The Pseudomonas fluorescens KCTC 1767, a selected and identified as potential candidate for stereo-specific resolution of rac-ketoprofen ethyl ester, was systematically investigated in order to induce the high level expression and detailed characterization of the expressing enzyme esterase. We cloned the esterase gene from chromosomal DNA of Pseudomonas fluorescens KCTC 1767 by PCR with two synthetic primers that desinged for simple purification. The recombinant esterase from Pseudomonas fluorescens KCTC 1767 exibited a high conversion rate and enantioselectivity to the (S)-ketoprofen ethyl ester as expected. The enzyme was easily purified to homogeniety by using a metal chelating affinity chromatography as a protein with poly histidine taq, and thus obtained 0.6 mg of protein from a 100 mL culture broth in a single step. The purified enzyme was steadily stable at the pH range from 7.0 to 10. The activity was also retained to be about 70% after the preincubation at $40^{\circ}C$ but over $50^{\circ}C$ lost the activity completely. The molecular mass of the esterase was estimated to be about 43 kDa on SDS-PAGE, and an identical result was also shown in gel filteration chromatography. The specific activity was calculated 27 mM/mg-protein/min by using the rac-ketoprofen ethly ester as a substrate.
Shuttle plasmid vector인 pHN114를 이용하여 Kluyveromyces fragilis의 3-isopropylmalate dehydrogenase 유전자를 cloning 하였다. 그 결과 Saccharomyces cerevisiae의 leu2변이와 E.coli의 leuB변이를 상보하는 두가지 clone 체 pJK104와 pJK106을 얻었다. Restriction mapping 결과 이들은 서로 반대방향으로 삽입되어 있었으며 expression activity는 pJK104가 높았다. pJK104에 삽입된 유전자를 BglII와 SalI으로 끊은 1.6kb fragment를 probe 로 하여 Southern Hybridization 한 결과 유전자의 유래가 Kluyveromyces fragilis 임을 확인하였다.
Kim, Jin-Sook;Lee, In-Soo;Lee, Seung-Won;Lee, Young-Phil;Jung, Chul-Ho;Kim, Hyung-Cheol;Choi, Soon-Yong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제12권5호
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pp.773-779
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2002
A gene (hap) encoding aminopeptidase from the chromosomal DNA of Bacillus licheniformis was cloned. The gene is 1,347 bp long and encodes a 449 amino acid preproprotein with a major mature region of 401 amino acids (calculated molecular mass 43,241 Da). N-Terminal sequence of the purified protein revealed a potential presence of N-terminal propeptide. The deduced primary amino acid sequence and the mass analysis of the purified protein suggested that a C-terminal peptide YSSVAQ was also cleaved off by a possible endogeneous protease. Tho amino acid sequence displayed 58% identity with that of the aminopeptidase from alkaliphilic Bacillus halodurans. This bacterial enzyme was overexpressed in recombinant Escherichia coli and Bacillus subtilis cells. Clones containing the intact hap gene, including its own promoter and signal sequence, gave rise to the synthesis of extracellular and thrmostable enzyme by B. subtilis transformants. The secreted protein exhibited the same biochemical properties and the similar apparent molecular mass as the B. lichenzyormis original enzyme.
Jeong, Jin Seo;Park, Yeong Taek;Jung, Harin;Park, Su-Hyun;Kim, Ju-Kon
Plant Biotechnology Reports
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제3권2호
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pp.127-134
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2009
Members of the NAM-ATAF-CUC (NAC) protein family are plant-specific transcription factors that contain a highly conserved N-terminal NAC-domain and diverse C-terminal regions. They have been implicated in plant development and abiotic stress responses. To identify interacters of rice NAC-domain proteins (OsNACs), we performed yeast two-hybrid screening of rice cDNA library using OsNAC5 as a bait, and the results showed that OsNAC5 interacts with other OsNACs including itself. To delineate an interacting domain, a series of deletion constructs of four OsNACs were made and transformed into yeast in various combinations. The results revealed that the conserved NAC domain of OsNACs plays a primary role in homodimer and heterodimer formation, and a part of C-terminal sequence is also necessary for the interaction. In vitro pull-down assays using recombinant OsNAC proteins verified the dimer formations, together suggesting that OsNACs may act by forming homodimers and/or heterodimers in plants.
An, Sun-Young;Kim, Sang-Wan;Park, Yong-Lark;Joo, Woo-Hong;Lee, Young-Choon
Journal of Microbiology
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제41권2호
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pp.95-101
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2003
The lipase gene (lipA) and its activator gene (lipB) of Pseudomonas sp. SW-3 were cloned and sequenced. The lipB was found to be present immediately downstream of lipA. The deduced amino acid sequences of lipA and lipB showed a high level of homology to those of other lipases belonging to the family I.1 of bacterial lipases. When lipA was expressed in Escherichia coli using T7 promoter, an active lipase was produced in cells carrying both lipA and lipB, but not in cells harboring only lipA. Recombinant lipase (rPSL) overproduced in an insoluble form was solubilized in the presence of 8 M urea, purified in a urea-denatured form and refolded by removing urea in the presence of the Ca$\^$2+/ ion. rPLS had maximum activity at pH 8.0 and 50$^{\circ}C$, was stable at pHs from 7.0 to 9.0 and below 50$^{\circ}C$, and showed the highest activity toward the p-nitrophenyl ester of palmitate (Cl6).
