In order to study the role of residue in the active site of glutathione S-transferase (GST), Arg13 residue in human GST P1-1 was replaced with alanine, lysine and leucine by site-directed mutagenesis to obtain mutants R13A, R13K and R13L. These three mutant enzymes were expressed in Escherichia coli and purified to electrophoretic homogeneity by affinity chromatography on immobilized GSH. Mutation of Arg13 into Ala caused a substantial reduction of the specific activity by 10-fold. Km GSH, Km DCNB and Km EPNP values of R13A were approximately 2-3 fold larger than those of the wild type. Mutation of Arg13 into Ala also significantly affected I50 values of S-methyl-GSH that compete with GSH and ethacrynic acid, an electrophilic substrate-like compound. These results appeared that the substitution of Arg13 with Ala resulted in significant structural change of the active site. Mutation of Arg13 into Leu reduced the catalytic activity by approximately 2-fold, whereas substitution by Lys scarcely affected the activity, indicating the significance of a positively charged residue at position 13. Therefore, arginine 13 participates in catalytic activity as mainly involved in the construction of the proper electrostatic field and conformation of the active site in human GST P1-1.
Park, Inshik;Kim, Eun-Ae;Bang, Keuk-Seung;Kim, Seok-Hwan;Kim, Gi-Nahm;Lee, Min-Kyung;Kil, Ji-Oeun
Preventive Nutrition and Food Science
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제6권1호
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pp.79-81
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2001
Deoxynucleoside kinases exist as heterodimeric pairs specific for deoxyadenosine/deoxyguanosine kinase (dAK/dGK) and deoxyadenosine/deoxycytidine kinase (dAK/dCK). The aspartic acid-84 in dGK was mutated to alanine, asparagine and glutamic acid by site-directed mutagenesis. The mutation resulted in a drastic decease in dGK activity compared to the unmodified cloned enzyme while it increased production of dAK activity. The mutated dak/dgk genes, which synthesize tandem deoxyadenosine/deoxyguanosine kinase, were inserted back to the Lactobacillus acidophilus and Lactococcus lactis by electroporation to determine the effect of site-directed mutation of he enzymes on the microbial growth. However, no significant change was observed in cell growth and lactic acid production between wild type and mutant lactic acid bacteria.
Site directed mutagenesis has been introduced to determine active site(s) and molecular structure of E. coli RecA protein. Recombinant DNAs were constructed by point mutation of Tyr-264 to Phe which assumed active site for binding and hydrolysis of ATP. RecA proteins were purified from recombinants containing wild type and mutant genes and analyzed for ATPase activity assay. Result suggests that Tyr-264 is involved in ATP binding rather than ATP hydrolysis.
본 연구는 돼지에서 성장호르몬과 결합되는 부위에 변이를 유도하여 결합력이 향상된 성장호르몬 결합단백질을 획득하기 위하여 수행되었다. 돼지의 지방으로부터 얻은 성장호르몬 수용체 RNA 내 성장호르몬 결합단백질 부분을 756 bp의 cDNA로 전향하고 클로닝한 후 site-directed mutagenesis 방법을 이용하여 26과 122번째 아미노산을 변이시켰다. 26번째 아미노산은 성장 호르몬과의 결합에 관련이 있다고 알려져 있는 돼지 성장호르몬 수용체 외막에 존재하는 다섯 군데의 N-linked glycosylation 부위와 가까이 위치한 부분이고, 122번째 아미노산은 소에서의 결합부위로 알려져 있다. 이렇게 변이를 유도한 성장호르몬 결합 단백질을 pET-32(c) 발현벡터에 삽입시키고 과발현시켰고 이를 정제하여 30 kDa의 변이를 유도한 성장호르몬 결합 단백질을 얻었다. 이러한 방법으로 성장호르몬 결합 단백질을 성장기에 있는 세포나 동물에 주입한다면 보다 향상된 성장을 볼 수 있을 것으로 사료된다.
The alginate lyase A1-III gene of Sphingomonas species A1 is composed of 1,077 nucleotides, encoding a protein (359 amino acids) with a molecular mass of 40,322 Da. Recombinant A1-III expressed in Escherichia coli exhibited the same full enzymatic activity as native A1-III. In order to identify the critical residue for activity, a site-directed mutation was introduced into the A1-III gene (H192A, His192->Ala). Recombinant A1-III (H192A) exhibited a significant decrease in enzyme activity (one-thirty thousandth of that of A1-III), without any conformational change, as detected by the CD spectra in the far UV region. Also, the chemical modification of wild-type A1-III with methyl 4-nitro benzene sulfonate resulted in a 40% decrease from the initial activity, whereas the same modification of A1-III (H192A) produced no change in the activity. The role of His192 on the catalytic process was also explored based on a model of A1-III docked with mannuronic acid into the active site.
