The existence of the Ras-independent signal transduction pathway of insulin leading to DNA synthesis was investigated in Rat-1 fibroblasts overexpressing human insulin receptor (HIRc-B) using the single-cell microinjection technique. Microinjection of a dominant-negative mutant $Ras^{N17}$ protein into quiescent HIRc-B cells inhibited the DNA synthesis stimulated by insulin. Microinjection of oncogenic H-$Ras^{V12}$ protein ($H-Ras^{V12}$) (0.1 mg/ml) induced DNA synthesis by 35%, whereas that of control-injected IgG was induced by 20%. When the marginal amount of oncogenic H-$Ras^{V12}$ protein was coinjected with a dominant-negative mutant of the H-Ras protein ($Ras^{N17}$), DNA synthesis was 35% and 74% in the absence and presence of insulin, respectively. This full recovery of DNA synthesis by insulin suggests the existence of the Ras-independent pathway. The same recovery was observed in the cells coinjected with either H-$Ras^{V12}$ plus H-$Ras^{N17}$ plus SH2 domain of the p85 subunit of PI3-kinase ($p85^{SH2-N}$) or H-$Ras^{V12}$ plus H-$Ras^{N17}$ plus interfering anti-Shc antibody. When co-injected with a dominant-negative H-$Ras^{N17}$, the DNA synthesis induced by the Ras-independent pathway was blocked. These results indicate that the Ras-independent pathway of insulin leading to DNA synthesis exists, bypassing the p85 of PI3-kinase and Shc protein, and requires Rac1 protein.
Mutated forms of ras are found in many human tumors and the rate of incidence is significantly higher in colon and pancreatic cancers. The protein product from the ras oncogene is a small G-protein, $p21^{ras}{\;}(Ras)$ that is known to playa key role in the signal transduction cascade and cell differentiation and proliferation. Mutated Ras is unable to regulate itself and remains constantly activated, leading to uncontrolled cell growth. The function of Ras in signal transduction requires its location near the growth factor receptor at the cell membrane. However, Ras does not have a transmembrane domain. Ras requires farnesylation to increase its hydrophobicity and subsequent plasma membrane association for its transforming activity. This key post-translational modification is catalyzed by the enzyme Ras farnesyltransferase (FTase), which transfers a farnesyl group from farnesylpyrophosphate to the C-terminal cysteine of the Ras protein. The requirement has focused attention on FTase as a target for therapeutic intervention. Selective inhibition of FTase will prevent Ras protein from association with the plasma membrane, leading to a disruption of oncogenic Ras function.
The Ras superfamily of small G-proteins acts as a molecular switch on the intracellular signaling pathway. Upon ligand stimulation, inactive GTPases (Ras-GDP) are activated (Ras-GTP) using guanine nucleotide exchange factor (GEF) and transmit signals to their downstream effectors. Following signal transmission, active Ras-GTP become inactive Ras-GDP and cease signaling. However, the intrinsic GTPase activity of Ras proteins is weak, requiring Ras GTPase-activating protein (RasGAP) to efficiently convert RAS-GTP to Ras-GDP. Since deregulation of the Ras pathway is found in nearly 30% of all human cancers, it might be useful to clarify the structural and physiological roles of Ras GTPases. Recently, RasGAP has emerged as a new class of tumor-suppressor protein and a potential therapeutic target for cancer. Therefore, it is important to clarify the physiological roles of the individual GAPs in human diseases. The first RasGAP discovered was RASA1, also known as p120 RasGAP. RASA1 is widely expressed, independent of cell type and tissue distribution. Subsequently, neurofibromatosis type 1 (NF1) was discovered. The remaining GAPs are affiliated with the GAP1 and synaptic GAP (SynGAP) families. There are more than 170 Ras GTPases and 14 Ras GAP members in the human genome. This review focused on the current understanding of Ras GTPase and RasGAP in human diseases, including cancers.