A tetracycline resistant Vibrio parahaemolyticus, capable of growing on TCBS medium containing tetracycline, was isolated from cultivated fishes. A gene responsible for the tetracycline resistance was cloned from chromosomal DNA of the V. parahaemolyticus strain using Escherichia coli KAM3, which lacks major multi-drug efflux pumps (${\Delta}acrB$) as host cells. The nucleotide sequence and homology analysis revealed an open reading frame (ORF) for tetracycline resistance protein (TetB). In order to characterize the antibiotic resistance of TetB originated from the V. parahaemolyticus strain, the gene was sub cloned into plasmid pSTV28. The resulting plasmid was designated as pSTVTetB and transformated into E. coli KAM3. E. coli KAM3 cells harboring the recombinant plasmid pSTVTetB are able to grow on plates containing tetracycline and oxytetracycline but not doxycycline, indicating that the tetB gene confers the tetracycline- and oxytetracycline-resistance to the host cell.
Natural human epidermal growth factor (nhEGF) was purified from pregnant human urine by benzoic acid adsorption, DEAE-Sepharose ion exchange, and immunoaffinity chromatography. The purified nhEGF was further separated into four fractions using Bondapak C$_{18}$ HPLC system. Following characterization by Western blot analysis and double immu- nodiffusion, we found that each fraction corresponds to four derivatives of the nhEGF. For biological analysis of nhEGF, we optimized the labeling time and serum concentration for the incorporatioin of 5-bromo-2'-deoxy uridine (BrdU), a non-radioactive alternative for [$^{3}$H]-thymidine uptake, into NIH 3T3 cells. The DNA synthesis of NIH 3T3 cells was gradually increased at the nhEGF concentrations between 0.1 - 10 ng/ml in the Dulbecco's Modified Eagles Medium (DMEM) containing 0.2% Fetal calf serum (FCS). When we assayed the biological activity of four fractions, the activity of the second fraction was superior to that of the others. Based on the results from the HPLC analysis spiked with recombinant human epidermal growth factor (rhEGF) and amino acid sequencing, we concluded that the second fraction was nhEGF and the other three fractions were the derivatives of nhEGF. In addition, the proportion of nhEGF was approximately 46% is compared with that of the other three derivatives.
Industrial strain Improvement is concerned with developing or modifying microorga-nisms used In production of commercially important fermentation products. The aim is to reduce the production cost by improving productivity of a strain and manipulating specific cilarafteristic such as the ability to utilize cheaper raw materials or resist bacteriophages. The traditional empiri-cal approach to strain improvement is mutation combined with selection and breeding techniques. It is still used by us to improve the productivity of organisms in amino acids. organic acids andenzymes production. The breeding of high L-lysine-producing strain Au112 is one of the outstanding examples of this approach. It is it homoserine auxotroph with AEC, TA double metabolicanalogue resistant markers. The yield reaches 100g/1. Resides, the citric acid-producing organism Aspergillus nuger, Co827, its productivity reches the advanced level in the world, is also the result of a series mutations expecially with Co Y-radiation. The thermostable a-amylaseroducing strain A 4041 is the third example. By combining physical and chemical multations. the strain ,A 4041becomes an asporogenous, catabolite derepressed mutant with rifamycin resistant and methionine, arginine auxotroph markers. The a-amylase activity reaches 200 units/ml. The fourth successful example of mutation in strain improvement is the glucoamylase-producing strain Aspergillus nigerSP56 its enzyme activity is 20,000 units/ml, 4 times of that of the parental strain UV_11. Recently recombinant DNA approach Provides a worth while alternative strategy to Industrial strain improve-ment. This technique had been used by us to increase the thermostable a-amylase production and on some genetic researches.
Calmodulin (CaM) proteins, members of the EF-hand family of $Ca^{2+}$-binding proteins, represent important relays in plant calcium signals. Here, OsCam1-1 was isolated by PCR amplification from the rice genome. The gene contains an ORF of 450 base pairs with a single intron at the same position found in other plant Cam genes. A promoter region with a TATA box at position-26 was predicted and fused to a gus reporter gene, and this construct was used to produce transgenic rice by Agrobacterium-mediated transformation. GUS activity was observed in all organs examined and throughout tissues in cross-sections, but activity was strongest in the vascular bundles of leaves and the vascular cylinders of roots. To examine the properties of OsCaM1-1, the encoding cDNA was expressed in Escherichia coli. The electrophoretic mobility shift when incubated with $Ca^{2+}$ indicates that recombinant OsCaM1-1 is a functional $Ca^{2+}$-binding protein. In addition, OsCaM1-1 bound the CaMKII target peptide confirming its likely functionality as a calmodulin.
Park, Seung-Won;Goo, Tae-Won;Kim, Seong-Ryul;Choi, Gwang-Ho
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제25권1호
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pp.111-114
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2012
In previous studies we have shown that a sw17255 gene was expressed in hemocyte-specific tissues of the silkworm, Bombyx mori L. (Lepidoptera: Bombycidae). It was verified that the sw17255 core promoter region contains elements that regulate the expression of this gene in hemocyte tissue; the selected promoter region spans nucleotides -1 to -2,112 upstream of the start codon. Each of the luciferase reporter gene expression vectors under the control of 4 different kinds of promoter candidates, (-2,112/-1), (-1,640/-1), (-1,169/-1) and (-579/-1), and the control reporter plasmid DNA, were introduced into B. mori larval coelom by direct injection using a syringe. The promoter candidate [E] (-579/-1) showed more than 1.67 fold transcriptional activity compared to control promoter activity. Higher productivity of an expressed gene in the transgenic silkworm by this promoter combination could be achieved in the near future. The foreign recombinant protein could be easily harvested from the blood of the transgenic silkworm.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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