Indole-3-acetic acid (IAA) is produced commonly by plants and many bacteria, however, little is known about the genetic basis involving the key enzymes of IAA biosynthetic pathways from Bacillus spp. IAA intermediates from the Gram-positive spore-forming bacterium Paenibacillus polymyxa E681 were investigated, which showed the existence of only an indole-3-pyruvic acid (IPA) pathway for IAA biosynthesis from the bacterium. Four open reading frames (ORFs) encoding indole-3-pyruvate decarboxylase-like proteins and putative indole-3-pyruvate decarboxylase (IPDC), a key enzyme in the IPA synthetic pathway, were found on the genome sequence database of P. polymyxa and cloned in Escherichia coli DH5$\alpha$. One of the ORFs, PP2_01257, was assigned as probable indole-3-pyruvate decarboxylase. The ORF consisted of 1,743 nucleotides encoding 581 amino acids with a deduced molecular mass of 63,380 Da. Alignment studies of the deduced amino acid sequence of the ORF with known IPDC sequences revealed conservation of several amino acids in PP2_01257, essential for substrate and cofactor binding. Recombinant protein, gene product of the ORF PP2_01257 from P. polymyxa E681, was expressed in E. coli BL21 (DE3) as a glutathione S-transferase (GST)-fusion protein and purified to homogeneity using affinity chromatography. The molecular mass of the purified enzyme showed about 63 kDa, corresponding closely to the expected molecular mass of IPDC. The indole-3-pyruvate decarboxylase activity of the recombinant protein, detected by HPLC, using IPA substrate in the enzyme reaction confirmed the identity and functionality of the enzyme IPDC from the E681 strain.
에탄올 생산 세균 Zymomonas mobilis에서 에탄올 생산 경로의 핵심으로 작용하는 효소인, pyruvate decarboxylase(pdc) 유전자의 불활성 실험을 통해, PDC 활성이 50% 감소된 PDC 활성 변형균주가 분리되었다. 이러한 균주들의 에탄올 탄소대사 흐름이 고부가가치 화합물인 피루브산, 숙신산 및 젖산 등으로 전환되는지를 발효 실험을 통해 평가하였다. 하지만 pdc의 발현을 중지시키기 위해 cat-삽입형-pdc와 pdc-결손형 아형 유전자를 전기천공법을 이용해 야생형 균주 ZM4의 염색체에 이식하기 위한 다수의 시도에도 불구하고, 이러한 방법을 통해 분리된 균주들은 대부분 부분적 유전자 불활성 특성을 보였으며, PDC 활성이 완전히 손실된 삭제 돌연변이 균주를 획득할 수는 없었다. PDC활성이 변형된 돌연변이 균주의 발효 실험에서, 야생형 균주와 비교 시 감소된 PDC 효소 활성의 변화로 인해 기질 흡수율과 에탄올 생산율이 감소되어 피루브산 생산이 약 2.5 g l-1 정도로 증가함을 확인하였으나, 젖산과 숙신산의 생산에 현저한 농도 변화를 보이지 못했다. 이러한 결과는 Z. mobilis의 산화환원 에너지가 PDC 효소 활성에 의한 에탄올 생산 경로에 전적으로 의존하여 발생한다는 것을 암시하였다. 상기 결과를 토대로 pdc 유전자의 완전한 불활성 유도와 산화환원 에너지의 균형은, 젖산 생산을 위한 lactate dehydrogenase, 숙신산 생산을 위한 pyruvate dehydrogenase와 malic enzyme과 같은 효소의 활성 증가를 통해, 세포내 NAD와 NADH 농도의 산화환원 균형이 이루어져야 발생할 수 있음을 시사하였다.
Huang, Chang-Yi;Nixon, Peter F.;Duggleby, Ronald G.
