Pravin Kumran Nyanasegran;Sheila Nathan;Mohd Firdaus-Raih;Nor Azlan Nor Muhammad;Chyan Leong Ng
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.33
no.1
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pp.15-27
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2023
The incidence of melioidosis cases caused by the gram-negative pathogen Burkholderia pseudomallei (BP) is seeing an increasing trend that has spread beyond its previously known endemic regions. Biofilms produced by BP have been associated with antimicrobial therapy limitation and relapse melioidosis, thus making it urgently necessary to understand the mechanisms of biofilm formation and their role in BP biology. Microbial cells aggregate and enclose within a self-produced matrix of extracellular polymeric substances (EPSs) to form biofilm. The transition mechanism of bacterial cells from planktonic state to initiate biofilm formation, which involves the formation of surface attachment microcolonies and the maturation of the biofilm matrix, is a dynamic and complex process. Despite the emerging findings on the biofilm formation process, systemic knowledge on the molecular mechanisms of biofilm formation in BP remains fractured. This review provides insights into the signaling systems, matrix composition, and the biosynthesis regulation of EPSs (exopolysaccharide, eDNA and proteins) that facilitate the formation of biofilms in order to present an overview of our current knowledge and the questions that remain regarding BP biofilms.
Plant-cell-wall-degrading enzymes (PCWDEs) of Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum are the key virulence factor in pathogenesis of soft rot disease of vegetables. The production of PCWDEs is controlled in a cell density dependent manner to avoid the premature production of PCWDEs and subsequent activation of plant defense. N-oxoacyl-homoserine lactone (OHL) is essential for quorum sensing in the soft rot pathogen and the expI gene is responsible for OHL production. The ExpI homolog isolated from P. carotovorum subsp. carotovorum SL940 had 94% identity with ExpI of E. carotovora subsp. carotovora scc3193 and 74% identity with Carl of E. carotovora subsp. atroseptica. The transgenic plants that express exp I uner the control of CaMV35S promoter were able to produce diffusible OHL. Transgenic plants producing OHL were very resistant to the infection of P. carotovorum subsp. carotovorum. Since the PR1 gene was strongly induced and NPR1 and NPR4 were induced weakly in transgenic plants compared to the wild type, salicylic acid-dependent pathways is likely involved in the resistance to the soft rot pathogen P. carotovorum subsp. carotovorum in ExpI transgenic plants.
Kim Chang-Beom;Rho Jong-Bok;Lee Hyun-Kyung;Choi Sang Ho;Lee Dong-Hun;Park Soon-Jung;Lee Kyu-Ho
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.33
no.1
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pp.1-8
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2005
Since Anton van Leeuwenhoek first observed a surface-associated multicellular structure of bacterial cells in the 17th century, it has been shown to exhibit an ability to form a biofilm by numerous bacterial species. The biofilm formation is composed of distinct developmental stages, which include an attachment/adhesion of a single cell, a proliferation toward monolayered coverage, a propagation to aggregated microcolony, a maturation to 3-dimensional structure, and subsequently a local degradation. Investigation to identify the essential factors for bacterial biofilm formation has been performed via classical genetic approaches as well as recently developed technologies. The initial stage requires bacterial motility provided by a flagellum, and outermembrane components for surface signal interaction. Type IV-pilus and autoaggregation factors, e.g., type I-fimbriae or Ag43, are necessary to reach the stages of monolayer and micro colony. The mature biofilm is equipped with extracellular polymeric matrix and internal water-filled channels. This complex architecture can be achieved by differential expressions of several hundred genes, among which the most studied are the genes encoding exopolysaccharide biosyntheses and quorum-sensing regulatory components. The status of our knowledge for the biofilms found in humans and natural ecosystems is discussed in this minireview.
