Posttranscriptional regulation of RNA metabolism, including RNA processing, intron splicing, editing, RNA export, and decay, is increasingly regarded as an essential step for fine-tuning the regulation of gene expression in eukaryotes. RNA-binding proteins (RBPs) are central regulatory factors controlling posttranscriptional RNA metabolism during plant growth, development, and stress responses. Although functional roles of diverse RBPs in living organisms have been determined during the last decades, our understanding of the functional roles of RBPs in plants is lagging far behind our understanding of those in other organisms, including animals, bacteria, and viruses. However, recent functional analysis of multiple RBP family members involved in plant RNA metabolism and elucidation of the mechanistic roles of RBPs shed light on the cellular roles of diverse RBPs in growth, development, and stress responses of plants. In this review, we will discuss recent studies demonstrating the emerging roles of multiple RBP family members that play essential roles in RNA metabolism during plant growth, development, and stress responses.
The effects of heat shock, or all-trans retinoic acid, on the expression of the C-reactive protein mRNA in the HT-29 human colon carcinoma cells, as well as the functional role of the C-reactive protein as a molecular chaperone, were studied. The expression level of the C-reactive protein mRNA in the HT-29 cells was increased time-dependently when exposed to heat-shock, and dose-dependently when treated with all-trans retinoic acid. The activities of transglutaminase C and K in the HT-29 cells were significantly increased when treated with all-trans retinoic acid. The C-reactive protein prevented thermal aggregation of the citrate synthase and stabilized the target enzyme, citrate synthase. The C-reactive protein promoted functional refolding of the urea-denatured citrate synthase up to 40-70%. These results suggest that the C-reactive protein, which is induced in human colon carcinoma cells, when heated or treated with all-trans retinoic acid has in a part functional activity of the molecular chaperone.
Fabry disease (FD), a rare X-linked lysosomal storage disorder, is caused by mutations in the α-galactosidase A gene gene encoding α-galactosidase A (α-Gal A). The functional deficiency of α-Gal A results in progressive accumulation of neutral glycosphingolipids, causing multi-organ damages including cardiac, renal, cerebrovascular systems. The current treatment is comprised of enzyme replacement therapy (ERT), oral pharmacological chaperone therapy and adjunctive supportive therapy. ERT has been introduced 20 years ago, changing the outcome of FD patients with proven effectiveness. However, FD patients have many unmet needs. ERT needs a life-long intravenous therapy, inefficient bio-distribution, and generation of anti-drug antibodies. Migalastat, a pharmacological chaperone, augmenting α-Gal A enzyme activity only in patients with mutations amenable to the therapy, is now available for clinical practice. Furthermore, these therapies should be initiated before the organ damage becomes irreversible. Development of novel drugs aim at improving the clinical effectiveness and convenience of therapy. Clinical trial of next generation ERT is underway. Polyethylene glycolylated enzyme has a longer half-life and potentially reduced antigenicity, compared with standard preparations with longer dosing interval. Moss-derived enzyme has a higher affinity for mannose receptors, and seems to have more efficient access to podocytes of kidney which is relatively resistant to reach by conventional ERT. Substrate reduction therapy is currently under clinical trial. Gene therapy has now been started in several clinical trials using in vivo and ex vivo technologies. Early results are emerging. Other strategic approaches at preclinical research level are stem cell-based therapy with genome editing and systemic mRNA therapy.
Caffeine has both positive and negative effects on physiological functions in a dose-dependent manner. C. elegans has been used as an animal model to investigate the effects of caffeine on development. Caffeine treatment at a high dose (30 mM) showed detrimental effects and caused early larval arrest. We performed a comparative proteomic analysis to investigate the mode of action of high-dose caffeine treatment in C. elegans and found that the stress response proteins, heat shock protein (HSP)-4 (endoplasmic reticulum [ER] chaperone), HSP-6 (mitochondrial chaperone), and HSP-16 (cytosolic chaperone), were induced and their expression was regulated at the transcriptional level. These findings suggest that high-dose caffeine intake causes a strong stress response and activates all three stress-response pathways in the worms, including the ER-, mitochondrial-, and cytosolic pathways. RNA interference of each hsp gene or in triple combination retarded growth. In addition, caffeine treatment stimulated a food-avoidance behavior (aversion phenotype), which was enhanced by RNAi depletion of the hsp-4 gene. Therefore, up-regulation of hsp genes after caffeine treatment appeared to be the major responses to alleviate stress and protect against developmental arrest.
