The non-viral delivery of genes into macrophages, known as hard-to-transfect cells, is a challenge. In this study, the microporation of a CpG-free and small plasmid (pCGfd-GFP) showed high transfection efficiency, sustainable transgene expression, and good cell viability in the transfections of Raw 264.7 and primary bone marrow-derived macrophages. The non-viral method using the pCGfd vector encoding anti-EGFR single-chain Fv fused with Fc (scFv-Fc) generated the macrophages secreting anti-EGFR scFv-Fc. These macrophages effectively phagocytized tumor cells expressing EGFR through the antibody-dependent mechanism, as was proved by experiments using EGFR-knockout tumor cells. Finally, peri-tumoral injections of anti-EGFR scFv-Fc-secreting macrophages were shown to inhibit tumor growth in the xenograft mouse model.
Glucose oxidase (GOD) is an oxidoreductase catalyzing the reaction of glucose and oxygen to peroxide and gluconolacton (EC 1.1.3.4.). GOD is a widely used enzyme in biotechnology. Therefore the production of monoclonal antibodies and antibody fragments to GOD are of interest in bioanalytics and even tumor therapy. We describe here the generation of a panel of monoclonal antibodies to native and heat inactivated GOD. One of the hybridomas, E13BC8, was used for cloning of a single chain antibody(scFv). This scFv was expressed in Escherichia coli XL1-blue with the help of the vector system pOPE101. The scFv was isolated from the periplasmic fraction and detected by western blotting. It reacts specifically with soluble active GOD but does not recognize denatured GOD adsorbed to the solid phase. The same binding properties were also found for the monoclonal antibody E13BC8.
Retrovirus tropism can be restricted by host cell factors such as Fv1, TRIM5${\alpha}$, and LvI that inhibit infection by targeting the incoming viral capsid. The Fv1 gene inhibits murine leukemia virus infection in mice, but the precise mechanism of Fv1-mediated restriction is poorly understood. Our previous studies had demonstrated that Fv1-mediated viral tropism can be determined within the capsid protein at position 114. To study the interaction between Fv1 and CA, we introduced amino acid substitution and deletion at this site in the N-tropic AKV capsid gene. The mutated two-LTR proviral DNAs were introduced into SC-1 cells by transfection. After transfection, cell supernatants collected from transfected cells were tested for host range susceptibility. The result indicated that substitution of amino acids did not alter tropism, but the deletion of 114His produced a virus with unusual tropism. The novel phenotype produced here failed to replicate in Fv1-expressing cells. This mutant virus showing such an extreme restriction pattern would be useful for studying the mechanism of Fv1-mediated restriction.
Although smallpox was eradicated in 1980, it is still considered a potential agent of biowarfare and bioterrorism. Smallpox has the potential for high mortality rates along with a major public health impact, eventually causing public panic and social disruption. Passive administration of neutralizing monoclonal antibodies (mAbs) is an effective intervention for various adverse reactions caused by vaccination and the unpredictable nature of emerging and bioterrorist-related infections. Currently, vaccinia immune globulin (VIG) is manufactured from vaccinia vaccine-boosted plasma; however, this production method is not ideal because of its limited availability, low specific activity, and risk of contamination with blood-borne infectious agents. To overcome the limitations of VIG production from human plasma, we isolated two human single-chain variable fragments (scFvs), (SC34 and SC212), bound to vaccinia virus (VACV), from a scFv phage library constructed from the B cells of VACV vaccine-boosted volunteers. The scFvs were converted to human IgG1 (VC34 and VC212). These two anti-VACV mAbs were produced in Chinese Hamster Ovary (CHO) DG44 cells. The binding affinities of VC34 and VC212 were estimated by competition ELISA to $IC_{50}$ values of $2{\mu}g/ml$ (13.33 nM) and $22{\mu}g/ml$ (146.67 nM), respectively. Only the VC212 mAb was proven to neutralize the VACV, as evidenced by the plaque reduction neutralization test (PRNT) result with a $PRNT_{50}$ of ~0.16 mg/ml (${\sim}1.07{\mu}M$). This VC212 could serve as a valuable starting material for further development of VACV-neutralizing human immunoglobulin for a prophylactic measure against post-vaccination complications and for post-exposure treatment against smallpox.