Fang, Wang;Zhang, Min;Hu, Yong-Hua;Zhang, Wei-wei;Sun, Li
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.8
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pp.765-773
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2009
Edwardsiella tarda is a pathogen with a broad host range that includes human and animals. The E. tarda hemolysin (Eth) system, which comprises EthA and EthB, is a noted virulence element that is widely distributed in pathogenic isolates of E. tarda. Previous study has shown that the expression of ethB is regulated by iron, which suggests the possibility that the ferric uptake regulator (Fur) is involved in the regulation of ethB. The work presented in this report supports the previous findings and demonstrates that ethB expression was decreased under conditions when the E. tarda Fur ($Fur_{Et}$) was overproduced, and enhanced when $Fur_{Et}$ was inactivated. We also identified a second ethB regulator, EthR, which is a transcription regulator of the GntR family. EthR represses ethB expression by direct interaction with the ethB promoter region. In addition to ethB, EthR also modulates, but positively, luxS expression and AI-2 production by binding to the luxS promoter region. The expression of ethR itself is subject to negative autoregulation; interference with this regulation by overexpressing ethR during the process of infection caused (i) drastic changes in ethB and luxS expressions, (ii) vitiation in the tissue dissemination and survival ability of the bacterium, and (iii) significant attenuation of the overall bacterial virulence. These results not only provide new insights into the regulation mechanisms of the Eth hemolysin and LuxS/AI-2 quorum sensing systems but also highlight the importance of these systems in bacterial virulence.
To understand the molecular mechanism involved in the survivability of cold-tolerant lactic acid bacteria was of great significance in food processing, since these bacteria play a key role in a variety of low-temperature fermented foods. In this study, the cold-stress response of probiotic Lactobacillus plantarum K25 isolated from Tibetan kefir grains was analyzed by iTRAQ proteomic method. By comparing differentially expressed (DE) protein profiles of the strain incubated at 10℃ and 37℃, 506 DE proteins were identified. The DE proteins involved in carbohydrate, amino acid and fatty acid biosynthesis and metabolism were significantly down-regulated, leading to a specific energy conservation survival mode. The DE proteins related to DNA repair, transcription and translation were up-regulated, implicating change of gene expression and more protein biosynthesis needed in response to cold stress. In addition, two-component system, quorum sensing and ABC (ATP-binding cassette) transporters also participated in cell cold-adaptation process. These findings provide novel insight into the cold-resistance mechanism in L. plantarum with potential application in low temperature fermented or preserved foods.
Li, Qianqian;Ni, Hong;Meng, Shan;He, Yan;Yu, Ziniu;Li, Lin
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.21
no.12
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pp.1330-1335
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2011
N-Acyl homoserine lactones (AHLs) serve as the vital quorum-sensing signals that regulate the virulence of the pathogenic bacterium Erwinia carotovora. In the present study, an approach to efficiently restrain the pathogenicity of E. carotovora-induced soft rot disease is described. Bacillus thuringiensis-derived N-acyl homoserine lactonase (AiiA) was projected onto the surface of Pseudomonas putida cells, and inoculation with both strains was challenged. The previously identified N-terminal moiety of the ice nucleation protein, InaQ-N, was applied as the anchoring motif. A surface display cassette with inaQ-N/aiiA was constructed and expressed under the control of a constitutive promoter in P. putida AB92019. Surface localization of the fusion protein was confirmed by Western blot analysis, flow cytometry, and immunofluorescence microscopy. The antagonistic activity of P. putida MB116 expressing InaQ-N/AiiA toward E. carotovora ATCC25270 was evaluated by challenge inoculation in potato slices at different ratios. The results revealed a remarkable suppressing effect on E. carotovora infection. The active component was further analyzed using different cell fractions, and the cell surface-projected fusion protein was found to correspond to the suppressing effect.
Acute respiratory virus infectious diseases are a growing health problem, particularly among children and the elderly. Much effort has been made to develop probiotics that prevent influenza virus infections by enhancing innate immunity in the respiratory tract until vaccines are available. Lactobacillus plantarum GB-LP2, isolated from a traditional Korean fermented vegetable, has exhibited preventive effects on influenza virus infection in mice. To identify the molecular basis of this strain, we conducted a whole-genome assembly study. The single circular DNA chromosome of 3,284,304 bp was completely assembled and 3,250 protein-encoding genes were predicted. Evolutionarily accelerated genes related to the phenotypic trait of anti-infective activities for influenza virus were identified. These genes encode three integral membrane proteins, a teichoic acid export ATP-binding protein and a glucosamine - fructose-6-phosphate aminotransferase involved in host innate immunity, the nonspecific DNA-binding protein Dps, which protects bacteria from oxidative damage, and the response regulator of the three-component quorum-sensing regulatory system, which is related to the capacity of adhesion to the surface of the respiratory tract and competition with pathogens. This is the first study to identify the genetic backgrounds of the antiviral activity in L. plantarum strains. These findings provide insight into the anti-infective activities of L. plantarum and the development of preventive probiotics.
