Hyun Lee;Na Rae Han;Seong Jae Kim;Jung Im Yun;Seung Tae Lee
International Journal of Stem Cells
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제15권3호
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pp.283-290
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2022
Background and Objectives: Difficulties often encountered in separating and purifying active muscle satellite cells (MSCs) from skeletal muscle tissues have limited the supply of cells for muscle therapy and artificial meat production. Here, we report an effective isolation protocol to economically and conveniently retrieve active MSCs from skeletal muscle tissues in mice. Methods and Results: We optimized an enzyme-based tissue digestion protocol for isolating skeletal muscle-derived primary cell population having a large number of active MSCs and described a method of differential plating (DP) for improving purity of active MSCs from skeletal muscle-derived primary cell population. Then, the age of the mouse appropriate to the isolation of a large number of active MSCs was elucidated. The best isolation yield of active MSCs from mouse skeletal muscle tissues was induced by the application of DP method to the primary cell population harvested from skeletal muscle tissues of 2-week-old mice digested in 0.2% (w/v) collagenase type II for 30 min at 37℃ and then in 0.1% (w/v) pronase for 5 min at 37℃. Conclusions: The protocol we developed not only facilitates the isolation of MSCs but also maximizes the retrieval of active MSCs. Our expectation is that this protocol will contribute to the development of original technologies essential for muscle therapy and artificial meat industrialization in the future.
Avian and mammalian skeletal muscles exhibit a remarkable ability to adjust to physiological stressors induced by growth, exercise, injury and disease. The process of muscle recovery following injury and myonuclear accretion during growth is attributed to a small population of satellite cells located beneath the basal lamina of the myofiber. Several metabolic factors contribute to the activation of satellite cells in response to stress mediated by illness, injury or aging. This review will describe the regenerative properties of satellite cells, the processes of satellite cell activation and highlight the potential role of satellite cells in skeletal muscle growth, tissue engineering and meat production.
Skeletal muscle tissues feature cellular heterogeneity, including differentiated myofibers, myoblasts, and satellite cells. Thanks to the presence of undifferentiated myoblasts and satellite cells, skeletal muscle tissues can self-regenerate after injury. In skeletal muscle regeneration, the collective motions among these cell types must play a significant role, but little is known about the dynamic collective behavior during the regeneration. In this study, we constructed in vitro platform to visualize the migration behavior of skeletal muscle cells in specific conditions that mimic the biochemical environment of injured skeletal muscles. We then visualized the spatiotemporal distribution of stresses arising from the differential collectiveness in the cellular clusters under different conditions. From these analyses, we identified that the heterogeneous population of muscle cells exhibited distinct collective migration patterns in the injury-mimicking condition, suggesting selective activation of a specific cell type by the biochemical cues from the injured skeletal muscles.
Laser irradiation is known to affect various tissues such as skin, bone, nerve, and skeletal muscle. Laser irradiation promotes ATP synthesis, facilitates wound healing, and stimulates cell proliferation and angiogenesis. In skeletal muscle, laser irradiation is related to the proliferation of skeletal muscle satellite cells. Normal skeletal muscle contains remodeling capacity from myogenic cells that are derived from mononuclear satellite cells. Their processes are activated by the expression of genes related with myogenesis such as muscle-specific transcription factors (MyoD and Myf5) and VEGF (vascular endothelial growth factor). In this study, we hypothesized that laser irradiation would enhance and regulate muscle cell proliferation and regeneration through modulation of the gene expressions related with the differentiation of skeletal muscle satellite cells. $C_2C_{12}$ myoblastic cells were exposed to continuous/non-continuous laser irradiation (660nm/808nm) for 10 minutes daily for either 1 day or 5 days. After laser irradiation, cell proliferation and gene expression (MyoD, Myf5, VEGF) were quantified. Continuous 660nm laser irradiation significantly increased cell proliferation and gene expression compared to control, continuous 808nm laser irradiation, and non-continuous 660nm laser irradiation groups. These results indicate that continuous 660nm laser irradiation can be applied to the treatment and regeneration of skeletal muscle tissue.