In an attempt to shift the optimal pH of the xylanase B (XynB) from Aspergillus niger towards alkalinity, target mutation sites were selected by alignment between Aspergillus niger xylanase B and other xylanases that have alkalophilic pH optima that highlight charged residues in the eight-residues-longer loop in the alkalophilic xylanase. Multiple engineered XynB mutants were created by site-directed mutagenesis with substitutions Q164K and Q164K+D117N. The variant XynB-117 had the highest optimum pH (at 5.5), which corresponded to a basic 0.5 pH unit shift when compared with the wild-type enzyme. However, the optimal pH of the XynB-164 mutation was not changed, similar to the wild type. These results suggest that the residues at positions 164 and 117 in the eight-residues-longer loop and the cleft's edge are important in determining the pH optima of XynB from Aspergillus niger.
dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase as an oxidoreductase catalyzes the conversion of dTDP-D-glucose to dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose, which is essential for the formation of 6-deoxysugars. dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase shows remarkable sterochemical convergence in which displacement of the C-6 hydroxyl group by a C-4 hydrogen proceeds intramolecularly with inversion of configuration. The reaction mechanism is known to be oxidation, dehydration, and reduction by bases mediating proton transfer and $NAD^+$ cofactor. In this study, the bases in the active site domain are proposed to be His-79 and His-300 from a comparison of the peptides of the dehydratase and UDP-D-glucose epimerase. His-79 and His-300 were mutated to prepare the mutants H79L (mutation of histidine to leucine at the 79th amino acid) and H300A (mutation of histidine to alanine at the 300th amino acid) by site-directed mutagenesis. The H79L protein was inactive, showing that His-79 participates in the reaction mechanism.
Kim, Sung-Ho;Park, En-Joung;Yoon, Sung-Sook;Choi, Jung-Do
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제24권12호
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pp.1799-1804
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2003
Acetolatate synthase(ALS) catalyzes the first common step in the biosynthesis of valine, leucine, isoleucine in plants and microorganisms. ALS is the target of several classes of herbicides, including the sulfonylureas, the imidazolinones, and the triazolopyrimidines. To elucidate the roles of arginine residues in tobacco ALS, chemical modification and site-directed mutagenesis were performed. Recombinant tobacco ALS was expressed in E. coli and purified to homogeneity. The ALS was inactivated by arginine specific reagents, phenylglyoxal and 2,3-butanedione. The rate of inactivation was a function of the concentration of modifier. The inactivation by butanedione was enhanced by borate, and the inactivation was reversible on removal of excess butanedione and borate. The substrate pyruvate and competitive inhibitors fluoropyruvate and phenylpyruvate protected the enzyme against inactivation by both modifiers. The mutation of well-conserved Arg198 of the ALS by Gln abolished the enzymatic activity as well as the binding affinity for cofactor FAD. However, the mutation of R198K did not affect significantly the binding of FAD to the enzyme. Taken together, the results imply that Arg198 is essential for the catalytic activity of the ALS and involved in the binding of FAD, and that the positive charge of the Arg is crucial for the interaction with negatively charged FAD.
When quiescent cells ate stimulated to enter the cell cycle, the thymidine kinase(TK) gene is transcriptionally activated at the border of Gl and 5. In this report we show that the human TK promoter contains multiple protein-binding sites. By site-directed mutagenesis, we identified a protein-binding site on the human TK promoter requited for conferring Gl-S-regulated transcription to a heterologous promoter and dissociated it functionally from an adjacent protein-binding domain containing an inverted CCAAT motif requited for high basal level expression. Substitution-mutation of this site results in constitutive expression of the neo reporter gene in serum-stimulated fibroblasts, as well as in cells arrested in mid-Gl by a temperature-sensitive mutation. The regulatory domains for the human TK promoter exhibit interesting symmetrical features, including a set of CCAAT motifs and sites similar to the novel Yi protein-binding site recently discovered in the mouse TK promoter. Thus, components of the hTK complex is important for hTK gene regulation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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