This study investigates the relationship between smoking and periodontal disease through quantitative analysis of intra-buccal oral pathogenic bacteria detected in smokers and aims to yield objective baseline data for applications in anti-smoking and dental health education programs. From April to May 2016, participants in an oral health management program within an intensive dental hygiene training course at Choonhae College of Health Sciences received an explanation of the study purposes and methods, after which male smokers aged 18~30 years agreed to participate voluntarily. Real-time polymerase chain reaction (PCR) analysis of oral pathogenic bacteria was performed after collecting gingival sulcus fluid samples from 67 smokers. The intra-buccal oral pathogenic bacteria distributions were analyzed based on the subjects' general characteristics, smoking behaviors, and oral care behaviors. The distribution results show that pathogens in the anterior teeth are affected (in this order) by age, toothbrush size, and smoking status; older people had fewer pathogens, those who used larger toothbrushes had more pathogens, and smokers had more pathogens, compared to non-smokers ($_{adj}R^2=19.1$). In the posterior teeth, pathogens were influenced (in this order) by smoking status, smoking duration, and the number of tooth brushings per day; smokers had more pathogens than non-smokers, and those who brushed their teeth more often had fewer pathogens ($_{adj}R^2=25.1$). The overall pathogen distribution was affected only by smoking status: smokers generally had more pathogens, compared to non-smokers. Therefore, it is necessary to provide information about the risk of periodontal disease due to smoking during anti-smoking or dental health education sessions; particularly, the use of smaller toothbrushes for anterior teeth and the need for smokers in their early twenties to quit smoking for dental health should be highly emphasized.
In this study, a new triplex real-time quantitative reverse transcription polymerase chain reaction (tqRT-PCR) assay was developed for the rapid and differential detection of three feline viral pathogens including feline calicivirus (FCV), feline herpesvirus 1 (FHV-1), and influenza A virus (IAV) in a single reaction. The assay specifically amplified three targeted viral genes with a detection limit of below 10 copies/reaction. The assay showed high repeatability and reproducibility, with intra- and inter-assay coefficients of variation of less than 1%. Based on the diagnostic results of the assay using 120 clinical samples obtained from cats with feline respiratory disease complex (FRDC)-suspected signs, the prevalence of FCV, FHV-1, or IAV was 43.3%, 22.5%, or 0%, respectively, indicating that the diagnostic sensitivity was comparable or superior to those of previously reported monoplex qRT-PCR/qPCR assays. The dual infection rate for FCV and FHV-1 was 8.3%. These results indicate that FCV and FHV-1 are widespread and that co-infection with FCV and FHV-1 frequently occur in the Korean cat population. The developed tqRT-PCR assay will serve as a promising tool for etiological and epidemiological studies of these three bacterial pathogens, and the prevalence data for three feline viruses obtained in this study will contribute to expanding knowledge about the epidemiology of FRDC in the current Korean cat population.
Cell cycle progression is regulated by both transcriptional and post-transcriptional mechanisms. MicroRNAs (miRNAs) emerge as a new class of small non-coding RNA regulators of cell cycle as recent evidence suggests. It is hypothesized that expression of specific miRNAs oscillates orderly along with cell cycle progression. However, the oscillated expression patterns of many candidate miRNAs have yet to be determined. Here, we describe miRNA expression profiling in double-thymidine synchronized HeLa cells as cell cycle progresses. Twenty-five differentially expressed miRNAs were classified into five groups based on their cell cycle-dependent expression patterns. The cyclic expression of six miRNAs (miR-221, let-7a, miR-21, miR-34a, miR-24, miR-376b) was validated by real-time quantitative RT-PCR (qRT-PCR). These results suggest that specific miRNAs, along with other key factors are required for maintaining and regulating proper cell cycle progression. The study deepens our understanding on cell cycle regulation.
Kim, Do-Kyung;Kim, Chun-Sung;Kim, Heung-Joong;Kook, Joong-Ki;Kim, Seung-Hee;Lee, Baek-Hee;Lee, Yun-Ho;Mo, Shin-Yeob;Loh, Horace H.
