Kim, Hyun;Cho, Young Moo;Ko, Yeoung-Gyu;Kim, Sung Woo;Seong, Hwan-Hoo;Yamanouchi, Keitaro
Journal of Embryo Transfer
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v.29
no.3
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pp.235-240
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2014
Ethylene glycol (EG) has been successfully used as a cryoprotectant for vitrification of mammalian embryos (including human embryos) due to its low formula weight and high permeation into cells compared with other cryoprotectants, including propylene glycol (PROH). Cryopreservation is able to store the surplus pre-embryos for freezing and furthermore thawing and transfer in a subsequent cycle. This study was carried out to evaluate the effects of embryonic stage, cryoprotectant, and freezing-thawing method on the rates of survival and development of the cryopreserved mouse early embryo and finally to establish the cryopreservation method of surplus embryos obtained during assisted reproductive technology (ART). Female ICR mice (6~8 weeks old) were induced to superovulate by sequential intraperitoneal injection of 5 IU PMSG and 5 IU hCG 48 h apart. Mouse embryos were collected according to its developmental stage after the injection of hCG. Embryos were cryopreserved not only during cryoprotectant step (1~4 step) but also in a variety of media (HTF, IVF medium, D-PBS) and cell stage. The results were as follows : There is no clear advantage in these freezing media of rapid method, but 4 cell and 8 cell of slow method (2, 3 and 4 step) have advantage in D-PBS. The development of embryos according to cell stage become greater in 8 cell stage. In the treatment steps of cryopreservation, the development of embryo to blastocyst was similar among rapid method, but the development of 4 cell and 8 cell embryos to blastocyst according to slow method was better than rapid method.
This work was carried out to investigate effects of the freezing/thawing method on duck meat kept in a freezer for a month. The meats used were breast muscle collected from Korean native ducks (KND) that were fed for 8 weeks (2.8 kg of live weight). Forty-five samples were used after being frozen in storage for one month and were then divided into 5 treatments (3 replications/treatment, 3 samples/replication). Five treatments (CON, FFFT, FFST, SFFT and SFST) were control groups (CON) and four were experimental groups, using $2{\times}2$ complex factors with two freezing methods (fast freezing, FF, $-50^{\circ}C$ in a deep freezer; slow freezing, SF, $-20^{\circ}C$ in a common freezer) and two thawing methods (fast thawing, FT, 5 h $12^{\circ}C$ with flow water; slow thawing, ST, 24 h $5^{\circ}C$ in a refrigerator). Lightness of KND meat in FF and FT groups was lower than that of control (P<0.05). Yellowness of KND meat of the ST group was higher than that of control (P<0.05). Cooking loss (CL) and water holding capacity (WHC) of KND meat in the control were lower than those of the freezing and thawing groups (P<0.01, P<0.05), but shear force (SF) of the control was higher than that of other groups (P<0.01). Moisture content of the ST group was higher than that of the FT group (P<0.05), and protein content of the FF group was higher than that of control (P<0.05). Stearic acid (C18:0) of the SF group was higher than that of the FF group (P<0.05). Arachidonic acid (C20:4n6) of control was higher than that of the SF and ST groups (P<0.01, P<0.05). Alanine, aspartic acid, glutamic acid, serine, and tyrosine content of the control were lower than that of the freezing and thawing groups (P<0.05). These results show that freezing and thawing methods affect meat color, shear force, cooking loss, and WHC-related water content.
Kim, Hyun;Cho, Young Moo;Han, Jae Yong;Choi, Sung Bok;Byun, Mi Jeong;Kim, Young Sin;Ko, Yeoung-Gyu;Seong, Hwan-Hoo;Kim, Sung Woo
Korean Journal of Poultry Science
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v.41
no.4
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pp.249-259
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2014
Cryopreserving cells which are maintaining their viability are the very complex process. This study has been carried out in order to find the effects of cryopreservation steps and freezing media on the rates of viability of cryopreserved chicken primordial germ cells (PGCs). PGCs obtained from the germinal gonade of 5.5~6 day (stage 28) chick embryos of Korean Ogye (KO) and Commercial breeds (C), using the MACS method were suspended in a freezing medium containing a freezing and protecting agents (e.g. dimethyl sulfoxide (DMSO), ethylene glycol (EG) and propylene glycol (PG)). Gonads were harvested from stage 28 chick embryos and pooled in groups of 5, 10, 15, 20E embryos, contributing gonads to the cell suspension. The gonadal cells, including PGCs, were then frozen in 1 of the following cryoprotectant treatments : 2.5%, 5%, 10%, 15% and 0% cryoprotectant (DMSO, EG, PG) as a control. Effects of exposure to slow freezing and vitrification, with different concentrations of the cryoprotectant solution, were examined. After vitrification and slow freezing, survival rates of the frozen-thawed PGCs from the 10% EG plus FBS treatment were 85.63%, and 66.14% (p<0.05), respectively. The viability of PGCs after freeze-thawing was significantly higher for 10% EG plus FBS treatment than for 10% PG + FBS treatment (p<0.05) (85.63% vs 66.81%) by vitrification. This study established a method for preserving chicken PGCs that enables systematic storage and labeling of cryopreserved PGCs in liquid ($LN_2$) at a germplasm repository and ease of entry into a data base. In the future, the importance for this new technology is that poultry lines can be conserved while work is being conducted on improving the production of germline chimeras.
