Neural regulation of phenylethanolamine N-meth-yltransferase (PNMT) was studied with reserpine as a neuronal agent in rat adrenal medulla. The enzyme activity assay and northern blot analysis were performed to determine whether the induction of PNMT activity after reserpine treatment was associated with elevation of mRNA coding for PNMT. The i.p. administration of reserpine (2.5 mg/kg) on alternate days fot 4 injections to rats brought about 30% increase of adrenal medullary PNMT activity and approximately 60% stimulation of the PNMT mRNA level in rat adrenal gland. A dose of 10 mg/kg of reserpine was chosen to perform optimum induction of PNMT activity in the rat adrenal gland based on the results of dose response curve of reserpine. Time course reserpine (10 mg/kg) effects on the rat adrenal medullary PNMT were as follows: 1. Peripheral PNMT activity reached maximum level after 7 days of drug treatment on alternate days. 2. Trans-synaptic stimulation by reserpine increased pretranslational activity of rat adrenal PNMT, but not translational activity. 3. Immunotitration of PNMT molecule after reserpine treatment indicated that reserpine produced an enzyme with greater antibody affinity than endogenous molecule in the rat adrenal gland.
The present study was designed to investigate the effects of green tea extract (GTE) and epigallocatechin gallate (EGCG) on secretion of catecholamines (CA) in the isolated perfused rat adrenal gland. In the presence of GTE (100 ${\mu}$g/$m\ell$) into an adrenal vein for 60 min. CA secretory responses evoked by ACh (5.32 mM), high K+ (56 mM) and Bay-K-8644 (10 ${\mu}$M for 4 min) from the isolated perfused rat adrenal glands were greatly inhibited in a time-dependent fashion. (omitted)
The present study was designed to clarify whether tacrine affects the release of catecholamines (CA) from the isolated perfused model of rat adrenal gland or not and to elucidate the mechanism of its action. Tacrine $(3{\times}10^{-5}{\sim}3{\times}10^{-4}\;M)$ perfused into an adrenal vein for 60 min inhibited CA secretory responses evoked by ACh $(5.32{\times}10^{-3}\;M),$ DMPP (a selective neuronal nicotinic agonist, $10^{-4}$ M for 2 min) and McN-A-343 (a selective muscarinic M1-agonist, $10^{-4}$ M for 2 min) in relatively dose- and time- dependent manners. However, tacrine failed to affect CA secretion by high $K^+\;(5.6{\times}10^{-2}\;M).$ Tacrine itself at concentrations used in the present experiments did not also affect spontaneous CA output. Furthermore, in the presence of tacrine $(10^{-4}\;M),$ CA secretory responses evoked by Bay-K-8644 (an activator of L-type $Ca^{2+}$ channels, $10^{-4}\;M),$ but not by cyclopiazonic acid (an inhibitor of cytoplasmic $Ca^{2+}-ATPase,\;10^{-4}\;M),$ was relatively time-dependently attenuated. Also, physostigmine $10^{-4}\;M),$ given into the adrenal gland for 60 min, depressed CA secretory responses evoked by ACh, McN-A-343 and DMPP while did not affect that evoked by high $K^+.$ Collectively, these results obtained from the present study demonstrate that tacrine greatly inhibits CA secretion from the perfused rat adrenal gland evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors, but does fail to affect that by direct membrane-depolarization. It is suggested that this inhibitory effect of tacrine may be exerted by blocking both the calcium influx into the rat adrenal medullary chromaffin cells without $Ca^{2+}$ release from the cytoplasmic calcium store, that is relevant to the cholinergic blockade. Also, the mode of action between tacrine and physostigmine in rat adrenomedullary CA secretion seems to be similar.
The present study was designed to investigate the effects of green tea extract (CUMC6335) and epigallocatechin gallate (EGCG) on secretion of catecholamines (CA) in the isolated perfused rat adrenal gland. ill the presence of CUMC6335 (100 $\mu\textrm{g}$/mL) into an adrenal vein for 60 min, CA secretory responses evoked by ACh(5.32 mM), high $K^+$ (56 mM) and Bay-K-8644 (10$\mu$M for 4 min) from the isolated perfused rat adrenal glands were greatly inhibited in a time-dependent fashion. However, EGCG (8 $\mu\textrm{g}$/mL) did not affect CA release evoked by ACh, high $K^+$ and Bay-K-8644. CUMC6335 itself did fail to affect basal catecholamine output. Taken together, these results demonstrate that CUMC6335 inhibits greatly CA secretion evoked by stimulation of cholinergic nicotinic receptors as well as by the direct membrane deplarization from the isolated perfused rat adrenal gland. It is felt that this inhibitory effect of CUMC6335 may be due to blocking action of the L-type dihydropyridine calcium channels in the rat adrenal medullary chromaffin cells, which is relevant to the cholinergic nicotinic blockade. It seems that there is a big difference in mode of action between CUMC6335 and EGCG.