Effects of chaperones on mRNA stability and gene expression were studied in order to develop an efficient Escherichia coli expression system that can maximize gene expression. The stability of mRNA was modulated by introducing various secondary structures at the 5'-end of mRNA. Four vector systems providing different 5'-end structures were constructed, and genes encoding GFPuv and endoxylanase were cloned into the four vector systems. Primer extension assay revealed different mRNA half-lives depending on the 5'-end secondary structures of mRNA. In addition to the stem-loop structure at the 5'-end of mRNA, coexpression of dnaK-dnaJ-grpE or groEL-groES, representative heat-shock genes in E. coli, increased the mRNA stability and the level of gene expression further, even though the degree of stabilization was varied. Our work suggests that some of the heat-shock proteins can function as mRNA stabilizers as well s protein chaperones.
Kim, Jieun;Mannaa, Mohamed;Kim, Namgyu;Lee, Chaeyeong;Kim, Juyun;Park, Jungwook;Lee, Hyun-Hee;Seo, Young-Su
The Plant Pathology Journal
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제34권5호
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pp.412-425
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2018
The Hfq protein is a global small RNA chaperone that interacts with regulatory bacterial small RNAs (sRNA) and plays a role in the post-transcriptional regulation of gene expression. The roles of Hfq in the virulence and pathogenicity of several infectious bacteria have been reported. This study was conducted to elucidate the functions of two hfq genes in Burkholderia glumae, a causal agent of rice grain rot. Therefore, mutant strains of the rice-pathogenic B. glumae BGR1, targeting each of the two hfq genes, as well as the double defective mutant were constructed and tested for several phenotypic characteristics. Bacterial swarming motility, toxoflavin production, virulence in rice, siderophore production, sensitivity to $H_2O_2$, and lipase production assays were conducted to compare the mutant strains with the wild-type B. glumae BGR1 and complementation strains. The hfq1 gene showed more influence on bacterial motility and toxoflavin production than the hfq2 gene. Both genes were involved in the full virulence of B. glumae in rice plants. Other biochemical characteristics such as siderophore production and sensitivity to $H_2O_2$ induced oxidative stress were also found to be regulated by the hfq1 gene. However, lipase activity was shown to be unassociated with both tested genes. To the best of our knowledge, this is the first study to elucidate the functions of two hfq genes in B. glumae. Identification of virulence-related factors in B. glumae will facilitate the development of efficient control measures.
Antimicrobial actions of reactive oxygen/nitrogen species (ROS/RNS) derived from products of NADPH oxidase and inducible nitric oxide (NO) synthase in host phagocytes inactivate various bacterial macromolecules. To cope with these cytotoxic radicals, pathogenic bacteria have evolved to conserve systems necessary for detoxifying ROS/RNS and repairing damages caused by their actions. In response to these stresses, bacteria also induce expression of molecular chaperones to aid in ameliorating protein misfolding. In this study, we explored the function of a newly identified chaperone Spy, that is localized exclusively in the periplasm when bacteria exposed to conditions causing spheroplast formation, in the resistance of Salmonella Typhimurium to ROS/RNS. A spy deletion mutant was constructed in S. Typhimurium by a PCR-mediated method of one-step gene inactivation with ${\lambda}$ Red recombinase, and subjected to ROS/RNS stresses. The spy mutant Salmonella showed a modest decrease in growth rate in NO-producing cultures, and no detectable difference of growth rate in $H_2O_2$ containing cultures, compared with that of wild type Salmonella. Quantitative RT-PCR analysis showed that spy mRNA levels were similar regardless of both stresses, but were increased considerably in Salmonella mutants lacking the flavohemoglobin Hmp, which are incapable of NO detoxification, and lacking an alternative sigma factor RpoS, conferring hypersusceptibility to $H_2O_2$. Results demonstrate that Spy expression can be induced under extreme conditions of both stresses, and suggest that the protein may have supportive roles in maintaining proteostasis in the periplasm where various chaperones may act in concert with Spy, thereby protecting bacteria against toxicities of ROS/RNS.
