Nitric oxide (NO) produced from endothelial cells plays a critical role in vascular physiology. The regulation of endothelial NO synthase (eNOS) involves various mechanisms including multiple Ser/Thr phosphorylations. Recently, eNOS-Ser617 was newly recognized to be phosphorylated in response to humoral factors including vascular endothelial growth factor. However, it remains unknown whether and how eNOS-Ser617 phosphorylation is stimulated by shear stress, the primary stimulus of endothelial NO production. This issue was explored in the present study using cultured bovine aortic endothelial cells (BAECs). Over-expression of a constitutively active protein kinase B(Akt) mutant in BAECs increased Ser617 phosphorylation while constitutively active protein kinase A mutant had no effect. When BAECs were subjected to an arterial level of laminar shear stress, eNOS-Ser617 phosphorylation was clearly increased in a time-dependent manner. Shear stress also stimulated Akt phosphorylation at Thr308, one of the key regulatory sites. The time courses of eNOS-Ser617 and Akt-Thr308 phosphorylations appeared to be very similar. These results suggested that eNOS-Ser617 phosphorylation, mediated by Akt, is a physiological response to the mechanical shear stress, involved in the regulation of NO production in endothelial cells.
Kim, Youn-Uck;Kim, Youn-Hwoan;An, Duek -Jun;Kwon, Hyuk-Chu
Journal of Microbiology
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제39권4호
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pp.314-320
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2001
Macrophages stimulated by lipopolysaccharide(LPS) from gram negative bacteria undergo activation of a group of immediate early genes including Rantes. The mouse Rantes gene promoter region contains an LPS rsponsive element(LPE) We detected 3 specific bands termed B1, B2 and 3 formed by the interaction of the LPE and proteins found in LPS-stimulated RAW 367.7 cells. An additional band B4 was determined to be an Ap-1 binding protein. The B1 band appears within 1 hour of LPS nuclear extracts from LPS-stimulation, and this protein kinase enhances B1 and formation. The B1 band can be converted to band B2/B3 by adding specific heparin column fraction purified Ser/Thr specific protein phosphatases PP-1 and PP-2A can stimulate the same conversion to about the same extent. Thus, the formation of the LRE sequence binding complex appears to be regulated by Ser/Thr protein kinase and one or more Ser/Thr specific phosphatases. At least four proteins are involved in the trgulation of the LRE-dependent Rants experssion: two binding factors that bind directly to the target sequences. and two factors that control their binding. The future purification and characterization of these binding pro-teins will reveal in detail the mechanism of Rantes gene activation after LPS stimulation.
The dephosphorylation specificity of protein phosphatase 2A (PP2A), calcineurin (PP2B) and protein phosphatase 2C (PP2C) were studied in vitro using myelin basic protein (MBP) as a model substrate which was fully phosphorylated at multiple sites by protein kinase C (PKC) or cyclic AMP-dependent protein kinase (PKA). In order to determine the site specificity of phosphates in myelin basic protein, the protein was digested with trypsin and the radioactive phosphopeptide fragments were isolated by high performance liquid chromatography (HPLC) on reversed-phase column. Subsequent analysis and/or sequential manual Edman degradation of the purified phosphopeptides revealed that Thr-65 and Ser-115 were most extensively phophorylated by PKA and Ser-55 by PKC. For the dephosphorylation kinetics, the phosphorylated MBP was treated with calcineurin or PP2C with various time intervals and the reaction was terminated by direct tryptic digest. Both Thr-65 and Ser-115 residues were dephosphorylated more rapidly than any other ones by phosphatases. However it can be differentiated further by first-order kinetics that the PP2B dephosphorylated both Thr-65 and Ser-115 with almost same manner, whereas PP2C dephosphorylated somewhat preferentially the Ser-115.