The influence of caffeine on secretion of catecholamines (CA) was examined in the isolated perfused rat adrenal gland. Caffeine (0.3 mM) perfused into an adrenal vein of the gland produced a marked increase in secretion of CA. This secretory effect of CA evoked by perfusion of caffeine for one minute was considerably prolonged, lasting for more than 90 minutes. The tachyphylaxis to releasing effect of CA induced by caffeine was observed by repeated perfusion of this drug. The caffeine-evoked CA secretion was markedly inhibited by pretreatment with ouabain, trifluoperazine, TMB-8 and perfusion with calcium-free Krebs solution containing 5 mM EGTA, but was not affected by perfusion of calcium-free Krebs solution without other addition. CA secretion evoked by caffeine was not reduced significantly by pretreatment with chlorisondamine but after the first collection of perfusate for 3 min was clearly inhibited. Interestingly, the caffeine-evoked CA secretion was considerably potentiated by pretreatment with atropine or pirenzepine, but after the first collection for 3 min it was markedly decreased. These experimental results suggest that caffeine causes a marked increase in secretion of CA from the isolated perfused rat adrenal gland by an extracellular calcium-independent exocytotic mechanism. The secretory effect of caffeine may be mainly due to mobilization of calcium from an intracellular calcium pool in the rat chromaffin cells and partly due to stimulation of both muscarinic and nicotinic receptors.
The present study was designed to investigate the effect f quinidine on catecholamine (CA) secretion evoked by ACh, high $K^{+}$, DMPP, McN-A343, cyclopiazonic acid and Bay-K-8644 from the isolated perfused rat adrenal gland and to establish the mechanism of its action. The perfusion of quinidine (15-150 $\mu$M) into an adrenal vein for 60 min produced relatively dose- and time-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh (5.32$\times$10$^{-3}$ M), high $K^{+}$ (5.6$\times$10$^{-2}$ M), DMPP (10$^{-4}$ M for 2 min), McN-A-343 (10$^{-4}$ M for 2 min), cyclopiazonic acid (10$^{-5}$ M for 4 min) and Bay-K-8644 (10$^{-5}$ M for 4 min). Furthermore, in adrenal glands pre-loaded with quinine (5$\times$10$^{-5}$ M), CA secretory responses evoked by veratridine (10$^{-4}$ M) was time-dependently inhibited. Also, in the presence of lidocaine (10$^{-4}$ M), which is also known to be a sodium channel blocker, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclo-piazonic acid were also greatly reduced in similar fashion to that of quinidine-treatment. Taken together, these results suggest that quinidine causes greatly the inhibition of CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization, indicating strongly that this effect may be mediated by inhibiting influx of extracellular calcium and release in intracellular calcium in the rat adrenomedullary chromaffin cells. Furthermore, these findings indicate strongly that this inhibitory action of quinidine appears to be associated to the blocking action of sodium channels at least in CA secretion from the rat adrenal gland.and.
The present study was conducted to examine the effects of cholinergic stimulation and membrane depolarization on secretion of epinephrine (EP) and norepinephrine (NE) in the perfused model of the rat adrenal gland and to investigate the effect of bromocriptine on secretion of EP and NE evoked by these secreta-gogues. Acetylcholine (ACh, 5.32 mM), high $K^{+}$(56mM), 1.1-dimethyl-4-phenyl piperazinium iodide (DMPP, 100 $\mu$M for 2 min), (3-(m-cholro-phenyl-carbamoyl-oxy)-2butynyl trimethyl ammonium chloride (McN-A-343, 100 $\mu$M for 2 min), cyclopiazonic acid (10 $\mu$M for 4 min) and methyl-1,4-dihydro-2,6-dimethyl-3-nitro-4-(2-trifluoromethylphenyl) -pyridine-5-carboxylate (Bay-K-8644, 10 $\mu$M for 4 min) evoked a 1.3~5.3-fold greater secretion of EP than NE in the perfused rat adrenal gland. The perfusion of bromocriptine (1-10 $\mu$M) into an adrenal vein for 20 min produced relatively dose-dependent inhibition in secretion of EP and NE evoked by ACh, high $K^{+}$, DMPP, and McN-A-343. Moreover, under the presence of bromocriptine (1~10 $\mu$M), releasing responses of EP and NE evoked by cyclopiazonic acid and Bay-K-8644 were also greatly reduced. Taken together, these results suggest that cholinergic stimulation and membrane depolarization enhance more release of EP than NE in the perfumed rat adrenal medulla, and that bromocriptine inhibits the release of EP and NE evoked by stimulation of cholinergic receptors as well as by membrane depolarization. It seems that this inhibitory effect of bromocriptine is associated with inhibition of calcium channels through activation of dopaminergic D2-receptors located in the rat adrenomedullary chromaffin cells.lls.