The peptidyl transferase center (PTC) is located in a protein free environment, thus confirming that the ribosome is a ribozyme. This arched void has dimensions suitable for accommodating the 3'ends of the A-and the P-site tRNAs, and is situated within a universal sizable symmetry-related region that connects all ribosomal functional centers involved in amino-acid polymerization. The linkage between the elaborate PTC architecture and the A-site tRNA position revealed that the A-to P-site passage of the tRNA 3'end is performed by a rotatory motion, which leads to stereochemistry suitable for peptide bond formation and for substrate mediated catalysis, thus suggesting that the PTC evolved by genefusion. Adjacent to the PTC is the entrance of the protein exit tunnel, shown to play active roles in sequence-specific gating of nascent chains and in responding to cellular signals. This tunnel also provides a site that may be exploited for local co-translational folding and seems to assist in nascent chain trafficking into the hydrophobic space formed by the first bacterial chaperone, the trigger factor. Many antibiotics target ribosomes. Although the ribosome is highly conserved, subtle sequence and/or conformational variations enable drug selectivity, thus facilitating clinical usage. Comparisons of high-resolution structures of complexes of antibiotics bound to ribosomes from eubacteria resembling pathogens, to an archaeon that shares properties with eukaryotes and to its mutant that allows antibiotics binding, demonstrated the unambiguous difference between mere binding and therapeutical effectiveness. The observed variability in antibiotics inhibitory modes, accompanied by the elucidation of the structural basis to antibiotics mechanism justifies expectations for structural based improved properties of existing compounds as well as for the development of novel drugs.
The results of recent studies indicate that high levels of free fatty acids(FFAs) and adipokines may be the main causes of non-alcoholic liver disease; however, the molecular mechanism that links FFAs to lipotoxicity remains unclear. In the present study, we treated HepG2 cells with FFA(either palmitate or oleate) to investigate the mechanisms involved in lipotoxicity in the liver cells. We also treated cells with palmitate in the presence of a chemical chaperone, 4-phenylbutyric acid(PBA), to confirm the involvement of ER stress in lipotoxicity. Palmitate significantly induced cytotoxicity in dose- and time-dependent manners. Apoptosis was also significantly induced by palmitate as measured by caspase-3 activity and DAPI staining. Palmitate led to increased expressions of the spliced form of X-box-protein(Xbp)-1 mRNA and C/EBP homologous transcription factor(CHOP) protein, suggesting activation of the unfolded-protein response. PBA co-incubation significantly attenuated apoptosis induced by palmitate. The above data demonstrate that high levels of palmitate induce apoptosis via the mediation of ER stress in the liver cells and that chemical chaperones act to modulate ER stress and accompanying apoptosis.
We characterized a cDNA clone for a low molecular weight heat-shock protein (LMW HSP) from tobacco named TLHS-l. Nucleotide sequence determination of TLHS-1 identified an open reading frame for 159 amino acids. To the upstream of the open reading frame, a sequence of 124 nucleotides was determined. To the 3' downstream of the open reading frame, 212 nucleotides were identified which carried poly(A)-tail. Comparison of the open reading frame and hydropathy plot of TLHS-1 with the previously reported class I LMW HSPs showed high identity which classified TLHS-1 as a class I LMW HSP cDNA clone. We proposed that there are six consensus regions in class I LMW HSPs. RNA blot hybridization for TLHS-1 showed a typical expression pattern of heat-shock-inducible gene from three common tobacco cultivars. The open reading frame of TLHS-1 was overexpressed in Escherichia coli. TLHS-1 protein confers thermal protection of other proteins in vitro and in vivo. Thermal induced aggregation of citrate synthase was reduced by purified TLHS-1 protein, and thermal death rate at $50^{\circ}C$ was reduced in E. coli expressing TLHS-l. From these data, we can expect that TLHS-1 acts as a molecular chaperone.perone.
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