Kim, Jong-Chul;Yoon, Jang-Won;Kim, Jong-Bae;Oh, Kyung-Hwan;Park, Mi-Sun;Lee, Bok-Kwon;Cho, Seung-Hak
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.20
no.2
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pp.415-424
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2010
The purpose of this study was to investigate the relationship between the global regulatory mechanism known as quorum sensing and expression of virulence factors in Escherichia coli O157:87. A nonpolar luxS deletion was introduced into the chromosome of strain CI03J, a human clinical isolate from South Korea, to create the ${\Delta}luxS$ mutant strain ML03J. Phenotypic characterization of wild-type and mutant strains demonstrated that ML03J had no obvious growth or metabolic defects on 0.2% glucose LB medium, produced a functionally defective flagellum, and could not utilize sorbose; the biological significance of sorbose utilization is unknown. Omics-based analysis revealed the involvement of LuxS in the transcriptional activation of several flagella/chemotaxisrelated genes (flhD; fliA, C, D, S, Z; and cheA, Y, Z), repression of glutamate-dependent acid resistance genes (gadAB), and expression of virulence factors including Shiga toxin, hemolysin, and SepD within the LEE pathogenicity island.
Recently, quorum sensing has been implicated as an important global regulator controlling the production of numerous virulence factors such as capsular polysaccharides in bacterial pathogens. The nucleotide and deduced amino acid sequences of smcR, a homolog of V. harveyi luxR identified from V. vulnificus ATCC29307, were analyzed. The amino acid sequence of SmcR from V. vulnificus was 72 to 92% similar to those of LuxR homologs from Vibrio spp. Functions of SmcR were assessed by the construction of an isogenic mutant, whose smcR gene was inactivated by allelic exchanges, and by evaluating its phenotype changes in vitro and in mice. The disruption of smcR resulted in a significant alteration in biofilm formation, in type of colony morphology, and in motility. When compared with the wild-type, the smcR mutant exhibited reduced survival under adverse conditions, such as acidic pH and hyperosmotic stress. The smcR mutant exhibited decreased cytotoxic activity toward INT 407 cells in vitro. Furthermore, the intraperitoneal $LD_{50}$ of the smcR mutant was approximately $10^2$ times higher than that of parental wild-type. Therefore, it appears that SmcR is a novel global regulator, controlling numerous genes contributing to the pathogenesis as well as survival of V. vulnificus.
Mechesso, Abraham F.;Quah, Yixian;Park, Seung-Chun
Journal of Ginseng Research
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v.45
no.1
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pp.75-85
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2021
Background: Invasive infections due to foodborne pathogens, including Salmonella enterica serovar Typhimurium, are prevalent and life-threatening. This study aimed to evaluate the effects of ginsenoside Rg3 (Rg3) on the adhesion, invasion, and intracellular survival of S. Typhimurium. Methods: The impacts of Rg3 on bacterial growth and host cell viability were determined using the time kill and the 3-(4,5-dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyl-2H-tetrazolium bromide assays, respectively. Gentamicin assay and confocal microscopic examination were undertaken to determine the effects of Rg3 on the adhesive and invasive abilities of S. Typhimurium to Caco-2 and RAW 264.7 cells. Quantitative reverse transcription polymerase chain reaction was performed to assess the expression of genes correlated with the adhesion, invasion, and virulence of S. Typhimurium. Results: Subinhibitory concentrations of Rg3 significantly reduced (p < 0.05) the adhesion, invasion, and intracellular survival of S. Typhimurium. Rg3 considerably reduced (p < 0.05) the bacterial motility as well as the release of nitrite from infected macrophages in a concentration-dependent manner. The expression of genes related to the adhesion, invasion, quorum sensing, and virulence of S. Typhimurium including cheY, hilA, OmpD, PrgK, rsgE, SdiA, and SipB was significantly reduced after Rg3 treatment. Besides, the compound downregulated rac-1 and Cdc-42 that are essential for actin remodeling and membrane ruffling, thereby facilitating Salmonella entry into host cells. This report is the first to describe the effects of Rg3 on "trigger" entry mechanism and intracellular survival S. Typhimurium. Conclusion: Rg3 could be considered as a supplement agent to prevent S. Typhimurium infection.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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