The present study was attempted to investigate the effect of apamin on catecholamine (CA) secretion evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, cyclopiazonic acid and Bay-K-8644 from the isolated perfused rat adrenal gland and to establish the mechanism of its action. The perfusion of apamin (1 nM) into an adrenal vein for 20 min produced greatly potentiation in CA secretion evoked by ACh (5.32 $ imes$$10^{-3}$ M), high $K^+$, (5.6 $ imes$$10^{-2}$), DMPP ($10^{-4}$ M for 2 min), McN-A-343 ($10^{-4}$ M for 2 min), cyclopiazonic acid ($10^{-5}$ M for 4 min) and Bay-K-8644 ($10^{-5}$ M for 4 min). However, apamin itself did fail to affect basal catecholamine output. Furthermore, in adrenal glands preloaded with apamin (1 nM) under the presence of glibenclamide ($10^{-6}$ M), an antidiabetic sulfonylurea that has been shown to be a specific blocker of ATP-regulated potassium channels (for 20 min), CA secretion evoked by DMPP and McN-A-343 was not affected. However, the perfusion of high concentration of apamin (100 nM) into an adrenal vein for 20 min rather inhibited significantly CA secretory responses evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, cyclopiazonic acid and Bay-K-8644. Taken together, these results suggest that the low concentration of apamin causes greatly the enhancement of CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization. These findings suggests that apamin-sensitive SK ($Ca^{2+}$) channels located in rat adrenal medullary chromaffin cells may play an inhibitory role in the release of catecholamines mediated by stimulation of cholinergic nicotinic and muscarinic receptors as well as membrane depolarization. However, it is thought that high concentration of apamin cause the inhibitory responses in catecholamine secretion evoked by stimulation of cholinergic receptors as well as by membrane depolarization from the rat adrenal gland without relevance with the SK channel blockade.
The present study was attempted to investigate the effect of quinine on secretion of catecholamines (CA) etroked by cholinergic stimulation and membrane depolarization from the isolated perfused rat adrenal gland. The perfusion of quinine (15-150${\mu}$M) into an adrenal vein for 60 min produced dose- and time-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh ($5.32{\times}10^{-3}M$), high $K^{+}5.6{\times}10^{-2}M$, DMPP ($10^{-4}M$ for 2 min), McN-A-343 ($10^{-4}M$ for 2 min), cyclopiazonic acid ($10^{-5}$ for 4 min) and Bay-K-8644 ($10^{-5}$ M for 4 min). Also, under the presence of pinacidil ($10^{-4}$ M), which is also known to be a selective potassium channel activator, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were also greatly reduced. When preloaded along with quinine ($5{\times}10^{-5}M$) and glibenclamide ($10^{-6}$ M), a specific blocker of ATP-regulated potassium channels, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were recovered as compared to those of quinine-treatment only. taken together, these results demonstrate that quinine inhibits CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization through inhibiting influx of extracellular calcium and release in intracellular calcium in the rat adrenmodullary chromaffin cells. These findings suggest that activation of potassium channels may be involved at least in inhibitory action of quinine on CA secretion from the rat adrenal gland.
The present study was undertaken to investigate the effect of doxorubicin (DX) on secretion of catecholamines (CA) evoked by ACh, high $K^+,$ DMPP and McN-A-343 from the isolated perfused rat adrenal gland and to establish the mechanism of its action. DX $(10^{-7}{\sim}10^{-6}\;M)$ perfused into an adrenal vein for 60 min produced relatively dose- and time-dependent inhibition of CA secretory responses evoked by ACh $(5.32{\times}10^{-3}\;M),$ DMPP $(10^{-4}\;M)$ and McN-A-343 $(10^{-4}\;M).$ However, lower dose of DX did not affect CA secretion by high $K^+\;(5.6{\times}10^{-2}\;M),$ but its higher doses depressed time-dependently CA secretion evoked by high $K^+.$ DX itself did also fail to affect basal CA output. In adrenal glands loaded with DX $(3{\times}10^{-7}\;M),$ CA secretory responses evoked by Bay-K-8644, an activator of L-type $Ca^{2+}$ channels and cyclopiazonic acid, an inhibitor of cytoplasmic $Ca^{2+}-ATPase$ were time-dependently inhibited. Furthermore, daunorubicin $(3{\times}10^{-7}\;M),$ given into the adrenal gland for 60 min, attenuated CA secretory responses evoked by ACh, high $K^+,$ DMPP and McN-A-343. Taken together, these results suggest that DX causes relatively dose- and time-dependent inhibition of CA secretory responses evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors from the isolated perfused rat adrenal gland. However, lower dose of DX did not affect CA secretion by high $K^+,$ and higher doses of DX reduced time-dependently CA secretion of high $K^+.$ It is thought that these effects of DX may be mediated by inhibiting both influx of extracellular calcium into the rat adrenomedullary chromaffin cells and intracelluar calcium release from the cytoplasmic store. Also, there was no difference in the mode of action between DX and daunorubicin in rat adrenomedullary CA secretion.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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