The purpose of this study was to evaluate the viability of periodontal ligament cells of rat teeth after low-temperature preservation under high pressure by means of MTT assay, WST-1 assay. 12 teeth of Sprague-Dawley white female rats of 4 week-old were used for each group. Both side of the first and second maxillary molars were extracted as atraumatically as possible under tiletamine anesthesia. The experimental groups were group 1 (Immediate extraction), group 2 (Slow freezing under pressure of 3 MPa), group 3 (Slow freezing under pressure of 2 MPa), group 4 (Slow freezing under no additional pressure), group 5 (Rapid freezing in liquid nitrogen under pressure of 2 MPa), group 6 (Rapid freezing in liquid nitrogen under no additional pressure), group 7 (low-temperature preservation at $0^{\circ}C$ under pressure of 2 MPa), group 8 (low-temperature preservation at $0^{\circ}C$ under no additional pressure), group 9 (low-temperature preservation at $-5^{\circ}C$ under pressure of 90 MPa). F-medium and 10% DMSO were used as preservation medium and cryo-protectant. For cryo-preservation groups, thawing was performed in $37^{\circ}C$ water bath, then MTT assay, WST-1 assay were processed. One way ANOVA and Tukey HSD method were performed at the 95% level of confidence. The values of optical density obtained by MTT assay and WST-1 were divided by the values of eosin staining for tissue volume standardization. In both MTT and WST-1 assay, group 7 ($0^{\circ}C$/2 MPa) showed higher viability of periodontal ligament cells than other group (2-6, 8) and this was statistically significant (p < 0.05), but showed lower viability than group 1, immediate extraction group (no statistical significance). By the results of this study, low-temperature preservation at $0^{\circ}C$ under pressure of 2 MPa suggest the possibility for long term preservation of teeth.
Quality attributes of reconstructed pork patties with ISP were evaluated. Reconstructed pork patties with 30% meat plus ISP and 50% meat plus had significantly less cooking loss and dimensional changes than control. Sensory evaluation revealed patties with 30 or 50% meat had higher hardness and juiciness than control, patties with ISP, and patties with direct addition of ISP. Objective elasticities of patties with 30 or 50 % meat were high, whereas patties without ISP had higher values of hardness, gumminess, and chewiness. Color of patties with 30 or 50% meat were different from that of control. These result show addition of ISP to meat emulsion for pork patties markedly improved cooking loss, dimensional changes, hardness, and juiciness. When pork patties and cutlets prepared according to meat (30%) formula were frozen, cooking loss was significantly higher in slow-frozen patties, but freezing rate did not affect dimensional changes of patties and cutlets. Slow-frozen patties had higher hardness, but other textural properties were affected by the freezing rate. Quality of pork cutlets was not significantly changed by the freezing rate.
These experiments were carried out to examine the effect of rapid thawing (500$^{\circ}C$/min) on the survival of 8-cell mouse embryos cooled slowly (0.5-1$^{\circ}C$/min) to precooling temperatures between -10 and 070$^{\circ}C$ before direct transfer ofembryos to -196$^{\circ}C$, and to compare the survival of embroys thawed slowly (20$^{\circ}C$/min) and rapidly (500$^{\circ}C$/min) after in vitro culture. In addition, the sensitivity of 8-cell mouse embroys to the rate of addition and removal of cryoprotectant at room temperauture, and the effect of developing stages on the survival of embryos frozen-thawed slowly were investigated. The results obtained were summarized as follows: 1. Embryos were survived in rapid thawing (500$^{\circ}C$/min) only when slow cooling was terminated at relatively high subzero teperaure (-20 to -60$^{\circ}C$). The highest survival rate(77.0%) in in vitro culture of embryos thawed rapidly was obtaeined after transfer to -196$^{\circ}C$ from -40$^{\circ}C$. 2. For the survival of embryos in slow thawing (20$^{\circ}C$/min.), slow cooling to lower subzero temperature (-50$^{\circ}C$ and below) was required before transfer of embryos to -196$^{\circ}C$. These results indicate that embryos transferred to -196$^{\circ}C$ from high subzero temprature contain much interacellular ice to damage them during slow warming but to permit survival of embryos after rapid warming. 3. The Survival rate (72.7%) of 8-cell mouse embryos after rapid addition and removal of cryoprotectant, DMSO at room temperature was similar to that (83.9%) after slow addition and removal of cryoprotectant at same temperature. 4. The survival rates of 1-, 2-, 4- and 8-cell embryos frozen-thawed slowly were 26.7, 76.4, 70.0 and 83.9%, respectively.