Overexpression of amyloid precursor protein with the Swedish mutation causes abnormal hyperphosphorylation of the microtubule-associated protein tau. Hyperphosphorylated isoforms of tau are major components of neurofibrillary tangles, which are histopathological hallmarks of Alzheimer's disease. Protein phosphatase 2A (PP2A), a major tau protein phosphatase, consists of a structural A subunit, catalytic C subunit, and a variety of regulatory B subunits. The B subunits have been reported to modulate function of the PP2A holoenzyme by regulating substrate binding, enzyme activity, and subcellular localization. In the current study, we characterized regulatory B subunit-specific regulation of tau protein phosphorylation. We showed that the PP2A B subunit PPP2R2A mediated dephosphorylation of tau protein at Ser-199, Ser-202/Thr-205, Thr-231, Ser-262, and Ser-422. Down-regulation of PPP2R5D expression decreased tau phosphorylation at Ser-202/Thr-205, Thr-231, and Ser-422, which indicates activation of the tau kinase glycogen synthase kinase 3 beta ($GSK3{\beta}$) by PP2A with PPP2R5D subunit. The level of activating phosphorylation of the $GSK3{\beta}$ kinase Akt at Thr-308 and Ser-473 were both increased by PPP2R5D knockdown. We also characterized B subunit-specific phosphorylation sites in tau using mass spectrometric analysis. Liquid chromatography-mass spectrometry revealed that the phosphorylation status of the tau protein may be affected by PP2A, depending on the specific B subunits. These studies further our understanding of the function of various B subunits in mediating site-specific regulation of tau protein phosphorylation.
Protein kinase CKII (CKII) is a protein Ser/Thr kinase that is ubiquitously distributed in eukaryotic cells. Although it has been suggested that CKII plays an critical role in cell growth and proliferation, its functional significance and regulation in the cells remain poorly understood. To investigate the exact biological function of CKII, we have identified proteins that interact with the subunits of CKII using the twohybrid system. In this report, we have identified cathepsin L, a lysosomal protease, as a cellular protein capable of interacting with the ${\beta}$ subunit of CKII. Cathepsin L does not interact with the ${\alpha}$ subunit of CKII, supporting the idea that the ${\beta}$ subunit can mediate the interaction of CKII with target proteins. We have found that cathepsin L has several putative CKII phosphorylation sites including Thr-84, Ser-160, Ser-270, Thr-288, and Ser-301. These data suggest that CKII is a possible protein kinase for cathepsin L phosphorylation.
PKR-like endoplasmic reticulum (ER) kinase (PERK) is a type I transmembrane ER-resident protein containing a cytoplasmic catalytic domain with a Ser/Thr kinase activity, which is most closely related to the eukaryotic translation initiation factor-$2{\alpha}$ ($eIF2{\alpha}$) kinase PKR involved in the antiviral defense pathway by interferon. We cloned and expressed the PERK C-terminal kinase domain (cPERK) in Escherichia coli. Like PERK activation in cells under ER stress, wild-type cPERK underwent autophosphorylation when overexpressed in E. coli, whereas the cPERK(K621M) with a methionine substitution for the lysine at amino acid 621 lost the autophosphorylation activity. The activated form cPERK which was purified to near homogeneity, formed an oligomer and was able to trans-phosphorylate specifically its cellular substrate $eIF2{\alpha}$. Two-dimensional phosphoamino acids analysis revealed that phosphorylation of cPERK occurs at the Ser and Thr residues. The functionally active recombinant cPERK, and its inactive mutant should be useful for the analysis of biochemical functions of PERK and for the determination of their three-dimensional structures.
Integrin-linked kinase 1 (ILK1) regulates several protein kinases, including PKB/Akt kinase and glycogen synthase kinase ${\beta}$. ILK1 is also involved distinctively in the cell morphological and structural functions by interacting with the components of the extracellular matrix or integrin. According to the information of serum- and glucocorticoid-induced kinase 1 (SGK1) substrate specificity (R-X-R-X-X(S/T)-${\phi};{\phi}$ indicates a hydrophobic amino acid), two putative phosphorylation sites, $Thr^{181}\;and\;Ser^{246}$, were found in ILK1. We showed that ILK1 fusion protein and two fluorescein-labeled ILK1 peptides, $FITC-^{174}RTRPRNGTLN^{183}$ and $FITC-^{239}CPRLRIFSHP^{248}$, were phosphorylated by SGK1 in vitro. We also identified that 14-3-3 ${\theta}\;{\varepsilon}\;and\;{\xi}$, among several 143-3 isotypes $({\beta},\;{\gamma},\;{\varepsilon},\;{\eta},\;{\sigma},\;{\theta},\;{\tau}\;and\;{\xi})$ formed protein complex with ILK1 in COS-1 cells. Furthermore, the phosphorylation of $Ser^{246}$ by SGK1 induced the binding with 14-3-3. It was also demonstrated that 14-3-3-bound ILK1 has reduced kinase activity. Thus, these data suggest that SGK1 phosphorylates $Thr^{181}\;and\;Ser^{246}$ of ILK1 and the phosphorylation of its $Ser^{246}$ makes ILK1 bind to 14-3-3, resulting in the inhibition of ILK1 kinase activity.