BMB Reports
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제32권1호
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pp.39-44
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1999
Pyruvate decarboxylase (PDC) catalyzes the conversion of pyruvate to acetaldehyde as the penultimate step in alcohol fermentation. The enzyme requires two cofactors, thiamin diphosphate (ThDP) and $Mg^{2+}$, for activity. Zymomonas mobilis PDC shows a strong preference for pyruvate although it will use the higher homologues 2-ketobutyrate and 2-ketovalerate to some extent. We have investigated the effect of mutagenesis of valine 111 and leucine 112 on the substrate specificity. V111 was replaced by glycine, alanine, leucine, and isoleucine while L112 was replaced by alanine, valine, and isoleucine. With the exception of L112I, all mutants retain activity towards pyruvate with $k_{cat}$ values ranging from 40% to 139% of wild-type. All mutants show changes from wild-type in the affinity for ThDP, and several (V111A, L112A, and L112V) show decreases in the affinity for $Mg^{2+}$. Two of the mutants, V111G and V111A, show an increase in the $K_m$ for pyruvate. The activity of each mutant towards 2-ketobutyrate and 2-ketovalerate was investigated and some changes from wild-type were found. For the V111 mutants, the most notable of these is a 3.7-fold increase in the ability to use 2-ketovalerate. However, the largest effect is observed for the L112V mutation which increases the ability to use both 2-ketobutyrate (4.3-fold) and 2-ketovalerate (5.7-fold). The results suggest that L112 and, to a lesser extent, V111 are close to the active site and may interact with the alkyl side-chain of the substrate.
오미자 추출물이 Saccharomyces cerevisiae의 생리에 미치는 영향을 조사하기 위하여 포도당 기본배지에 오미자 추출물을 0, 0.01, 0.1, 0.5, 1%(w/v)씩 첨가하고 S. cerevisiae KTCC 1199를 접종하여 96시간 진탕배양하면서 균의 증식, 알콜생성, 발효율 등의 변화와 alcohol dehydrogenase, pyruvate decarboxylase활성을 조사하였다. S. cerevisiae의 증식은 전 발효기간중 추출물 0.01%및 0.1%첨가구에서 대조구보다 증가하였으며, 각 시험구의 알콜생성은 추출물 0.1%, 0.01%, 0%, 0.5%, 1% 첨가순으로 0.1%첨가구에서 가장 높았다. alcohol dehydrogenase 효소활성은 0.1%구와 0.01%구에서 대조구보다 각각 1.25배, 1.18배 높은 활성을 보였다. pyruvate decarboxylase 활성의 경우도 ADH 활성과 유사하여 각각 대조구보다 1.31배, 1.26배 높은 활성을 보였으며, 0.5%구와 1%구는 대조구보다 각각 1.3배및 1.4배 낮은 활성을 보였다.
Kim, Yu-mi;Kwak, Mi-hyang;Kim, Hee-sook;Lee, Jin-ho
한국미생물·생명공학회지
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제47권2호
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pp.242-249
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2019
Biosynthesis of indole-3-acetate (IAA) from L-tryptophan via indole-3-pyruvate pathway requires three enzymes including aminotransferase, indole-3-pyruvate decarboxylase, and indole-3-acetate dehydrogenase. To establish a bio-based production of IAA, the aspC, ipdC, and iad1 from Escherichia coli, Enterobacter cloacae, and Ustilago maydis, respectively, were expressed under control of the tac, ilvC, and sod promoters in C. glutamicum. Cells harboring ipdC produced tryptophol, indicating that the ipdC product is functional in this host. Analyses of SDS-PAGE and enzyme activity revealed that genes encoding AspC and Iad1 were efficiently expressed from the sod promoter, and their enzyme activities were 5.8 and 168.5 nmol/min/mg-protein, respectively. The final resulting strain expressing aspC, ipdC, and iad1 produced 2.3 g/l and 7.3 g/l of IAA from 10 g/l L-tryptophan, respectively, in flask cultures and a 5-L bioreactor.