An antibody containing a genetically engineered lipid group at the N-termunus and a hexahistidinyl tag at the C-terminus (Lpp-scF-His6) was immobilized in an oriented manner on the surface of liposome. Liposomes, consisting of antibody and phosphatidyl-choline, have been prepared and imaged by AFM. For AFM visualization, the resulting liposomes were bound on the surface of mica by two different mechanisms. The histidine tags present in the antibody molecules of the immonuliposome were anchored to the NiCl2 treated mica surface. Alternatively, the immunoliposomes were immunochemically bound on antigen-coated mica surface. Both approaches yielded liposomes which were clearly imaged without damage by AFM in ambient condition.
Song Jeong-Wha;Won Jae-Seon;Lee Yong-Chan;Choe Mu-Hyeon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제16권7호
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pp.1104-1110
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2006
Recombinant antibody-toxin is a bifunctional protein that binds and kills a target cell expressing a specific antigen on the surface of the cell, and its structure is chimeric, in which a toxin is fused to an antigen-binding domain such as scFv or Fab. Divalent antibody-toxin molecules showed higher cytotoxicities against cancer cell lines than monovalent molecules. However, the yields of the divalent molecules were very low. In this study, we introduced the CH2, CH3, or CH2-CH3 (=Fc) domain of antibody in the middle of the Fab-toxin between the hinge region of human IgG1 and the toxin domain to increase the yield. The covalently bonded dimer could be formed by three disulfide bridges from cysteine residues in the hinge region. The molecule with the CH3 domain showed about 3-fold higher dimerization yield than previously constructed Fab-toxin molecules, while maintaining the cytotoxic activity comparable to that of scFv-toxin. However, the introduction of CH2 or Fc domain to the same position showed little effect on the dimerization yield. We also observed that the introduction of the CH3 region made it possible to form noncovalently associated dimer molecules.
Park, Tae-Jung;Park, Jong-Pil;Lee, Seok-Jae;Hong, Hyo-Jeong;Lee, Sang-Yup
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제11권2호
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pp.173-177
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2006
In this study, a novel strategy was developed for the highly selective immobilization of proteins, using the polyhydroxyalkanoate (PHA) depolymerase substrate binding domain (SBD) as an active binding domain. In order to determine the appropriacy of this method for immunodiagnostic assays, the single-chain antibody (ScFv) against the hepatitis B virus (HBV) preS2 surface protein and the severe acute respiratory syndrome coronavirus (SARS-CoV) envelope protein (SCVe) were fused to the SBD, then directly immobilized on PH A-coated slides via microspotting. The fluorescence-labeled HBV antigen and the antibody against SCVe were then utilized to examine specific interactions on the PHA-coated surfaces. Fluorescence signals were detected only at the spotted positions, thereby indicating a high degree of affinity and selectivity for their corresponding antigens/antibodies. Furthermore, we detected small amounts of ScFv-SBD (2.7 ng/mL) and SCVe-SBD fusion proteins (0.6ng/mL). Therefore, this microarray platform technology, using PHA and SBD, appears generally appropriate for immunodiagnosis, with no special requirements with regard to synthetic or chemical modification of the biomolecules or the solid surface.
Recombinant immunotoxins are hybrid cytotoxic proteins designed to selectively kill cancer cells. A divalent immunotoxins, [B3(FabH1)-PE38]2, was constructed by recombining Fab domain of B3 antibody as a cell-targeting domain and Pseudo monas exotoxin A (PE) as a cytotoxic domain. Monoclonal antibody, B3, is the murine antibody (IgG1k) directed against Lewis Y-related carbohydrate antigens, which are abundant on the surface of many carcinomas. Fab fragment of this antibody was used in this study with the modified hinge sequence where last two cysteines out of three were mutated to serine. PE is a 66 kDa bacterial toxin that kills eukaryotic cells by inhibiting protein synthesis with ADP ribosylation of ribosomal elongation factor 2 (EF2). Fc region of B3 antibody was substituted with the truncated form of PE (38 kDa, PE38) on DNA level. [B3(FabH1)-PE38]2 was formed by disulfide bond between cysteines in the modified hinge region of B3(FabH1)-PE38. Each polypeptide for recombinant immunotoxins was overexpressed in Escherichia coli and collected as inclusion bodies. Each inclusion body was solubilized and refolded, and cytotoxic effects were measured. Divalent immunotoxins, [B3(FabH1)-PE38]2, had ID50 values of about 10 ng/mL on A431 cell lines and about 4 ng/mL on CRL1739 cell lines. Control immunotoxins, B3(scFv)-PE40, had ID50 values of about 28 ng/mL on A431 cell lines and about 41 ng/mL on CRL1739 cell lines. Divalent immunotoxins, [B3(FabH1)-PE38]2, had higher cytotoxic effects than B3(scFv)-PE40 control immunotoxins.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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