH of Thiobacillus novellus SRM on cell growth was pH 7.0 and the optimal temperature was 30$^{\circ}C$ and the optimal air flow rate was 1 vvm, respectively. As a results of cell growth from the Monod plot, the specific growth rate was 0.032 hr$\^$-l/, $V_{max}$ was 1.43 hr$\^$-l/ and $K_{m}$ was 0.32, respectively. The thiosulfate oxidation by Thiobacillus novellus SRM was made of sulfate ion. The sulfate ion reduced pH and decreased cell growth.
Three microbial consortia were screened for their ability to degrade phenolic resin, resole as a sole carbon source. These microbial consortia were derived from soil samples collected from a phenolic resin manufacturing plant site. Among the consortia, the test consortium, designated as MS2, displayed approximately 70% degradation of the substrate, 100 mg of resole per liter, within the fist twelve days of incubation but the degradation was inhibited. During the incubation period, pH was decreased from 7.0 to 2.7, and the resole degradation became inhibited under the conditions. UV-scans of spent culture showed that the wavelength of maximum absorption was 261 nm for resole.
For the production of biodegradable polymers from microorganisms a bacterial strain producing a biopolymer was isolated from soil. The bacteriological characteristics of this strain and physicochemical Properties of the biopolymer produced were investigated. The bacterial strain was identified as an alkalophilic Alcaligenes sp. The Purified biopolymer treated with cetylpridinium chloride and acetone was identified as an acidic biopolymer having carboxyl groups and showed strong UV absorbance (at 210nm). The biopolymer was composed of 100% glutamic acid and glutamic acid existed as $\gamma$-polyglutamic acid($\gamma$-PGA) in the form of the $\gamma$-peptide bond. The equivalent weight of this $\gamma$-PGA was estimated about 350, indicating that one acidic fraction per 2.7 residue of $\gamma$-polyglutamic acid existed. The molecular weight was $6.5{\times}10^5$ Daltons.
Maximum cellulase production was sought by comparing the activities of the cellulases produced by different Trichoderma reesei strains and Aspergillus niger. Trichoderma reesei Rut-C30 showed higher cellulase activity than other Trichoderma reesei stains and Aspergillus niger that was isolated from soil. By optimizing the cultivation conditions during shake flask culture, higher cellulase production could be achieved. The FP(filter paper) activity of 3.7U/ml and CMCase (Carboxymethylcellulase) activity of 60U/ml were obtained from shake flask culture. When it was grown in 2.5L fermentor, where pH and DO levels are controlled, the enzyme activities were 133.35U/ml (CMCase) and 11.67U/ml(FP), respectively. Ammonium sulfate precipitation method was used to recover enzymes from fermentation broth. The dried cellulase powder showed 3074.9U/g of CMCase activity and 166.7U/g of FP activity with 83.5% CMCase recovery.
Twenty six microorganisms were isolated from soil and horse manure samples from in Iowa, U.S. Microorganisms were cultivated and screened by using plate count agar (PCA) at $35^{\circ}C$ containing 1% (w/v) oat spelt xylan instead of glucose. The xylanase activities of bacterial strains were analyzed by measuring the concentration of reducing sugar by DNS method. All isolated strains were characterized as the rod form and gram positive strains. Among the isolated strains, the HM6 strains gave the highest xylanase activity. This strain was identified as Bacillus pumilus HM6 by 16S rDNA sequence, morphological and biochemical analysis. Optimal culture temperature and initial medium pH for B. pumilus HM6 were $30-35^{\circ}C$ and pH 6-7, respectively. The maximum xylanase activity of 6879 IU/mL was obtained after growth of HM6 with 1% (w/v) oat spelt xylan at $35^{\circ}C$ for 6 days. Studies on enzymatic properties showed that the optimum conditions for the highest xylanase activity were $60^{\circ}C$ and pH 8.0. In addition, xylanase activity was stable over 2 hours at $50^{\circ}C$, whereas activity decreased after 30 min at $70^{\circ}C$.