International Journal of Oral Biology
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v.35
no.2
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pp.69-74
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2010
The mu opioid receptor (MOR) has been regarded as the main site of interaction with analgesics in major clinical use, particularly morphine. The repressor element-1 silencing transcription factor (REST) functions as a transcriptional repressor of neuronal genes in non-neuronal cells. However, it is expressed in certain mature neurons, suggesting that it may have complex and novel roles. In addition, the interactions between MOR and REST and their functions remain unclear. In this study, we examined the effects of morphine on the expression of REST mRNA and protein in human neuroblastoma NMB cells to investigate the roles of REST induced by MOR activation in neuronal cells. To determine the effects of morphine on REST expression, we performed RT-PCR, real-time quantitative RT-PCR, western blot analysis and radioligand binding assays in NMB cells. By RTPCR and real-time quantitative RT-PCR, the expression of REST was found to be unchanged by either the MOR agonist morphine or the MOR specific antagonist CTOP. By western blot, morphine was shown to significantly inhibit the expression of REST, but this suppression was completely blocked by treatment with CTOP. In the radioligand binding assay, the overexpression of REST led to an increased opioid ligand binding activity of endogenous MOR in the NMB cells. These results together suggest that morphine inhibits the expression of REST in human neuroblastoma cells through a post-transcriptional regulatory mechanism mediated through MOR.
Purpose: Epstein-Barr virus (EBV) hepatitis is a usually asymptomatic and self-limiting disease in immunocompetent patients. However, the range of severity is wide, and the serological diagnosis is typically difficult until the convalescent phase. Thus, we examined the value of plasma EBV DNA real-time quantitative polymerase chain reaction (RT-qPCR) in EBV hepatitis for the timely diagnosis and the relationship between EBV viral load and clinical severity. Methods: Sixty samples were confirmed as having EBV infection by RT-qPCR with the EBV BALF5 gene sequence. We examined the clinical characteristics of EBV hepatitis by reviewing medical records. Results: The median total duration of fever was 8 days (range: 0-13 days). The mean peak value of aspartate aminotransferase (AST) was $241{\pm}214$ U/L, and the mean peak value of alanine aminotransferase (ALT) was $298{\pm}312$ U/L. There was no correlation between the serum levels of liver enzyme and plasma EBV DNA titer ($p$=0.1) or between median total duration of fever and EBV DNA titer ($p$=0.056). The median age of the EBV VCA IgM-negative group was lower compared with the EBV VCA IgM-positive group in EBV hepatitis (2 years vs. 6 years, $p$=0.0009). Conclusion: The severity of EBV hepatitis does not correlate with circulating EBV DNA load according to our data. Furthermore, we suggest that plasma EBV PCR may be valuable in young infants in whom the results of serology test for EBV infection commonly are negative.
Background: Nowadays, the encapsulation of cytotoxic chemotherapeutic agents is attracting interest as a method for drug delivery. We hypothesized that the efficiency of helenalin might be maximized by encapsulation in ${\beta}$-cyclodextrin nanoparticles. Helenalin, with a hydrophobic structure obtained from flowers of Arnica chamissonis and Arnica Montana, has anti-cancer and anti-inflammatory activity but low water solubility and bioavailability. ${\beta}$-Cyclodextrin (${\beta}$-CD) is a cyclic oligosaccharide comprising seven D-glucopyranoside units, linked through 1,4-glycosidic bonds. Materials and Methods: To test our hypothesis, we prepared ${\beta}$-cyclodextrin-helenalin complexes to determine their inhibitory effects on telomerase gene expression by real-time polymerase chain reaction (q-PCR) and cytotoxic effects by colorimetric cell viability (MTT) assay. Results: MTT assay showed that not only ${\beta}$-cyclodextrin has no cytotoxic effect on its own but also it demonstrated that ${\beta}$-cyclodextrin-helenalin complexes inhibited the growth of the T47D breast cancer cell line in a time and dose-dependent manner. Our q-PCR results showed that the expression of telomerase gene was effectively reduced as the concentration of ${\beta}$-cyclodextrin-helenalin complexes increased. Conclusions: ${\beta}$-Cyclodextrin-helenalin complexes exerted cytotoxic effects on T47D cells through down-regulation of telomerase expression and by enhancing Helenalin uptake by cells. Therefore, ${\beta}$-cyclodextrin could be superior carrier for this kind of hydrophobic agent.
In this study, we developed a sensitive and specific reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) assay for rapid visual detection of foot-and-mouth disease virus (FMDV) circulated in Korea. The RT-LAMP was completed in 40 min at $62^{\circ}C$ and the results of the assay were directly detected by naked eye without any detection process. The assay specifically amplified all 7 serotypes of FMDV RNAs but not amplified other viral and cellular nucleic acids. The sensitivity of the RT-LAMP was $10^2$, $10^3$ and $10^3TCID_{50}/mL$ for serotype O, A and Asia 1 FMDV, respectively, which was comparable to conventional reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) and relatively lower than that of real time quantitative RT-PCR (qRT-PCR). Clinical evaluation of the RT-LAMP using different serotypes of Korean and foreign FMDV strains showed a 100% (35/35) agreement with the results of the RT-PCR and qRT-PCR. These results indicated that RT-LAMP assay developed in this study could be a valuable diagnostic method for FMDV monitoring and surveillance.