Glycogen synthase kinase-3β (GSK-3β) is an important serine/threonine kinase that implicates in multiple cellular processes and links with the neurodegenerative diseases including Alzheimer's disease (AD). In this study, structure-based virtual screening was performed to search database for compounds targeting GSK-3β from Enamine's screening collection. Of the top-ranked compounds, 7 primary hits underwent a luminescent kinase assay and a cell assay using human neuroblastoma SH-SY5Y cells expressing Tau repeat domain (TauRD) with pro-aggregant mutation ΔK280. In the kinase assay for these 7 compounds, residual GSK-3β activities ranged from 36.1% to 90.0% were detected at the IC50 of SB-216763. In the cell assay, only compounds VB-030 and VB-037 reduced Tau aggregation in SH-SY5Y cells expressing ΔK280 TauRD-DsRed folding reporter. In SH-SY5Y cells expressing ΔK280 TauRD, neither VB-030 nor VB-037 increased expression of GSK-3α Ser21 or GSK-3β Ser9. Among extracellular signal-regulated kinase (ERK), AKT serine/threonine kinase 1 (AKT), mitogen-activated protein kinase 14 (P38) and mitogenactivated protein kinase 8 (JNK) which modulate Tau phosphorylation, VB-037 attenuated active phosphorylation of P38 Thr180/ Tyr182, whereas VB-030 had no effect on the phosphorylation status of ERK, AKT, P38 or JNK. However, both VB-030 and VB-037 reduced endogenous Tau phosphorylation at Ser202, Thr231, Ser396 and Ser404 in neuronally differentiated SH-SY5Y expressing ΔK280 TauRD. In addition, VB-030 and VB-037 further improved neuronal survival and/or neurite length and branch in mouse hippocampal primary culture under Tau cytotoxicity. Overall, through inhibiting GSK-3β kinase activity and/or p-P38 (Thr180/Tyr182), both compounds may serve as promising candidates to reduce Tau aggregation/cytotoxicity for AD treatment.
Mitogen- and stress-activated protein kinase (MSK1) palys a crucial role in the regulation of transcription downstream of extracellular-signal-regulated kinase1/2 (ERK1/2) and mitogen-activated protein kinase p38. MSK1 can be phosphorylated and activated in cells by both ERK1/2 and p38$\alpha$. In this study, Casein Kinase 2 (CK2) was identified as a binding and regulatory partner for MSK1. Using the yeast two-hybrid system, MSK1 was found to interact with the CK2$\beta$ regulatory subunit of CK2. Interactions between MSK1 and the CK2$\alpha$ catalytic subunit and CK2$\beta$ subunit were demonstrated in vitro and in vivo. We further found that CK2$\alpha$ can only interact with the C-terminal kinase domain of MSK1. Using site-directed mutagenesis assay and mass spectrometry, we identified five sites in the MSK1 C-terminus that could be phosphorylated by CK2 in vitro: Ser757, Ser758, Ser759, Ser760 and Thr793. Of these, Ser757, Ser759, Ser760 and Thr793 were previously unknown.
The DevSR (DosSR) two-component system, which is a major regulatory system involved in oxygen sensing in mycobacteria, plays an important role in hypoxic induction of many genes in mycobacteria. We demonstrated that overexpression of the kinase domain of Mycobacterium tuberculosis (Mtb) PknB inhibited transcriptional activity of the DevR response regulator in Mycobacterium smegmatis and that this inhibitory effect was exerted through phosphorylation of DevR on Thr180 within its DNA-binding domain. Moreover, the purified kinase domain of Mtb PknB significantly phosphorylated RegX3, NarL, KdpE, TrcR, DosR, and MtrA response regulators of Mtb that contain the Thr residues corresponding to Thr180 of DevR in their DNA-binding domains, implying that transcriptional activities of these response regulators might also be inhibited when the kinase domain of PknB is overexpressed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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