Ras small GTPases are involved in regulating various cellular signaling pathways including cell migration, proliferation, and differentiation. Ras GTPase subfamily is comprised of 15 proteins; 11 Ras, 3 Rap, and one Rheb related protein. Some Ras proteins, such as RasC and RasG, have been identified for their major functions, but there are proteins whose functions have not been studied yet, such as RasU and RasX. Here, we investigated the roles of RasU in cell motility and development. RasU shows the highest homology with RasX. To investigate the functions of RasU, rasU null cells were used to observe the phenotype. Cells lacking RasU were larger and more spread than wild-type cells. These results indicate that RasU plays a negative role in cell spreading. In addition, we investigated the roles of RasU in cell motility and development of Dictyostelium cells and found that rasU null cells exhibited decreased random migration speed and delayed developmental process. These results suggest that RasU plays an important role in cell motility and development.
Cell adhesion plays an important role in the differentiation of the morphogenesis and the trophectoderm epithelium of the blastocyst. In the porcine embryo, CDH1 mediated adhesion initiates at compaction before blastocyst formation, regulated post-translationally via protein kinase C and other signaling molecules. Here we focus on muscle RAS oncogene homolog (M-RAS), which is the closest relative to the RAS related proteins and shares most regulatory and effector interactions. To characterize the effects of M-RAS on embryo compaction, we used gain- and loss-of-function strategies in porcine embryos, in which M-RAS gene structure and protein sequence are conserved. We showed that knockdown of M-RAS in zygotes reduced embryo development abilities and CDH1 expression. Moreover, the phosphorylation of ERK was also decreased in M-RAS KD embryos. Overexpression of M-RAS allows M-RAS KD embryos to rescue the embryo compaction and blastocyst formation. Collectively, these results highlight novel conserved and multiple effects of M-RAS during porcine embryo development.
Koo, JaeHyung;Wang, Sen;Kang, NaNa;Hur, Sun Jin;Bahk, Young Yil
BMB Reports
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v.49
no.7
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pp.370-375
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2016
Ras oncoproteins are small molecular weight GTPases known for their involvement in oncogenesis, which operate in a complex signaling network with multiple effectors. Approximately 25% of human tumors possess mutations in a member of this family. The Raf1/MEK/Erk1/2 pathway is one of the most intensively studied signaling mechanisms. Different levels of regulation account for the inactivation of MAP kinases by MAPK phosphatases in a cell type- and stimuli-dependent manner. In the present study, using three inducible Ras-expressing NIH/3T3 cell lines, we demonstrated that MKP3 upregulation requires the activation of the Erk1/2 pathway, which correlates with the shutdown of this pathway. We also demonstrated, by applying pharmacological inhibitors and effector mutants of Ras, that induction of MKP3 at the protein level is positively regulated by the oncogenic Ras/Raf/MEK/Erk1/2 signaling pathway.
Drugs targeting the epidermal growth factor receptor (EGFR), such as cetuximab and panitumumab, have been prescribed for metastatic colorectal cancer (CRC), but patients harboring KRAS mutations are insensitive to them and do not have an alternative drug to overcome the problem. The levels of ${\beta}$-catenin, EGFR, and RAS, especially mutant KRAS, are increased in CRC patient tissues due to mutations of adenomatous polyposis coli (APC), which occur in 90% of human CRCs. The increases in these proteins by APC loss synergistically promote tumorigenesis. Therefore, we tested KYA1797K, a recently identified small molecule that degrades both ${\beta}$-catenin and Ras via $GSK3{\beta}$ activation, and its capability to suppress the cetuximab resistance of KRAS-mutated CRC cells. KYA1797K suppressed the growth of tumor xenografts induced by CRC cells as well as tumor organoids derived from CRC patients having both APC and KRAS mutations. Lowering the levels of both ${\beta}$-catenin and RAS as well as EGFR via targeting the $Wnt/{\beta}$-catenin pathway is a therapeutic strategy for controlling CRC and other types of cancer with aberrantly activated the $Wnt/{\beta}$-catenin and EGFR-RAS pathways, including those with resistance to EGFR-targeting drugs attributed to KRAS mutations.
