In order to exploit Methylobacterium oryzae CBMB20 as of plant growth promoting agent, different inoculation methods have been evaluated. The present study aimed to evaluate soil, foliar, and soil+foliar inoculations of M. oryzae CBMB20 to improve the growth, fruit yield, and nutrient uptake of red pepper (Capsicum annuum L.) under greenhouse conditions. The population range of green fluorescent protein (gfp)-tagged M. oryzae CBMB20 using the three inoculation methods was 2.5-2.9 ${\log}_{10}$ cfu/g in the rhizosphere and 4.5-6.0 ${\log}_{10}$ cfu/g in the phyllosphere of red pepper plants. Confocal laser scanning microscopy results confirmed the colonization of M. oryzae CBMB20 endophytically on leaf surface. Plant height, fruit dry weight, and total biomass were significantly higher ($p{\leq}0.05$) in all M. oryzae CBMB20 inoculation methods as compared to non-inoculated control. Furthermore, uptake of mineral nutrients such as N, P, K, Ca, and Mg in red pepper plants in all M. oryzae CBMB20 inoculation methods was higher than in non-inoculated control. Comparative results of inoculation methods clearly demonstrated that soil+foliar inoculation of M. oryzae CBMB20 lead to the highest biomass accumulation and nutrient uptake which may be due to its efficient colonization in the red pepper rhizosphere and phyllosphere.
Polyhydroxyalkanoates (PHAs) are a family of microbial polyesters that can be produced by fermentation from renewable resources. PHAs can be used as completely biodegradable plastics or elastomers. In this paper, novel applications of PHAs in biosensor are described. A general platform technology was developed by using the substrate binding domain (SBD) of PHA depolymerase as a fusion partner to immobilize proteins of interest on PHA surface. It could be shown that the proteins fused to the SBD of PHA depolymerase could be specifically immobilized onto PHA film, PHA microbead, and microcontact printed PHA surface. We review the results obtained for monitoring the specific interaction between the SBO and PHA by using enhanced green fluorescent protein, red fluorescent protein, single chain antibody against hepatitis B virus preS2 surface protein and severe acute respiratory syndrome coronavirus surface antigen as model proteins. Thus, this system can be efficiently used for studying protein-protein and possibly protein-biomolecule interactions for various biotechnological applications.
A Silkie Bantam embryo fibroblast line (named SBF59 line) was successfully established by using direct explant culture and cryopreservation techniques. Cell morphology, viability, dynamic growth and contamination were tested and the karyotype and levels of isoenzymes of lactic dehydrogenase and malic dehydrogenase were analyzed. Four kinds of fluorescent protein extrogenes, including $pEGFP-N_3$, $pECFP-N_1$, $pEYFP-N_1$ and $pDsRed1-N_1$ were transfected into the cells. The results showed that the cells were healthy and possessed a fibrous structure without a change in morphology. The average viability of the cells was 96% before freezing and 90.5% after thawing. The growth curve appeared as typical "S" shape and the cell growth passed through a detention phase, a logarithmic phase and a platform phase; the estimated population doubling time (PDT) was 38.5 h; assays for the presence of bacteria, fungi, viruses and mycoplasmas were negative; the cell line showed no cross contamination when assessed by isoenzyme analysis; the chromosome number was 2n = 78 on more than 88% of occasions; four kinds of fluorescent protein extro-genes appeared to be expressed effectively with a high transfection efficiency between 18.3% and 42.3%. The cell line met the required quality control standard. It not only preserves the genetic resources of the important Silkie Bantam at the cellular level but also provides valuable materials for genomic, post-genomic, somatic cell cloning research and other applications.
Membrane topology is a key characteristic of membrane proteins. We previously reported the cloning of the chromosome 4 open-reading frame 32 (C4orf32) gene as a potential membrane protein; however, the cellular localization and membrane topology of C4orf32 was as yet unknown. In this study, we found that green fluorescent protein (GFP) fused to the C-terminus of C4orf32 (C4orf32-GFP) was localized to the endoplasmic reticulum (ER). We applied three tools to identify determinants of C4orf32 topology: protease protection, fluorescence protease protection (FPP), and an inducible system using the ternary complex between FK506 binding protein 12 (FKBP), rapamycin, and the rapamycin-binding domain of mTOR (FRB) (the FRB-rapamycin-FKBP system). Using protease protection and FPP assays, we found that the GFP tag in C4orf32-GFP was localized to the cytoplasmic surface of the ER membrane of HeLa cells. Protease protection and FPP assays are useful and complimentary tools for identifying the topology of GFP fusion membrane proteins. The FRB-rapamycin-FKBP system was also used to study the topology of C4orf32. In the absence of rapamycin, a monomeric red fluorescent protein-FKBP fusion (mRFP-FKBP) and C4orf32-GFP-FRB were localized to the cytoplasm and the ER membrane, respectively. However, in the presence of rapamycin, the mRFP-FKBP was shifted from the cytoplasm to the ER and colocalized with the C4orf32-GFP-FRB. These results indicate that the FRB moiety is facing the cytoplasmic surface of ER membrane. Overall, our results clearly suggest that C4orf32 belongs to the family of type I ER resident membrane proteins.