This research was to investigate the polyester preparation using waste ethylene glycol (EG) generated from the wastepaper pretreatment process. Waste EG was obtained from using EG five times repeatedly in the pretreatment of wastepaper. The hydroxyl value of the waste EG was 441 mg KOH/g and its composition was 0.68% cellulose, 6.5% hemicellulose, 6.1% lignin, and 86.7% EG. Maleic acid was used as carboxylic acid. The effect of reaction temperature and time except carboxyl group/hydroxyl group ratio on the crosslinkage of the prepared polyester was marginal. Citric acid, lithium hydroxide and dicumyl peroxide were used as additive or catalyst to enhance the crosslinkage of polyester. Among them, 10% of citric acid was found to be most effective. The crosslinkage was 86% when the polyester was prepared at an optimum condition such as $130^{\circ}C$ and 15 minutes, 1.5 of C/H ratio, and 10% of citric acid, and its insoluble percentage in boiling water for 6 hours was 47%. The weight loss of the prepared polyester was approximately 40% when it was buried in damp soil for 5 months, indicating that it is readily biodegradable. This results can provide some information for future development of wastepaper pretreatment by organic solvent.
O, Gyeong-Taek;Park, Gwi-Hwan;Lee, Jeong-Il;Lee, Jung-Gi;Kim, Seong-Jun;Motoki, Kubo;Jeong, Seon-Yong
한국생물공학회:학술대회논문집
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2000.11a
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pp.435-438
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2000
Crude oil-degrading microorganisms, Acinetobacter sp. A132, Pseudomonas aeruginosa F722, and Acinetobacter calcoaceticus OM1 were isolated from soil and sea. The optimal temperature of strain A132 and strain F722 on growth isolated from soil was $35^{\circ}C$ both, and also their growth were optimized at pH 8 and 9, respectively. The growth of the strains, A132 and F722, showed that crude oil of 2% (w/v) in culture broth in which crude oil was used as carbon and energy sources appeared to be an optimum. Optimal culture conditions of strain OM1 were different from those of the soil microorganisms except for temperature. The growth of strain OM1 was optimized at pH 7 and crude oil of 3.0% (w/v). The degradability to crude oil by strain A132 showed maximum $5.49g/\;l\;{\cdot}\;day$ under the conditions of $25^{\circ}C$, NaCl of 1.0% (w/v), and crude oil of 2.0% (w/v). The highest degradability of strain F722 to crude oil was $1.19g/\;l\;{\cdot}\;day$ under the culture conditions at $35^{\circ}C$, NaCl 1.0% (w/v), and crude oil of 2.0% (w/v). The degradation characteristics of kerosene $(nC_9-nC_{20})$ and diesel $(nC_9-nC_{28})$ by strain OM1, and F722 were analyzed by gas chromatography. Strain OM1 degraded more than 95% of kerosene and 75% of diesel for 7 days cultivation. Strain F722 showed degradation of more than 80% to kerosene in 10 days.
Biomass is originally photosynthesized from inorgainic compounds such as $CO_2$, minerals, water and solar energy. Recent studies have shown that anaerobic bacteria have the ability to convert recalcitrant biomass such as cellullosic or chitinoic materials to useful compounds. The biomass containing agricultural waste, unutilized wood and other garbage is expected to utilize as feed, food and fuel by microbial degradation and other metabolic functions. In this study we isolated several anaerobic, cellulolytic and chitinolytic bacteria from rumen fluid, compost and soil to study their related enzymes and genes. The anaerobic and cellulolytic bacteria, Clostridium thermocellum, Clostridium stercorarium, and Clostridium josui, were isolated from compost and the chitinolytic Clostridium paraputrificum from beach soil and Ruminococcus albus was isolated from cow rumen. After isolation, novel cellulase and xylanase genes from these anaerobes were cloned and expressed in Escherichia coli. The properties of the cloned enzymes showed that some of them were the components of the enzyme (cellulase) complex, i.e., cellulosome, which is known to form complexes by binding cohesin domains on the cellulase integrating protein (Cip: or core protein) and dockerin domains on the enzymes. Several dockerin and cohesin polypeptides were independently produced by E. coli and their binding properties were specified with BIAcore by measuring surface plasmon resonance. Three pairs of cohesin-dockerin with differing binding specificities were selected. Two of their genes encoding their respective cohesin polypeptides were combined to one gene and expressed in E. coli as a chimeric core protein, on which two dockerin-dehydrogenase chimeras, the dockerin-formaldehyde dehydrogenase and the dockerin-NADH dehydrogenase are planning to bind for catalyzing $CO_2$ reduction to formic acid by feeding NADH. This reaction may represent a novel strategy for the reduction of the green house gases. Enzymes from the anaerobes were also expressed in tobacco and rice plants. The activity of a xylanase from C. stercorarium was detected in leaves, stems, and rice grain under the control of CaMV35S promoter. The digestibility of transgenic rice leaves in goat rumen was slightly accelerated. C. paraputrificum was found to solubilize shrimp shells and chitin to generate hydrogen gas. Hydrogen productivity (1.7 mol $H_2/mol$ glucos) of the organism was improved up to 1.8 times by additional expression of the own hydrogenase gene in C. paraputrficum using a modified vector of Clostridiu, perfringens. The hydrygen producing microflora from soil, garbage and dried pelletted garbage, known as refuse derived fuel(RDF), were also found to be effective in converting biomass waste to hydrogen gas.