Kim, Eun-Young;Lee, Keum-Sil;Shin, Hyun-Ah;Park, Sae-Young;Yoon, Ji-Yeon;Kil, Kwang-Soo;Lee, Young-Jae;Kim, Nam-Hyung;Chung, Kil-Saeng
Proceedings of the Korean Society of Developmental Biology Conference
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2003.10a
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pp.98-98
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2003
Recently, human embryonic stem (hES) cells have become very important resources for ES cell basic research, cell replacement therapy, and other medical applications; thus, efficient cryopreservation methods for these cells are needed. This study examined whether a newly developed minimum volume cooling (MVC) vitrification method, which was tested through cryopreservation of sensitive bovine oocytes, can be used for freezing hES cells. Feeder-free cultured hES cell (MB03) colonies were mechanically dissected into several small clumps following enzymatic treatment. We compared the freezing efficiency of a slow-cooling method using a cryo-module (0.4-0.6C/min, 20-30 clumps/vial) and MVC vitrification using a modified 0.5-ml French mini-straw designated as a MVC straw (>$20,000{\circ}C$/min, 10 clumps/straw) After thawing, in vitro survival of hES cell clumps was higher for MVC-vitrified cells (80.8%, 97/120) than for slow-cooled cells (38.2%, 39/102). Further, the proliferation rate of surviving MVC-vitrified cells was similar to that of control hES cells from 2 weeks after thawing. In addition, vitrified-thawed hES cells demonstrated a normal karyotype, were positively immunostained for surface marker antibodies (AP, SSEA-4 and TRA-1-60) and the Oct-4 antibody, and could differentiate into all three embryonic germ layer cells in vitro. This result demonstrates that hES cell clumps can be successfully cryopreserved by a newly developed MVC vitrification method without loss of human cell characteristics.
Vitrification has been suggested to be an effective method for the cryopreservation of human ES cells. However, the efficiency of vitrification with different vehicles remains a matter of ongoing controversy. The objective of this study was to assess the efficiency of cryopreservation in human ES cells by vitrification using different vehicles. A human ES cell line and a variety of vehicles, including micro-droplet (MD), open-pulled straw (OPS) and electron microscopic grid (EM-grid), were employed in an attempt to assess vitrification efficiency. In order to evaluate the survivability and the undifferentiated state of the post-vitrified human ES cells, we conducted alkaline phosphatase staining and characterization via both RT-PCR and immunofluorescence assays. The survival rates of the post-vitrified human ES cells using MD, OPS and EM-grid were determined to be 61.5%, 66.6% and 53.8%, respectively. There also exist significant differences between slow-freezing and vitrification (p<0.01). However, no significant differences were detected between the vehicle types. Finally, the pluripotency of human ES cells after thawing was verified by teratoma formation. Cryopreservation using vitrification is more effective than slow-freezing, and the efficiency of vehicles proved effective with regard to the preservation of human ES cells.
This studies were conducted to investigate the survival rate of frozen-thawed spermatozoa of Jindo Dog by monosaccharide and freezing rates. Experimental animals were prepared 12 males within 1~8 year's old and collected once in a couple of weeks by digital manuplation methods. Collected semen was diluted 1:1 with Tris-egg yolk extender and added 4, 6 or 8% of glycerol and none, 4 mM glucose or 4 mM fructose as cryoprotectant and was equilibrated for 2 hrs in $4^{\circ}C$. In monosaccharide groups, the freezing rate was 5 cm-5 min. above $LN_2$. The survival rates without monosaccharide were $50.7{\pm}19.0%$, $58.6{\pm}18.0%$, $40.0{\pm}10.0%$ in 4, 6 or 8% glycerol, respectively. In addition of glucose, the survival rates were $43.1{\pm}14.7%$, $38.1{\pm}16.5%$, $33.3{\pm}4.0%$ in 4, 6 or 8% glycerol, respectively and in fructose, were $47.9{\pm}21.1%$, $61.3{\pm}6.2%$, $34.3{\pm}12.6%$ in 4, 6 or 8% glycerol, respectively. There showed significantly different between glycerol groups and monosaccharides groups (p<0.05). The survival rates of freezing rate in 5 cm-5 min. group was $64.5{\pm}15.8%$, $51.9{\pm}27.6%$, $29.7{\pm}24.8%$ and in 10 cm-10 min. group was $62.5{\pm}20.3%$, $64.9{\pm}23.6%$, $34.5{\pm}27.4%$ in 4, 6 or 8% glycerol, respectively. There were significantly different between freezing rates (p<0.05). These results suggest that the addition of fructose with 6%-glycerol and slow freezing improve the survival of frozen-thawed sperm in Jindo Dog.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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