In this study, it is reported that a large polyprotein can be stoichiometrically cleaved by the use of caspase-3-dependent proteolysis. Previously, it has been shown that the proteolytic IETD motif was partially processed when treated with caspase-3, while the DEVD motif was completely cleaved. The cleavage efficiency of the DEVD-based substrate was approximately 2.0 times higher than that of the IETD substrate, in response to caspase-3. Based on this, 3 protein genes of interest were genetically linked to each other by adding two proteolytic cleavage sequences, DEVD and IETD, for caspase-3. Particularly, glutathione-S transferase (GST), maltose binding protein (MBP), and red fluorescent protein (RFP) were chosen as model proteins due to the variation in their size. The expressed polyprotein was purified by immobilized metal ion affinity chromatography (IMAC) via a hexa-histidine tag at the C-terminal end, showing 93 kDa of a chimeric GST:MBP:RFP fusion protein. In response to caspase-3, cleavage products, such as MBP:RFP (68 kDa), MBP (42 kDa), RFP (26 kDa), and GST (25 kDa), were separated from a large precursor GST:MBP:RFP (93 kDa) via SDS-PAGE. The results obtained from this study indicate that a multi-protein can be stoichiometrically produced from a large poly-protein by using proteolytic recognition motifs, such as DEVD and IETD tetra-peptides, for caspase-3.
We characterized the cytoskeletal beta-actin (${\beta}$-ACT) gene (actb) and its 5'-upstream regulatory region in the Javanese ricefish Oryzias javanicus. The gene and protein structures were deduced from amino acid sequences of the actb gene and conserved in the teleost lineage. The O. javanicus actb gene has common transcription factor binding motifs in its regulatory region found in teleostean orthologues. Following quantitative reverse transcription-PCR, actb gene transcripts were detected in all tissues examined; however, the basal expression levels were different. During early development, O. javanicus actb mRNA levels showed a gradual increase and peaked between late somitogenesis and the heartbeat stage. Microinjection of O. javanicus embryos with the actb gene promoter-driven red fluorescent protein (RFP) gene reporter vector showed a ubiquitous distribution of RFP signals, although most exhibited a mosaic pattern of transgene expression. A small number of microinjected embryos displayed a wide distribution of RFP signals over their entire body, which resembled the expression pattern of endogenous actb. Data from this study provide a basis to develop a transgenic system with ubiquitous expression of foreign genes in O. javanicus.
Kim, Doo-Hyun;Kim, Heung-Joong;Jeong, Moon-Jin;Son, Ho-Hyun;Park, Joo-Cheol
Restorative Dentistry and Endodontics
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v.29
no.4
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pp.399-408
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2004
Odontoblasts are responsible for the formation and maintenance of dentin. They are known to synthesize unique gene products including dentin sialophosphoprotein (DSPP). Another unique genes of the cells remain unclear. OD314 was isolated from the odontoblasts/pulp cells of rats and partially characterized as an odontoblast-enriched gene (Dey et al., 2001). This study aimed to elucidate the biological function of OD314, relating to odontoblast differentiation and dentinogenesis. After determining the open reading frame (ORP) of OD314 by transient transfection analysis using green fluorescent protein (GPP) expression vector, mRNA in-situ hybridization, immunohistochemistry, reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) and western analysis were performed. The results were as follows: 1. In in-situ hybridization, OD314 mRNAs were expressed in odontoblasts of developing coronal and root pulp. 2. OD314 was a novel protein encoding 154 amino acids, and the protein was mainly expressed in cytoplasm by transient transfection analysis. 3. Mineralized nodules were associated with multilayer cell nodules in the culture of human dental pulp cells and first detected from day 21 using alizarin-red S staining. 4. In RT-PCR analysis, OD314, osteocalcin (OC) and DSPP strongly expressed throughout 28 days of culture. Whereas, osteonectin (ON) mRNA expression stayed low up to day 14, and then gradually decreased from day 21. 5. Western blots showed an approximately 17 kDa band. OD314 protein was expressed from the start of culture and then increased greatly from day 21. In conclusion, OD314 is considered as an odontoblast-enriched gene and may play important roles in odontoblast differentiation and dentin mineralization.