Mutations of APC and KRAS are frequently observed in human colorectal cancers (CRCs) and the Wnt/β-catenin and Ras pathways are consequently activated in a significant proportion of CRC patients. Mutations in these two genes are also known to synergistically induce progression of CRCs. Through a series of studies, we have demonstrated that inhibition of the Wnt/β-catenin signaling pathway negatively regulates Ras stability, therefore, Ras abundance is increased together with β-catenin in both mice and human CRCs harboring adenomatous polyposis coli (APC) mutations. In a recent study, we identified KY1220, a small molecule that simultaneously degrades β-catenin and Ras by inhibition of the Wnt/β-catenin pathway, and obtained its derivative KYA1797K, which has improved activity and solubility. We found that KYA1797K binds the RGS domain of axin and enhances the binding affinity of β-catenin or Ras with the β-catenin destruction complex components, leading to simultaneous destabilization of β-catenin and Ras via GSK3β activation. By using both in vitro and in vivo studies, we showed that KYA1797K suppressed the growth of CRCs harboring APC and KRAS mutations through destabilization of β-catenin and Ras. Therefore, our findings indicate that the simultaneous destabilization of β-catenin and Ras via targeting axin may serve as an effective strategy for inhibition of CRCs.
Park, Young Jae;Lee, Jong Min;Shin, Soon Young;Kim, Young Ho
BMB Reports
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v.47
no.12
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pp.685-690
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2014
The Ras/Raf/MEK/Erk signaling pathway is important for regulation of cell growth, proliferation, differentiation, survival, and apoptosis in response to a variety of extracellular stimuli. Lack of Erk MAPK activation is observed in several cancer cells despite active activation of Ras. However, little is known about the modulation of Erk1/2 activity by active Ras. Here, we show that overexpression of active H-Ras (H-RasG12R) in NIH3T3 fibroblasts impaired FGF2-induced Erk1/2 phosphorylation, as compared to wild-type cells. Northern blot analysis revealed that prolonged expression of active Ras increased MAP kinase phosphatase 3 (MKP3) mRNA expression, a negative regulator of Erk MAPK. Inhibition of the phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K)/Akt pathway abrogated active Ras-induced up-regulation of MKP3 expression, leading to the rescue of Erk1/2 phosphorylation. Our results demonstrated that the Ras/Raf/MEK/Erk signaling cascade is negatively regulated by the PI3K/Aktdependent transcriptional activation of the MKP3 gene.
The processing pathway of G-proteins and Ras family proteins includes the isoprenylation of the cysteine residue, followed by proteolysis of three terminal residues and .alpha.-carboxyl methyl esterification of the cysteine residue. Farnesylcysteine methyltransferase (FCMT) activity is responsible for the methylation reaction which play a role in the membrane attachment of a variety of cellular proteins. Four kinds of Ras protein (c-Ha-ras, c-N-Ras, c-Ki-Ras, pan-Ras) expression were detected in adenocarcinoma of human tissue by immunohistochemical method, and hematoxylin and eosin staining. The level of Ras protein in human stomach tumor tissues was much higher than in normal and peritumoral regions of the same biopsy samples. The FCMT activities of each cellular fractions were high in mitochondrial fraction followed by microsomal fraction, whole homogenate and cytosolic fraction. The inhibitory effect on FCMT activity on stomach tumor tissue was determined after treatment with 0.25 $\mu\textrm{M}$ of S-adenosyl-$_L$-homocysteine. S-adenosyl-$_L$-homocysteine inhibited FCMT activity from 11.2% to 30.5%. These results suggested that FCMT might be involved in Ras proteins activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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