Background: Quantitative real time reverse transcription PCR (qRT-PCR) is one of the most important techniques for gene-expression analysis in molecular based studies. Selecting a proper internal control gene for normalizing data is a crucial step in gene expression analysis via this method. The expression levels of reference genes should be remained constant among cells in different tissues. However, it seems that the location of cells in different tissues might influence their expression. The purpose of this study was to determine whether the source of mesenchymal stem cells (MSCs) has any effect on expression level of three common reference genes (GAPDH, ${\beta}$-actin and ${\beta}2$-microglobulin) in equine marrow- and adipose-derived undifferentiated MSCs and consequently their reliability for comparative qRT-PCR. Materials and methods: Adipose tissue (AT) and bone marrow (BM) samples were harvested from 3 mares. MSCs were isolated and cultured until passage 3 (P3). Total RNA of P3 cells was extracted for cDNA synthesis. The generated cDNAs were analyzed by quantitative real-time PCR. The PCR reactions were ended with a melting curve analysis to verify the specificity of amplicon. Results: The expression levels of GAPDH were significantly different between AT- and BM-derived MSCs (p < 0.05). Differences in expression level of ${\beta}$-actin (P < 0.001) and B2M (P < 0.006.) between MSCs derived from AT and BM were substantially higher than GAPDH. In addition, the fold change in expression levels of GAPDH, ${\beta}$-actin and B2M in AT-derived MSCs compared to BM-derived MSCs were 2.38, 6.76 and 7.76, respectively. Conclusion: This study demonstrated that GAPDH and especially ${\beta}$-actin and B2M express in different levels in equine AT- and BM-derived MSCs. Thus they cannot be considered as reliable reference genes for comparative quantitative gene expression analysis in MSCs derived from equine bone marrow and adipose tissue.
Recently, noninvasive prenatal test (NIPT) has been adopted as a primary screening tool for fetal chromosomal aneuploidy. The principle of NIPT lies in isolating the fetal fraction of cell-free DNA in maternal plasma and analyzing it with bioinformatic tools to measure the amount of gene from the target chromosome, such as chromosomes 21, 18, and 13. NIPT will contribute to decreasing the need for unnecessary invasive procedures, including amniocentesis and chorionic villi sampling, for confirming fetal aneuploidy because of its higher positive predictive value than that of the conventional prenatal screening method. However, its greater cost than that of the current antenatal screening protocol may be an obstacle to the adoption of this innovative technique in clinical practice. Digital polymerase chain reaction (dPCR) is a novel approach for detecting and quantifying nucleic acid. dPCR provides real-time diagnostic advantages with higher sensitivity, accuracy, and absolute quantification than conventional quantitative PCR. Since the groundbreaking discovery that fetal cell-free nucleic acid exists in maternal plasma was reported, dPCR has been used for the quantification of fetal DNA and for screening for fetal aneuploidy. It has been suggested that dPCR will decrease the cost by targeting specific sequences in the target chromosome, and dPCR-based noninvasive testing will facilitate progress toward the implementation of a noninvasive approach for screening for trisomy 21, 18, and 13. In this review, we highlight the principle of dPCR and discuss its future implications in clinical practice.
In quantitative studies of clinical signs, rock bream of adults and juveniles infected with Megalocytivirus IVS-1 isolated from rock bream (Oplegnathus fasciatus) in Korea showed average $4.49{\pm}1.13$ and $4.85{\pm}1.06$ of spleen index respectively. In challenge experiments, Megalocytivirus IVS-1 induced 100% cumulative mortality in both adult and juvenile rock bream. However we found 60% cumulative mortality in juvenile red sea bream (Pagrus major) even after 30 days of injection, which contradicted with the results of other laboratories. Interestingly, IVS-1 infected red sea bream of the same juvenile size with rock bream showed lower spleen index compared to that of rock bream. In real-time PCR, there was continuous increasing of the numbers of viral copies ($2.03{\times}10^7$ copies/mg) in the spleen of juvenile rock bream infected, which were different from those in adult rock bream showing plateau level after reaching to the peak level. Moreover, enlarged cell numbers in the infected spleen were also increased continuously in the juvenile but not in adult of rock bream, even decreased after reaching to peak level. Consequently, significant differences in clinical signs: cumulative mortality. spleen index and viral copy number were found between rock bream and red sea bream, but not between adult and juvenile rock bream. Certainly quantitative expression of clinical sign as in this study may be a way to compare the progression of megalocitiviral disease more accurately in different species or physiological conditions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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