Lim, Hyoun-Sub;Lee, Mi Yeon;Moon, Jae Sun;Moon, Jung-Kyung;Yu, Yong-Man;Cho, In Sook;Bae, Hanhong;DeBoer, Matt;Ju, Hojong;Hammond, John;Jackson, Andrew O.
The Plant Pathology Journal
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v.29
no.1
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pp.17-30
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2013
Barley stripe mosaic virus (BSMV) induces massive actin filament thickening at the infection front of infected Nicotiana benthamiana leaves. To determine the mechanisms leading to actin remodeling, fluorescent protein fusions of the BSMV triple gene block (TGB) proteins were coexpressed in cells with the actin marker DsRed: Talin. TGB ectopic expression experiments revealed that TGB3 is a major elicitor of filament thickening, that TGB2 resulted in formation of intermediate DsRed:Talin filaments, and that TGB1 alone had no obvious effects on actin filament structure. Latrunculin B (LatB) treat-ments retarded BSMV cell-to-cell movement, disrupted actin filament organization, and dramatically decreased the proportion of paired TGB3 foci appearing at the cell wall (CW). BSMV infection of transgenic plants tagged with GFP-KDEL exhibited membrane proliferation and vesicle formation that were especially evident around the nucleus. Similar membrane proliferation occurred in plants expressing TGB2 and/or TGB3, and DsRed: Talin fluorescence in these plants colocalized with the ER vesicles. TGB3 also associated with the Golgi apparatus and overlapped with cortical vesicles appearing at the cell periphery. Brefeldin A treatments disrupted Golgi and also altered vesicles at the CW, but failed to interfere with TGB CW localization. Our results indicate that actin cytoskeleton interactions are important in BSMV cell-to-cell movement and for CW localization of TGB3.
Background: Pseudotyped virus systems that incorporate viral proteins have been widely employed for the rapid determination of the effectiveness and neutralizing activity of drug and vaccine candidates in biosafety level 2 facilities. We report an efficient method for producing severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) pseudovirus with dual luciferase and fluorescent protein reporters. Moreover, using the established method, we also aimed to investigate whether Korean Red Ginseng (KRG), a valuable Korean herbal medicine, can attenuate infectivity of the pseudotyped virus. Methods: A pseudovirus of SARS-CoV-2 (SARS-2pv) was constructed and efficiently produced using lentivirus vector systems available in the public domain by the introduction of critical mutations in the cytoplasmic tail of the spike protein. KRG extract was dose-dependently treated to Calu-3 cells during SARS2-pv treatment to evaluate the protective activity against SARS-CoV-2. Results: The use of Calu-3 cells or the expression of angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) in HEK293T cells enabled SARS-2pv infection of host cells. Coexpression of transmembrane protease serine subtype 2 (TMPRSS2), which is the activator of spike protein, with ACE2 dramatically elevated luciferase activity, confirming the importance of the TMPRSS2-mediated pathway during SARS-CoV-2 entry. Our pseudovirus assay also revealed that KRG elicited resistance to SARS-CoV-2 infection in lung cells, suggesting its beneficial health effect. Conclusion: The method demonstrated the production of SARS-2pv for the analysis of vaccine or drug candidates. When KRG was assessed by the method, it protected host cells from coronavirus infection. Further studies will be followed for demonstrating this potential benefit.
Baek, Eseul;Park, Minju;Yoon, Ju-Yeon;Palukaitis, Peter
Research in Plant Disease
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v.23
no.3
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pp.288-293
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2017
Chrysanthemum chlorotic mottle viroid (CChMVd) fused to the leader sequence of a reporter gene (mRFP) expressed transiently in agroinfiltrated Nicotiana benthamiana, was used to show that CChMVd can traffic into chloroplasts, thought to be the site of its replication. Fluorescence from mRFP was detected in chloroplasts, but only if the viroid transcription fusions were present, either from the full-length 400-nt CChMVd, or each of two partial fragments (nucleotides 125 to 2 and 231 to 372). The mRFP and its mRNA were detected by western blotting and RT-PCR, respectively, in tissue extracts of plants infiltrated by each fusion construct. Isolated chloroplasts were shown by RT-PCR to contain the RNA sequences of both CChMVd and mRFP, if both were present, but not the mRFP sequence in the absence of the viroid sequences. The results suggest that RNA trafficking was probably due to an RNA structure, and not a particular sequence, as discussed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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