The loss of skeletal muscle, called sarcopenia, is an inevitable event during the aging process, and significantly impacts quality of life. Autophagy is known to reduce muscle atrophy caused by dysfunctional organelles, even though the molecular mechanism remains unclear. Here, we have discuss the current understanding of exercise-induced autophagy activation in skeletal muscle regeneration and remodeling, leading to sarcopenia intervention. With aging, dysregulation of autophagy flux inhibits lysosomal storage processes involved in muscle biogenesis. AMPK-ULK1 and the $FoxO/PGC-1{\alpha}$ signaling pathways play a critical role in the induction of autophagy machinery in skeletal muscle, thus these pathways could be targets for therapeutics development. Autophagy has been also shown to be a critical regulator of stem cell fate, which determines satellite cell differentiation into muscle fiber, thereby increasing muscle mass. This review aims to provide a comprehensive understanding of the physiological role of autophagy in skeletal muscle aging and sarcopenia.
The objective of this study was to establish the optimum protocol for the isolation and culture of porcine muscle satellite cells. Mononuclear muscle satellite cells are a kind of adult stem cell, which is located between the basal lamina and sarcolemma of muscle fibers and is the primary source of myogenic precursor cells in postnatal muscle. Muscle satellite cells are a useful model to investigate the mechanisms of muscle growth and development. Although the isolation and culture protocols of muscle satellite cells in some species (e.g. mouse) have been established successfully, the culture system for porcine muscle satellite cells is very limited. In this study, we optimized the isolation procedure of porcine muscle satellite cells and elaborated the isolation and culture process in detail. Furthermore, we characterized the porcine muscle satellite cells using the immunofluorecence. Our study provides a reference for the isolation of porcine muscle satellite cells and will be useful for studying the molecular mechanisms in these cells.
한우의 성장단계별 부위 근육발달을 이해하는 것은 도체율 개선에 따른 소득증대와 증체율 증가에 따른 생산효율 향상에 긍정적인 영향을 미친다. 본 연구에서는 한우의 등심과 사태 유래 근육위성세포를 분리 후 세포단위의 발달 및 분화를 비교하여 transcriptome 단위의 작용기전을 제시하였다. 한우의 부위별 근육 유래 근육위성세포의 근섬유의 양은 4일에 가장 높게 나타났고 이후 감소하였다. 한우의 근육위성세포의 발달 단계에 따라 발현되는 총 전사체 유전자의 종류는 사태근육 위성세포에서 높게 나타났다. 등심과 사태 근육 유래 위성세포의 발달단계에 따라 유의적인 차등 유전자 453개를 찾아냈고 이를 이용한 기능유 전체 분석이 필요하다. 등심과 사태유래 근육위성세포를 이용한 동일조건 분화 비교에서 사태유래 근육 위성세포의 분화 시 myosin complex, skeletal muscle contraction, troponin complex, skeletal muscle tissue development 와 같은 근섬유 형성관련 유전자의 발현이 높게 나타나는 것으로 보아 같은 개체의 근육조직에서도 부위별로 차등 발달이 되고 있다는 것을 알 수 있다. 기존 연구에서는 근육의 성장에 대한 이해를 위해 사양과 영양관련 시험이 많이 이루어졌다. 향후 세포단위의 연구들이 많이 이루어져 작용기작에 대한 생물정보 자료를 추가로 적용한다면 한우의 정밀사양을 적용할수 있는 바탕이 마련될 것이다. 또한 근육위성세포의 연구는 추후 동물실험 윤리제도 강화에 따른 비동물 전임상 screening 시험 활용과 대체단백질 산업의 주요 이슈인 배양육 소재 개발 연구와 같이 축산시험연구의 지속적인 확장성에 많은 영향을 미칠 것으로 생각된다.
Purpose : The purpose of this article was to review the literature on contractile properties of skeletal muscle with reference to its molecular and functional diversity. Method : This review outlines scientific findings regarding different contractile properties in skeletal muscle fibers, and discusses their involvement in functional diversity. Result & Conclusions: Muscle fibers possess distinct mechanical and energetic properties. Myosis, one of the primary contractile muscle proteins, displays structural, functional variability and plays the role of the molecular motor of muscle contraction. Muscle satellite cells are normally mitotically quiescent, but initiate proliferation and give rise to daughter myogenic precursor cells as required for the postnatal growth and regeneration of adult muscle. Passive extensibility is an important component of total muscle function because it allows for the maximal length of skeletal muscles. Proprioceptive neuromuscular facilitation(PNF) stretching can help to restore or improve flexibility and coordination, thereby improving overall muscle function.