Kim, Song-Yi;Kim, Han;Kim, Bong-Gyu;Ahn, Joong-Hoonc
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제29권10호
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pp.1636-1643
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2019
Two hydroxybenzoyl amines, 4-hydroxybenzoyl tyramine (4-HBT) and N-2-hydroxybenzoyl tryptamine (2-HBT), were synthesized using Escherichia coli. While 4-HBT was reported to demonstrate anti-atherosclerotic activity, 2-HBT showed anticonvulsant and antinociceptive activities. We introduced genes chorismate pyruvate-lyase (ubiC), tyrosine decarboxylase (TyDC), isochorismate synthase (entC), isochorismate pyruvate lyase (pchB), and tryptophan decarboxylase (TDC) for each substrate, 4-hydroxybenzoic acid (4-HBA), tyramine, 2-hydroxybenzoic acid (2-HBA), and tryptamine, respectively, in E. coli. Genes for CoA ligase (hbad) and amide formation (CaSHT and OsHCT) were also introduced to form hydroxybenzoic acid and amine conjugates. In addition, we engineered E. coli to provide increased substrates. These approaches led to the yield of 259.3 mg/l 4-HBT and 227.2 mg/l 2-HBT and could be applied to synthesize diverse bioactive hydroxybenzoyl amine conjugates.
발달단계가 다른 참외 태좌부의 알콜발효에 미치는 무산소처리효과를 검정하였다. 참외의 발달단계별 a-cetaldehyde 및 ethanol 수준을 검정한 결과, 비대 후기 (stage 3)의 과실에서 가장 낮았다. 무산소 처리기간동안 태좌부 중의 ethanol은 꾸준히 증가 하였으며, acetaldehyde 함량의 증가는 상대적으로 미미하였다. 그러나 alcohol dehydrogenase 활성은 무산소 처리 1일 까지 급격히 증가한 다음 서서히 감소하였고, pyruvate decarboxylase 활성은 저온 처리기간 중 증가하였다. 완숙기과실의 경우 두 효소의 활성은 증가하지 않았으나, 발효산물의 축적은 관찰되어, 완숙기 과실의 알콜발효는 효소활성의 증가에 기인하는 것이 아님을 알 수 있었다.
It was attempted in this study to investigate the effect of ginseng saponin on several glycolytic enzymes of yeast cell and the following results were obtained. The amount of $CO_2$formed during the incubation of yeast cells in medium containing saponin fraction of Panax ginseng C.A. Meyer was greater than that of control cells and found that the $CO_2$ formation was greatest when the cells were grown in the medium containing 10$^{-3}$% of the saponin fraction, at which the uptake of inorganic phosphate and glucose consumption were also increased. Radioactivity study of several glycolytic intermediates of yeast cells cultured in the medium containing [U-$^{14}$C]-glucose showed that the radioactivity of fructose 6-phosphate of test cells was as much as 1.6times that of control group. On the other hand, the radioactivity of pyruvate of test cells was considerably decreased compared to control. Investigation of the effect of ginseng saponin on yeast hexokinase, phosphoglucose isomers, pyruvate kinase and perverted decarboxylase in vitro showed that the maximum activities of the above enzymes were observed when the concentration of ginseng saponin was 10-$^{-5}$% in the reaction mixture. It seemed that the ginseng saponin stimulated both glycolytic enzymes such as hexokinase, phosphoglucose isomers and perverted decarboxylase significantly.
Thermophilic bacterium, Bacillus stearothermophilus NUB3621, was engineered to produce ethanol from glucose by introducing cloned thermostable pyruvate decarboxylase and alcohol dehydrogenase genes. A novel promoter sequence was screened and used for the enhancement of these two enzymes. Successful redirection of metabolic flux into ethanol was obtained. In addition, gene expression profiling using Bacillus subtilis DNA microarray was analyzed to overcome the intrinsic low glucose utilization of B.stearothermophilus. Many known and unknown genes were identified to be up or down regulated under glucose-containing media.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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