Although, microbial arsenic mobilization by dissimilatory arsenate-reducing bacteria (DARB) and the practical use to the removal technology of arsenic from contaminated soil are expected, most previous research mainly has been focused on the geochemical circulation of arsenic. Therefore, in this review we summarized the previously reported DARB to grasp the characteristic for bioremediation of arsenic. Evidence of microbial growth on arsenate is presented based on isolate analyses, after which a summary of the physiology of the following arsenate-respiring bacteria is provided: Chrysiogenes arsenatis strain BAL-$1^T$, Sulfurospirillum barnesii, Desulfotomaculum strain Ben-RB, Desulfotomaculum auripigmentum strains OREX-4, GFAJ-1, Bacillus sp., Desulfitobacterium hafniense DCB-$2^T$, strain SES-3, Citrobacter sp. (TSA-1 and NC-1), Sulfurospirillum arsenophilum sp. nov., Shewanella sp., Chrysiogenes arsenatis BAL-$1^T$, Deferribacter desulfuricans. Among the DARB, Citrobacter sp. NC-1 is superior to other dissimilatory arsenate-reducing bacteria with respect to arsenate reduction, particularly at high concentrations as high as 60 mM. A gram-negative anaerobic bacterium, Citrobacter sp. NC-1, which was isolated from arsenic contaminated soil, can grow on glucose as an electron donor and arsenate as an electron acceptor. Strain NC-1 rapidly reduced arsenate at 5 mM to arsenite with concomitant cell growth, indicating that arsenate can act as the terminal electron acceptor for anaerobic respiration (dissimilatory arsenate reduction). To characterize the reductase systems in strain NC-1, arsenate and nitrate reduction activities were investigated with washed-cell suspensions and crude cell extracts from cells grown on arsenate or nitrate. These reductase activities were induced individually by the two electron acceptors. Tungstate, which is a typical inhibitory antagonist of molybdenum containing dissimilatory reductases, strongly inhibited the reduction of arsenate and nitrate in anaerobic growth cultures. These results suggest that strain NC-1 catalyzes the reduction of arsenate and nitrate by distinct terminal reductases containing a molybdenum cofactor. This may be advantageous during bioremediation processes where both contaminants are present. Moreover, a brief explanation of arsenic extraction from a model soil artificially contaminated with As (V) using a novel DARB (Citrobacter sp. NC-1) is given in this article. We conclude with a discussion of the importance of microbial arsenate reduction in the environment. The successful application and use of DARB should facilitate the effective bioremediation of arsenic contaminated sites.
Kim, Mi-Rim;Jeong, Mi-Yeon;Seong, Eun-Mi;Lee, Ho-Won;Lee, Yeong-Geun;Kim, Yong-Gyun;Park, Jeong-Uk;Ju, U-Hong
한국생물공학회:학술대회논문집
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2000.04a
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pp.374-377
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2000
A strain of Pseudomonas sp. BCNU 154 was isolated from contaminated soil with orangic solvents as the sole source of carbon and energy. It utilized an exceptionally wide aromatic substrates. The strain BCNU 154 was able to utilize toluene, p-xylene, ethylbenzene, cumene, as the only carbon and energy source. When toluene or p-xylene was used as the sole carbon and energy source, the compound was rapidly degraded with significant increase in biomass concentruction. The biodegradation of this compound was observed when ethylbenzene or cumene was supplied on the carbon source and energy source, which may be a candidate extremophilic bacterium for the bioremediation technology.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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