Objective: Skeletal muscle satellite cells (SMSCs) are significant for the growth, regeneration, and maintenance of skeletal muscle after birth. However, currently, few studies have been performed on the isolation, culture and inducing differentiation of goose muscle satellite cells. Previous studies have shown that C1q and tumor necrosis factor-related protein 3 (CTRP3) participated in the process of muscle growth and development, but its role in the goose skeletal muscle development is not yet clear. This study aimed to isolate, culture, and identify the goose SMSCs in vitro. Additionally, to explore the function of CTRP3 in goose SMSCs. Methods: Goose SMSCs were isolated using 0.25% trypsin from leg muscle (LM) of 15 to 20 day fertilized goose eggs. Cell differentiation was induced by transferring the cells to differentiation medium with 2% horse serum and 1% penicillin streptomycin. Immunofluorescence staining of Desmin and Pax7 was used to identify goose SMSCs. Quantitative realtime polymerase chain reaction and western blot were applied to explore developmental expression profile of CTRP3 in LM and the regulation of CTRP3 on myosin heavy chains (MyHC), myogenin (MyoG) expression and Notch signaling pathway related genes expression. Results: The goose SMSCs were successfully isolated and cultured. The expression of Pax7 and Desmin were observed in the isolated cells. The expression of CTRP3 decreased significantly during leg muscle development. Overexpression of CTRP3 could enhance the expression of two myogenic differentiation marker genes, MyHC and MyoG. But knockdown of CTRP3 suppressed their expression. Furthermore, CTRP3 could repress the mRNA level of Notch signaling pathway-related genes, notch receptor 1, notch receptor 2 and hairy/enhancer-of-split related with YRPW motif 1, which previously showed a negative regulation in myoblast differentiation. Conclusion: These findings provide a useful cell model for the future research on goose muscle development and suggest that CTRP3 may play an essential role in skeletal muscle growth of goose.
본 연구는 소의 부위별 근육에 특이하게 발현하는 유전자 마커를 발굴하여 소고기의 부위를 과학적으로 판명할 수 있는 기술을 개발하고자 실시하였다. 이러한 연구 목표 아래 먼저 사태(Beef shank), 등심(Longissimus dorsi), 양지(Deep pectoral), 홍두깨(Semitendinosus) 부위의 근육조직에서 MSC (myogenic satellite cell, 근육줄기세포)를 순수 분리하고 이를 MFC (myotube-formed cell; 근관이 형성된 세포)로 분화시키거나 ALC (adipocyte-like cell; 지방세포와 유사한 세포)로 이형분화 시킨 후 3가지의 세포로 부터 각각의 RNA를 추출하였다. 이렇게 추출한 RNA는 24,000개의 bovine oligo-nucelotide (70 mer)가 집적된 microarray를 이용해 4개의 조직 중 1개의 조직에서만 MSC의 분화(MFC) 또는 이형분화 과정에서 mRNA의 발현이 증감을 보이는 유전자 135개를 먼저 발굴하였다. 135개의 유전자에 대해 microarray 분석에 사용한 동일한 RNA를 이용하여 real-time PCR 기술로 검증한 결과 총 29개의 유전자가 microarray 분석 결과와 유사함을 보였다. 29개의 유전자를 다시 4개 부위의 생체 조직에서 추출한 RNA를 이용해 real-time PCR 방법으로 분석한 결과 TS (thymi- dlyate synthase), TE (tropoelastin), RAD52(similar RAD52 motifcontaining protein 1), unknown gene), MLC2 (myosin light 2, regulatory cardiac, slow), TXNIP (thioredoxin-interating protein) 6개의 유전자만이 다른 부위에 비해 사태 부위에서 현저한 발현의 차이를 나타냈다. 결론적으로 본 연구를 통해 소 부위별 근육을 구분할 수 있는 과학적 기술의 토대를 확립하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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